Summary

Spektral Confocal avbildning av fluorescensmärkta nikotinreceptorer i Knock-in Möss med kronisk Nikotin Administration

Published: February 10, 2012
doi:

Summary

Vi har utvecklat en ny teknik att kvantifiera nikotin förändringar acetylkolin receptor inom subcellulära regioner i vissa subtyper av CNS-neuroner för att bättre förstå mekanismerna bakom nikotinberoende med hjälp av en kombination av metoder, bland annat fluorescerande proteinet märkning av receptorn med hjälp av knock-in och spektrala konfokal bildalstring.

Abstract

Ligand-jonkanaler i det centrala nervsystemet (CNS) är inblandade i många förhållanden med allvarliga medicinska och sociala konsekvenser. Till exempel är beroende av nikotin via tobaksrökning en ledande orsak till för tidig död i världen (World Health Organization) och troligt orsakat av en förändring av jonkanal fördelning i hjärnan 1. Kronisk exponering för nikotin i både gnagare och människor resulterar i ett ökat antal nikotinacetylkolinreceptorer (nAChR) i hjärnvävnad 1-3. På samma sätt har förändringar i de glutamaterga GluN1 eller GluA1 kanaler varit inblandad i att utlösa sensibilisering mot andra beroendeframkallande droger som kokain, amfetamin och opiater 4-6.

Följaktligen är förmågan att kartlägga och kvantifiera distribution och expression mönster av specifika jonkanaler kritiskt viktiga för att förstå mekanismerna för missbruk. Studiet av hjärnan regionspecifik effekter av enskilda läkemedel framfördes av tillkomsten av tekniker såsom radioaktiva ligander. Emellertid förhindrar den låga spatiala upplösningen av radioaktiv ligand-bindning förmågan att kvantifiera ligandstyrda jonkanaler i specifika undertyper av neuroner.

Genetiskt kodade fluorescerande reportrar, såsom grönt fluorescerande protein (GFP) och dess många varianter färg, har revolutionerat området biologi 7. Genom att genetiskt märka en fluorescerande reporter till ett endogent protein kan man visualisera proteiner in vivo 7-10. En fördel med fluorescerande märkning proteiner med en sond är att eliminera antikroppar används, som har frågor om specificitet och tillgängligheten till målproteinet. Vi har använt denna strategi för att fluorescerande märka nAChRs, vilket gjorde att studien av receptorn montering med Förster Resonance Energy Transfer (FRET) i transfekterade odlade celler 11. På senare tid har vi använt knock-in att konstruera möss med gula fluorescerande proteinet taggade a4 nAChR subenheter (α4YFP), vilket möjliggör exakt kvantifiering av receptorn ex vivo vid submikrometer upplösning i CNS-neuroner via spektrala konfokalmikroskopi 12. Den riktade fluorescerande knock-in mutation ingår i det endogena stället och under kontroll av dess naturliga promotor, som producerar normala nivåer av uttryck och reglering av receptorn jämfört med otaggade receptorer i vildtyp möss. Detta knock-in kan utvidgas till fluorescerande märka andra jonkanaler och erbjuder en kraftfull strategi för att visualisera och kvantifiera receptorer i CNS.

I denna uppsats beskriver vi en metod för att kvantifiera förändringar i nAChR uttryck i specifika CNS neuroner efter exponering för kroniska nikotin. Våra metoder innefattar mini-osmotisk pump implantation intrakardiell perfusion fixering, avbildning och analys av fluorescensmärkta nikotinsyra RECeptor subenheter från α4YFP knock-in-möss (figur 1). Vi har optimerat fixeringen tekniken för att minimera autofluorescens från fast hjärnan tissue.We i detalj beskriva vårt avbildning metodik med hjälp av en spektral konfokalmikroskop i samband med en linjär spektral unmixing algoritm för att subtrahera autofluoresent signal för att exakt få α4YFP fluorescenssignal. Slutligen visar vi resultatet av kronisk nikotin-inducerad uppreglering av α4YFP receptorer i den mediala perforanta banan av hippocampus.

Protocol

1. Pumpen implantering Innan pumpen implantation, fylla och förbereda Alzet mini-osmotiska pumpar (Alzet, 2002 modell, Cupertino, USA) är noga med att inte införa luftbubblor. Denna modell av mini-osmotisk pump avger lösning vid en hastighet av 0,5 | il / h under 14 dagar. Se sterila betingelser. Väg tomma och fyllda pumpar. Vid avslutningen av experimentet (10 dagar efter implantation), kan den återstående vätskan i pumpen tas bort med en spruta och nål och vägdes för att beräkna den volym som pu…

Discussion

<p class="jove_content"> Användningen av en fluorescerande receptor i en knock-i mus-modell för att bestämma mängden och lokaliseringen av en specifik jon-kanal erbjuder ett antal fördelar. I motsats till proteiner såsom aktin, som överallt uttrycks i alla celler, jonkanaler är närvarande i mycket färre antal och deras expression varierar mellan neuronala subtyper gör noggrann analys via traditionella immunhistokemiska tekniker utmanande. Den α4YFP genprodukten uttrycks vid WT nivåer, som är under kontroll av samma promotorer, …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Anthony Renda stöddes av en University of Victoria Graduate Fellowship Award. Denna forskning stöds av en naturvetenskaplig och teknisk forskning Council of Canada Discovery Grant, en NARSAD Young Investigator Award (till RN), en Victoria Foundation – Myre och Winifred Sim Fund, en kanadensisk stiftelse för innovation bidrag ett British Columbia Kunskap utvecklingsfonden och en naturvetenskaplig och teknisk forskning Council of Canada Research Verktyg och Instrumentation Grant. Vi tackar Jillian McKay, Christina Barnes, Ariel Sullivan, Jennifer MacDonald och Daniel Morgado utmärkt mus djurhållning.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
mini-osmotic pumps Alzet model 2002  
saline Teknova S5819  
(-)-nicotine hydrogen tartrate salt Sigma N5260  
eye drops Novartis Tear-Gel  
Vetbond glue 3M 1469SB  
heparin sodium salt Sigma H4784  
10x PBS Invitrogen 70011  
ketamine Wyeth Animal Health 0856-4403-01  
medatomidine hydrochloride Pfizer 1950673  
23G butterfly needle Becton Dickinson 367253  
paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences 15710  
plastic embedding mold VWR 18986-1  
O.C.T. Mounting Compound Tissue-Tek 4583  
Mowiol 4-88 EMD-Calbiochem 475904 pH 8.5

References

  1. Perry, D. C., Davila-Garcia, M. I., Stockmeier, C. A., Kellar, K. J. Increased nicotinic receptors in brains from smokers: membrane binding and autoradiography studies. J. Pharmacol. Exp. Ther. 289, 1545-1552 (1999).
  2. Schwartz, R. D., Kellar, K. J. Nicotinic cholinergic receptor binding sites in the brain: regulation in vivo. Science. 220, 214-216 (1983).
  3. Marks, M. J., Burch, J. B., Collins, A. C. Effects of chronic nicotine infusion on tolerance development and nicotinic receptors. J. Pharmacol. Exp. Ther. 226, 817-8125 (1983).
  4. Carlezon, W. A. J., Nestler, E. J. Elevated levels of GluR1 in the midbrain: a trigger for sensitization to drugs of abuse. Trends Neurosci. 25, 610-615 (2002).
  5. Fitzgerald, L. W., Ortiz, J., Hamedani, A. G., Nestler, E. J. Drugs of abuse and stress increase the expression of GluR1 and NMDAR1 glutamate receptor subunits in the rat ventral tegmental area: common adaptations among cross-sensitizing agents. J. Neurosci. 16, 274-2782 (1996).
  6. Saal, D., Dong, Y., Bonci, A., Malenka, R. C. Drugs of abuse and stress trigger a common synaptic adaptation in dopamine neurons. Neuron. 37, 577-5782 (2003).
  7. Tsien, R. Y. The green fluorescent protein. Annu. Rev. Biochem. 67, 509-544 (1998).
  8. Chalfie, M., Tu, Y., Euskirchen, G., Ward, W. W., Prasher, D. C. Green fluorescent protein as a marker for gene expression. Science. 263, 802-805 (1994).
  9. Feng, G., Mellor, R. H., Bernstein, M., Keller-Peck, C., Nguyen, Q. T., Wallace, M. Imaging neuronal subsets in transgenic mice expressing multiple spectral variants of GFP. Neuron. 28, 41-51 (2000).
  10. Livet, J., Weissman, T. A., Kang, H., Draft, R. W., Lu, J., Bennis, R. A. Transgenic strategies for combinatorial expression of fluorescent proteins in the nervous system. Nature. 450, 56-62 (2007).
  11. Nashmi, R., Dickinson, M. E., McKinney, S., Jareb, M., Labarca, C., Fraser, S. E. Assembly of α4β2 nicotinic acetylcholine receptors assessed with functional fluorescently labeled subunits: effects of localization, trafficking, and nicotine-induced upregulation in clonal mammalian cells and in cultured midbrain neurons. J. Neurosci. 23, 11554-11567 (2003).
  12. Nashmi, R., Xiao, C., Deshpande, P., McKinney, S., Grady, S. R., Whiteaker, P. Chronic nicotine cell specifically upregulates functional α4* nicotinic receptors: basis for both tolerance in midbrain and enhanced long-term potentiation in perforant path. J. Neurosci. 27, 8202-8218 (2007).
  13. Dickinson, M. E., Bearman, G., Tilie, S., Lansford, R., Fraser, S. E. Multi-spectral imaging and linear unmixing add a whole new dimension to laser scanning fluorescence microscopy. BioTechniques. 31, 1272-1278 (2001).
  14. Nashmi, R., Fraser, S. E., Lester, H., Dickinson, M. E., Periasamy, A., Day, R. N. . Molecular imaging: fret microscopy and spectroscopy. , 180-192 (2005).
  15. Zimmermann, T., Rietdorf, J., Girod, A., Georget, V., Pepperkok, R. Spectral imaging and linear un-mixing enables improved FRET efficiency with a novel GFP2-YFP FRET pair. FEBS Lett. 531, 245-249 (2002).
  16. Larson, J. M. The Nikon C1si combines high spectral resolution, high sensitivity, and high acquisition speed. Cytometry A. 69, 825-8234 (2006).
  17. Melvin, N. R., Sutherland, R. J. Quantitative caveats of standard immunohistochemical procedures: implications for optical disector-based designs. J. Histochem. Cytochem. 58, 577-5784 (2010).
  18. Jones, I. W., Wonnacott, S. Why doesn’t nicotinic ACh receptor immunoreactivity knock out. Trends Neurosci. 28, 343-345 (2005).
  19. Moser, N., Mechawar, N., Jones, I., Gochberg-Sarver, A., Orr-Urtreger, A., Plomann, M. Evaluating the suitability of nicotinic acetylcholine receptor antibodies for standard immunodetection procedures. J. Neurochem. , (2007).
  20. Whiteaker, P., Cooper, J. F., Salminen, O., Marks, M. J., McClure-Begley, T. D., Brown, R. W., Collins, A. C., Lindstrom, J. M. Immunolabeling demonstrates the interdependence of mouse brain a4 and b2 nicotinic acetylcholine receptor subunit expression. The Journal of Comparative Neurology. 499, 1016-1038 (2006).
  21. Marks, M. J., McClure-Begley, T. D., Whiteaker, P., Salminen, O., Brown, R. W. B., Cooper, J., Collins, A. C., Lindstrom, J. M. Increased nicotinic acetylcholine receptor protein underlies chronic nicotine-induced up-regulation of nicotinic agonist binding sites in mouse brain. The Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics. , 337-3187 (2011).
  22. Marks, M. J., Rowell, P. P., Cao, J. Z., Grady, S. R., McCallum, S. E., Collins, A. C. Subsets of acetylcholine-stimulated 86[Rb]+ efflux and 125[I]-epibatidine binding sites in C57BL/6 mouse brain are differentially affected by chronic nicotine treatment. Neuropharmacology. 46, 1141-1157 (2004).
  23. King, S. L., Caldarone, B. J., Picciotto, M. R. Beta2-subunit-containing nicotinic acetylcholine receptors are critical for dopamine-dependent locomotor activation following repeated nicotine administration. Neuropharmacology. 47, 132-139 (2004).
  24. Robinson, S. F., Marks, M. J., Collins, A. C. Inbred mouse strains vary in oral self-selection of nicotine. Psychopharmacology (Berl). 124, 332-339 (1996).
  25. Sparks, J. A., Pauly, J. R. Effects of continuous oral nicotine administration on brain nicotinic receptors and responsiveness to nicotine in C57Bl/6 mice. Psychopharmacology (Berl). , 141-145 (1999).
  26. Rahman, S., Zhang, J., Engleman, E. A., Corrigall, W. A. Neuroadaptive changes in the mesoaccumbens dopamine system after chronic nicotine self-administration: a microdialysis study. Neuroscience. 129, 415-4124 (2004).
  27. Picciotto, M. R., Zoli, M., Rimondini, R., Lena, C., Marubio, L. M., Pich, E. M. Acetylcholine receptors containing the β2 subunit are involved in the reinforcing properties of nicotine. Nature. 391, 173-177 (1998).
  28. Fowler, C. D., Lu, Q., Johnson, P. M., Marks, M. J., Kenny, P. J. Habenular α5 nicotinic receptor subunit signalling controls nicotine intake. Nature. 471, 597-601 (2011).
  29. Maskos, U., Molles, B. E., Pons, S., Besson, M., Guiard, B. P., Guilloux, J. P. Nicotine reinforcement and cognition restored by targeted expression of nicotinic receptors. Nature. 436, 103-107 (2005).
  30. Matta, S. G., Balfour, D. J., Benowitz, N. L., Boyd, R. T., Buccafusco, J. J., Caggiula, A. R., Craig, C. R., Collins, A. C., Damaj, M. I., Donny, E. C., Gardiner, P. S., Grady, S. R., Heberlein, U., Leonard, S. S. Guidelines on nicotine dose selection for in vivo research. Psychopharmacology. 190, 269-319 (2007).
  31. Lang, T., Rizzoli, S. O. Membrane protein clusters at nanoscale resolution: more than pretty pictures. Physiology (Bethesda). 25, 116-1124 (2010).
check_url/3516?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Renda, A., Nashmi, R. Spectral Confocal Imaging of Fluorescently tagged Nicotinic Receptors in Knock-in Mice with Chronic Nicotine Administration. J. Vis. Exp. (60), e3516, doi:10.3791/3516 (2012).

View Video