Summary

Spectral confocal Imaging av fluorescently tagget nikotinreseptorene i Knock-in Mus med kronisk Nikotin Administrasjon

Published: February 10, 2012
doi:

Summary

Vi har utviklet en ny metode for å kvantifisere nikotin acetylkolin reseptor endringer innenfor subcellulære regioner i bestemte undergrupper av CNS neurons å bedre forstå mekanismene for nikotinavhengighet ved hjelp av en kombinasjon av tilnærminger, inkludert fluorescerende protein merking av reseptoren med knock-in tilnærming og spektrale confocal bildebehandling.

Abstract

Ligand-gated ionekanaler i sentralnervesystemet (CNS) er innblandet i en rekke tilstander med alvorlige medisinske og sosiale konsekvenser. For eksempel, er avhengighet av nikotin via tobakksrøyking en ledende årsak til for tidlig død på verdensbasis (World Health Organization) og er sannsynligvis forårsaket av en endring av ionekanal fordeling i hjernen en. Kronisk nikotin eksponering i både gnagere og mennesker gir økte antall nikotin acetylkolinreseptorer (nAChRs) i hjernevev 1-3. Tilsvarende har endringer i de glutamatergic GluN1 eller GluA1 kanaler vært innblandet i å utløse overfølsomhet mot andre avhengighetsskapende stoffer som kokain, amfetamin og opiater 4-6.

Derfor er evnen til å kartlegge og kvantifisere distribusjon og uttrykk mønstre av spesifikke ionekanaler kritisk viktig å forstå mekanismene for avhengighet. Studiet av hjernen region-spesifikk efvirkningene av enkelte legemidler ble fremmet ved ankomsten av teknikker som radioaktive ligander. Imidlertid hindrer lav romlig oppløsning av radioaktivt ligand binding muligheten til å kvantifisere ligand-gated ionekanaler i bestemte undergrupper av nerveceller.

Genetisk kodet fluorescerende reportere, som for eksempel grønn fluorescerende protein (GFP) og sine mange fargevarianter, har revolusjonert innen biologi 7. Ved genetisk tagging en fluorescerende reporter til en endogen protein man kan visualisere proteiner in vivo 7-10. En fordel med fluorescently tagging proteiner med en sonde er eliminering av antistoff bruk, som har spørsmål om nonspecificity og tilgjengelighet til målet protein. Vi har brukt denne strategien for å fluorescently label nAChRs, som gjorde studiet av reseptoren montering bruke Förster Resonance Energy Transfer (FRET) i transfekterte dyrkede celler 11. Mer nylig har vi brukt knock-i tilnærming til ingeniør mus med gul fluoriserende protein tagget α4 nAChR subenheter (α4YFP), slik at nøyaktig kvantifisering av reseptoren ex vivo ved submicrometer oppløsning i CNS nevroner via spektral konfokalmikroskopi 12. Den målrettede fluorescerende knock-in mutasjon er innlemmet i den endogene locus og under kontroll av sin opprinnelige arrangøren, produserer normale nivåer av uttrykk og regulering av reseptoren i forhold til ukodede reseptorer i hvete mus. Dette knock-in tilnærming kan utvides til fluorescently tagge andre ionekanaler, og tilbyr en kraftig tilnærming av visualisere og kvantifisere reseptorer i CNS.

I dette notatet beskriver vi en metode for å kvantifisere endringer i nAChR uttrykk i spesifikke CNS nevroner etter eksponering til kronisk nikotin. Våre metoder omfatter mini-osmotisk pumpe implantasjon, intrakardiale perfusjon fiksering, bildebehandling og analyse av fluorescently merket nikotinsyre receptor subenheter fra α4YFP knock-in mus (Fig. 1). Vi har optimalisert fiksering teknikken for å minimere autofluorescens fra fast hjernen tissue.We beskrive i detalj vår avbildning metodikk ved hjelp av en spektral confocal mikroskop i forbindelse med en lineær spektral unmixing algoritme for å trekke autofluoresent signal for å oppnå nøyaktig α4YFP fluorescens signal. Til slutt viser vi resultater av kronisk nikotin-indusert oppregulering av α4YFP reseptorer i den mediale perforant banen til hippocampus.

Protocol

1. Pump implantasjon Før pumpen implantasjon, fyll og forberede Alzet mini-osmotiske pumper (Alzet, 2002 Modell, Cupertino, USA) er forsiktig å ikke innføre luftbobler. Denne modellen av mini-osmotisk pumpe leverer løsningen med en rate på 0,5 mL / t i 14 dager. Sørg for sterile forhold. Vei tomme og fylt pumper. Ved avslutningen av forsøket (10 dager etter implantasjon), kan de resterende væske i pumpen fjernes med en sprøyte og kanyle og veide for å beregne volumet pumpes. Pumper med kon…

Discussion

<p class="jove_content"> Bruk av en fluorescerende reseptor i en knock-in mus modell for å bestemme mengde og lokalisering av et bestemt ion kanal gir en rekke fordeler. I motsetning til proteiner som aktin, som er overalt uttrykt i alle celler, ionekanaler er tilstede i langt færre antall og deres uttrykk varierer mellom nevrale subtyper gjør nøyaktig analyse via tradisjonelle immunhistokjemiske teknikker utfordrende. Den α4YFP genproduktet er uttrykt i WT nivåer, å være under kontroll av de samme arrangører, enhancers og handel me…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Anthony Renda ble støttet av en University of Victoria Graduate Fellowship Award. Denne forskningen ble støttet av en Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada Discovery Grant, en NARSAD Young Investigator Award (til RN), en Victoria Foundation – Myre og Winifred sim Fund, en kanadisk Foundation for Innovation bevilgning, en British Columbia Kunnskap utviklingsfond og en Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada Research Verktøy og Instrumentation Grant. Vi takker Jillian McKay, Christina Barnes, Ariel Sullivan, Jennifer MacDonald og Daniel Morgado for utmerket mus underhaldande.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
mini-osmotic pumps Alzet model 2002  
saline Teknova S5819  
(-)-nicotine hydrogen tartrate salt Sigma N5260  
eye drops Novartis Tear-Gel  
Vetbond glue 3M 1469SB  
heparin sodium salt Sigma H4784  
10x PBS Invitrogen 70011  
ketamine Wyeth Animal Health 0856-4403-01  
medatomidine hydrochloride Pfizer 1950673  
23G butterfly needle Becton Dickinson 367253  
paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences 15710  
plastic embedding mold VWR 18986-1  
O.C.T. Mounting Compound Tissue-Tek 4583  
Mowiol 4-88 EMD-Calbiochem 475904 pH 8.5

References

  1. Perry, D. C., Davila-Garcia, M. I., Stockmeier, C. A., Kellar, K. J. Increased nicotinic receptors in brains from smokers: membrane binding and autoradiography studies. J. Pharmacol. Exp. Ther. 289, 1545-1552 (1999).
  2. Schwartz, R. D., Kellar, K. J. Nicotinic cholinergic receptor binding sites in the brain: regulation in vivo. Science. 220, 214-216 (1983).
  3. Marks, M. J., Burch, J. B., Collins, A. C. Effects of chronic nicotine infusion on tolerance development and nicotinic receptors. J. Pharmacol. Exp. Ther. 226, 817-8125 (1983).
  4. Carlezon, W. A. J., Nestler, E. J. Elevated levels of GluR1 in the midbrain: a trigger for sensitization to drugs of abuse. Trends Neurosci. 25, 610-615 (2002).
  5. Fitzgerald, L. W., Ortiz, J., Hamedani, A. G., Nestler, E. J. Drugs of abuse and stress increase the expression of GluR1 and NMDAR1 glutamate receptor subunits in the rat ventral tegmental area: common adaptations among cross-sensitizing agents. J. Neurosci. 16, 274-2782 (1996).
  6. Saal, D., Dong, Y., Bonci, A., Malenka, R. C. Drugs of abuse and stress trigger a common synaptic adaptation in dopamine neurons. Neuron. 37, 577-5782 (2003).
  7. Tsien, R. Y. The green fluorescent protein. Annu. Rev. Biochem. 67, 509-544 (1998).
  8. Chalfie, M., Tu, Y., Euskirchen, G., Ward, W. W., Prasher, D. C. Green fluorescent protein as a marker for gene expression. Science. 263, 802-805 (1994).
  9. Feng, G., Mellor, R. H., Bernstein, M., Keller-Peck, C., Nguyen, Q. T., Wallace, M. Imaging neuronal subsets in transgenic mice expressing multiple spectral variants of GFP. Neuron. 28, 41-51 (2000).
  10. Livet, J., Weissman, T. A., Kang, H., Draft, R. W., Lu, J., Bennis, R. A. Transgenic strategies for combinatorial expression of fluorescent proteins in the nervous system. Nature. 450, 56-62 (2007).
  11. Nashmi, R., Dickinson, M. E., McKinney, S., Jareb, M., Labarca, C., Fraser, S. E. Assembly of α4β2 nicotinic acetylcholine receptors assessed with functional fluorescently labeled subunits: effects of localization, trafficking, and nicotine-induced upregulation in clonal mammalian cells and in cultured midbrain neurons. J. Neurosci. 23, 11554-11567 (2003).
  12. Nashmi, R., Xiao, C., Deshpande, P., McKinney, S., Grady, S. R., Whiteaker, P. Chronic nicotine cell specifically upregulates functional α4* nicotinic receptors: basis for both tolerance in midbrain and enhanced long-term potentiation in perforant path. J. Neurosci. 27, 8202-8218 (2007).
  13. Dickinson, M. E., Bearman, G., Tilie, S., Lansford, R., Fraser, S. E. Multi-spectral imaging and linear unmixing add a whole new dimension to laser scanning fluorescence microscopy. BioTechniques. 31, 1272-1278 (2001).
  14. Nashmi, R., Fraser, S. E., Lester, H., Dickinson, M. E., Periasamy, A., Day, R. N. . Molecular imaging: fret microscopy and spectroscopy. , 180-192 (2005).
  15. Zimmermann, T., Rietdorf, J., Girod, A., Georget, V., Pepperkok, R. Spectral imaging and linear un-mixing enables improved FRET efficiency with a novel GFP2-YFP FRET pair. FEBS Lett. 531, 245-249 (2002).
  16. Larson, J. M. The Nikon C1si combines high spectral resolution, high sensitivity, and high acquisition speed. Cytometry A. 69, 825-8234 (2006).
  17. Melvin, N. R., Sutherland, R. J. Quantitative caveats of standard immunohistochemical procedures: implications for optical disector-based designs. J. Histochem. Cytochem. 58, 577-5784 (2010).
  18. Jones, I. W., Wonnacott, S. Why doesn’t nicotinic ACh receptor immunoreactivity knock out. Trends Neurosci. 28, 343-345 (2005).
  19. Moser, N., Mechawar, N., Jones, I., Gochberg-Sarver, A., Orr-Urtreger, A., Plomann, M. Evaluating the suitability of nicotinic acetylcholine receptor antibodies for standard immunodetection procedures. J. Neurochem. , (2007).
  20. Whiteaker, P., Cooper, J. F., Salminen, O., Marks, M. J., McClure-Begley, T. D., Brown, R. W., Collins, A. C., Lindstrom, J. M. Immunolabeling demonstrates the interdependence of mouse brain a4 and b2 nicotinic acetylcholine receptor subunit expression. The Journal of Comparative Neurology. 499, 1016-1038 (2006).
  21. Marks, M. J., McClure-Begley, T. D., Whiteaker, P., Salminen, O., Brown, R. W. B., Cooper, J., Collins, A. C., Lindstrom, J. M. Increased nicotinic acetylcholine receptor protein underlies chronic nicotine-induced up-regulation of nicotinic agonist binding sites in mouse brain. The Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics. , 337-3187 (2011).
  22. Marks, M. J., Rowell, P. P., Cao, J. Z., Grady, S. R., McCallum, S. E., Collins, A. C. Subsets of acetylcholine-stimulated 86[Rb]+ efflux and 125[I]-epibatidine binding sites in C57BL/6 mouse brain are differentially affected by chronic nicotine treatment. Neuropharmacology. 46, 1141-1157 (2004).
  23. King, S. L., Caldarone, B. J., Picciotto, M. R. Beta2-subunit-containing nicotinic acetylcholine receptors are critical for dopamine-dependent locomotor activation following repeated nicotine administration. Neuropharmacology. 47, 132-139 (2004).
  24. Robinson, S. F., Marks, M. J., Collins, A. C. Inbred mouse strains vary in oral self-selection of nicotine. Psychopharmacology (Berl). 124, 332-339 (1996).
  25. Sparks, J. A., Pauly, J. R. Effects of continuous oral nicotine administration on brain nicotinic receptors and responsiveness to nicotine in C57Bl/6 mice. Psychopharmacology (Berl). , 141-145 (1999).
  26. Rahman, S., Zhang, J., Engleman, E. A., Corrigall, W. A. Neuroadaptive changes in the mesoaccumbens dopamine system after chronic nicotine self-administration: a microdialysis study. Neuroscience. 129, 415-4124 (2004).
  27. Picciotto, M. R., Zoli, M., Rimondini, R., Lena, C., Marubio, L. M., Pich, E. M. Acetylcholine receptors containing the β2 subunit are involved in the reinforcing properties of nicotine. Nature. 391, 173-177 (1998).
  28. Fowler, C. D., Lu, Q., Johnson, P. M., Marks, M. J., Kenny, P. J. Habenular α5 nicotinic receptor subunit signalling controls nicotine intake. Nature. 471, 597-601 (2011).
  29. Maskos, U., Molles, B. E., Pons, S., Besson, M., Guiard, B. P., Guilloux, J. P. Nicotine reinforcement and cognition restored by targeted expression of nicotinic receptors. Nature. 436, 103-107 (2005).
  30. Matta, S. G., Balfour, D. J., Benowitz, N. L., Boyd, R. T., Buccafusco, J. J., Caggiula, A. R., Craig, C. R., Collins, A. C., Damaj, M. I., Donny, E. C., Gardiner, P. S., Grady, S. R., Heberlein, U., Leonard, S. S. Guidelines on nicotine dose selection for in vivo research. Psychopharmacology. 190, 269-319 (2007).
  31. Lang, T., Rizzoli, S. O. Membrane protein clusters at nanoscale resolution: more than pretty pictures. Physiology (Bethesda). 25, 116-1124 (2010).
check_url/3516?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Renda, A., Nashmi, R. Spectral Confocal Imaging of Fluorescently tagged Nicotinic Receptors in Knock-in Mice with Chronic Nicotine Administration. J. Vis. Exp. (60), e3516, doi:10.3791/3516 (2012).

View Video