Summary

Multiplexed Single-molekyl kraft proteolyse målinger ved hjelp av Magnetic pinsett

Published: July 25, 2012
doi:

Summary

I denne artikkelen beskriver vi bruk av magnetiske pinsett for å studere effekten av kraft på enzymatisk proteolyse på ett molekyl-nivå i en svært parallelizable måte.

Abstract

Den generasjonen og påvisning av mekaniske krefter er en allestedsnærværende del av cellefysiologi, med direkte relevans for kreft pt metastasering, atherogenesis 2 og sårtilheling tre. I hvert av disse eksemplene, cellene både utøver makt på sine omgivelser og samtidig enzymatisk oppussing ekstracellulær matrix (ECM). Effekten av krefter på ECM har dermed blitt et område av stor interesse på grunn av sin sannsynlig biologisk og medisinsk betydning 4-7.

Enkle molekyl teknikker som optisk fangst 8, atomic force mikroskopi 9, og magnetiske pinsett 10,11 tillate forskere å undersøke funksjonen av enzymer på et molekylært nivå ved å utøve krefter på individuelle proteiner. Av disse teknikkene, magnetiske pinsett (MT) er kjent for sine lave kostnader og høy gjennomstrømning. MT øve styrker i området ~ 1-100 PN og kan gi millisekund tidsmessig oppløsning,kvaliteter som er godt tilpasset studiet av enzymet mekanisme på enkelt-molekyl nivå 12. Her rapporterer vi en svært parallelizable MT analysen for å studere effekten av kraften på proteolyse av single proteinmolekyler. Vi presenterer den spesifikke eksempel på proteolyse av en trimeric kollagen peptid ved matrise metalloproteinase 1 (MMP-1), men kan denne analysen enkelt tilpasses til å studere andre underlag og proteaser.

Protocol

1. Flow celleforberedelsen Dekkglass (# 1.5, 22×22 mm og 22×40 mm, VWR) blir rengjort ved hjelp sonikator. Tilsett Dekkglass til et lite glass container kan holde Dekkglass og montering i sonicator (se trinn 2). Fyll beholderen med isopropanol og sonicate i et badekar sonicator i 20 minutter. Kast isopropanol og skyll Dekkglass med rikelige mengder deionisert vann som produseres av en Barnsted MilliQ apparat eller lignende innretning. Fyll beholderen med vann og sonicate i 20 minu…

Discussion

Denne protokollen beskriver en ny bruk for en klassisk enkelt molekyl teknikk. Magnetiske pinsett tillate middels til høy gjennomstrømming ett molekyl essay i en kostnadseffektiv måte. Men som alle eksperimentelle teknikker det er utfordringer og potensielle fallgruver.

Begrensninger av magnetiske pinsett

Sammenlignet med en optisk felle den romlige og tidsmessige oppløsningen på en MT apparat er lav. Videre kreftene som genereres av den enkle MT beskrevet her,…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av Burroughs Wellcome Karriere Award på Scientific Interface (ARD), National Institutes of Health gjennom NIH direktørens New Innovator Award Program 1-DP2-OD007078 (ARD), William Bowes Jr Stanford Graduate Fellowship (ASA ), og Stanford Cardiovascular Institute Younger Predoctoral Fellowship (JC). Forfatterne takker James Spudich for loaning mikroskopi utstyr.

Materials

Name of Reagent Company Catalogue Number
Micro Cover Glass #1.5 (22×22) VWR 48366-067
Micro Cover Glass #1.5 (22×40) VWR 48393-048
Lambda DNA Invitrogen 25250-010
T4 DNA Ligase Invitrogen 15224-041
Microcon Ultracel YM-100 Millipore 42413
Anti-Digoxigenin Roche Diagnostics 11-333-089-001
Tween 20 Sigma P9416-100ML
Anti-myc Antibody Invitrogen 46-0603
Bovine Serum Albumin Sigma B4287-5G
Dynabeads M-280 Streptavidin Invitrogen 658.01D
Dynabeads MyOne T1 Streptavidin Invitrogen 658.01D
p-Aminophenylmercuric Acetate Calbiochem 164610
Biotin-Maleimide Sigma Aldrich B1267
Biotin labeled oligo IDT DNA Custom synthesis
Digoxigenin labeled oligo IDT DNA Custom synthesis
Collagen peptide gene DNA 2.0 Custom synthesis
MMP-1 cDNA Harvard Plasmid Database  
z-translator Thorlabs MTS50
Servo controller for translator Thorlabs TDC001

Referências

  1. Ingber, D. E. Can cancer be reversed by engineering the tumor microenvironment. Semin. Cancer Biol. 18, 356-364 (2008).
  2. Hahn, C., Schwartz, M. A. Mechanotransduction in vascular physiology and atherogenesis. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 10, 53-62 (2009).
  3. Laurens, N., Koolwijk, P., de Maat, M. P. Fibrin structure and wound healing. J. Thromb. Haemost. 4, 932-939 (2006).
  4. Adhikari, A. S., Chai, J., Dunn, A. R. Mechanical Load Induces a 100-Fold Increase in the Rate of Collagen Proteolysis by MMP-1. J. Am. Chem. Soc. 133, (2011).
  5. Zareian, R. Probing collagen/enzyme mechanochemistry in native tissue with dynamic, enzyme-induced creep. Langmuir. 26, (2010).
  6. Ellsmere, J. C., Khanna, R. A., Lee, J. M. Mechanical loading of bovine pericardium accelerates enzymatic degradation. Biomaterials. 20, 1143-1150 (1999).
  7. Jesudason, R. Mechanical forces regulate elastase activity and binding site availability in lung elastin. Biophys. J. 99, 3076-3083 (2010).
  8. Neuman, K. C., Block, S. M. Optical trapping. Rev. Sci. Instrum. 75, 2787-2809 (2004).
  9. Lee, C. K., Wang, Y. M., Huang, L. S., Lin, S. Atomic force microscopy: determination of unbinding force, off rate and energy barrier for protein-ligand interaction. Micron. 38, 446-461 (2007).
  10. Smith, S. B., Finzi, L., Bustamante, C. Direct mechanical measurements of the elasticity of single DNA molecules by using magnetic beads. Science. 258, 1122-1126 (1992).
  11. Tanase, M., Biais, N., Sheetz, M. Magnetic tweezers in cell biology. Methods Cell Biol. 83, 473-493 (2007).
  12. Neuman, K. C., Nagy, A. Single-molecule force spectroscopy: optical tweezers, magnetic tweezers and atomic force microscopy. Nat. Methods. 5, 491-505 (2008).
  13. Frank, S. Stabilization of short collagen-like triple helices by protein engineering. J. Mol. Biol. 308, 1081-1089 (2001).
  14. Stetefeld, J. Collagen stabilization at atomic level: crystal structure of designed (GlyProPro)10foldon. Structure. 11, 339-346 (2003).
  15. Chung, L. Collagenase unwinds triple-helical collagen prior to peptide bond hydrolysis. EMBO J. 23, 3020-3030 (2004).
  16. Bell, G. I. Models for the specific adhesion of cells to cells. Science. 200, 618-627 (1978).
  17. Selvin, P. R., Ha, T. . Single-molecule techniques: a laboratory manual. , (2008).
  18. Graneli, A., Yeykal, C. C., Prasad, T. K., Greene, E. C. Organized arrays of individual DNA molecules tethered to supported lipid bilayers. Langmuir. 22, 292-299 (2006).
  19. Danilowicz, C., Greenfield, D., Prentiss, M. Dissociation of ligand-receptor complexes using magnetic tweezers. Anal. Chem. 77, 3023-3028 (2005).
  20. Zhang, X., Halvorsen, K., Zhang, C. Z., Wong, W. P., Springer, T. A. Mechanoenzymatic cleavage of the ultralarge vascular protein von Willebrand factor. Science. 324, 1330-1334 (2009).
  21. Woodside, M. T. Nanomechanical measurements of the sequence-dependent folding landscapes of single nucleic acid hairpins. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 103, 6190-6195 (2006).
  22. del Rio, A. Stretching single talin rod molecules activates vinculin binding. Science. 323, 638-641 (2009).
  23. Gosse, C., Croquette, V. Magnetic tweezers: micromanipulation and force measurement at the molecular level. Biophys. J. 82, 3314-3329 (2002).

Play Video

Citar este artigo
Adhikari, A. S., Chai, J., Dunn, A. R. Multiplexed Single-molecule Force Proteolysis Measurements Using Magnetic Tweezers. J. Vis. Exp. (65), e3520, doi:10.3791/3520 (2012).

View Video