Грызун стереотаксической хирургии и животных улучшения благосостояния Итоговом документе Поведенческие Neuroscience
Summary
Стереотаксической хирургии на грызунов позволяет целевой прием препаратов или электрической стимуляции и записи у бодрствующих, которые ведут себя животные. В этом видео-презентации мы продемонстрируем последние процедурные уточнения к этой давней процедура, которая успешно улучшение выживаемости и снижения послеоперационной потери веса.
Abstract
Стереотаксической операции по имплантации катетеров в конкретных областях мозга в течение многих десятилетий была очень успешной экспериментальной методики изучения влияния локально управлять нейромедиаторов и сигнальных путей у бодрствующих, которые ведут себя животные. Более того, стереотаксической имплантации электродов для стимуляции и электрофизиологические исследования записи сыграл важную роль в нашем современном понимании нейропластичности и мозг сетей в себя животных. Постоянно растущее знания об оптимизации хирургической техники у грызунов 1-4, информирование общественности по вопросам благополучия животных и жесткое законодательство (например, в 2010 году Директива Европейского союза об использовании лабораторных животных, 5) предложено уточнить эти хирургические операции, особенно в отношении для внедрения новых процедур для кислородных добавок и непрерывного мониторинга оксигенации крови и уровня частоты сердечных сокращений во время операции, а такжевведение стандартизированного протокола для послеоперационного ухода. Наши наблюдения показывают, что эти изменения привели к увеличению выживаемости и улучшение общего состояния животных после операции (например, менее потеря веса и более активных животных). Это видео презентация покажет общие процедуры, связанные с этим типом стереотаксической хирургии с особым вниманием к нашим нескольких модификациях. Проиллюстрируем эти хирургические операции у крыс, но это также можно выполнять такого рода операции у мышей и других мелких лабораторных животных с помощью специальных адаптеров для стереотаксического аппарата 6.
Protocol
Discussion
Основная цель этого видео-презентации является ознакомление поведенческого нейрофизиологи с основными принципами стереотаксической хирургии. Исследователи, которые уже выполняет стереотаксической хирургии может также извлечь выгоду из этого видео и рассмотрим некоторые из процед…
Declarações
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Авторы выражают благодарность д-р Питер Герритс для рисунки, используемые в видео.
Materials
| Name of the reagent | Company |
| Alcohol 70% | VWR |
| Antisedan (atipamezole) | Orion |
| Atropine sulfate 0,5 | Pharmachemie BV |
| Bulldog haemostatic clamp | Aesculap |
| Cannulas | Component Supply Co. |
| Chlorhexidine 0.5% | AppepPharma |
| Cleaning powder | Alconox |
| Cotton sticks | Hartmann BV |
| Dexdomitor (dexmedetomidine) | Orion |
| Drill | Dremel 8000 |
| Duratears Z | Alcon |
| Durogrip Naaldvoerder converse 130mm | Aesculap |
| Durotip Fijne schaar ret.sp/st 110 mm | Aesculap |
| Gauze | Medicomp (5×5) |
| Heating pad | Harvard Apparatus |
| Insect pins (stylets) | Entosphinx (Czech Republik) |
| Ketamine 10% (ketamine) | Alfasan |
| Micro-halsted straight tip | Aesculap-vet |
| Molinea | Hartmann BV |
| NaCl 0,9% | Baxter |
| Needles (25G) | Terumo |
| Oximeter | Edan Instruments, Inc. |
| Pentobarbital | Pharmacy of the UMCG |
| Rimadyl | Pfizer |
| Scalpel blade No. 23 | Swann Morton |
| Scalpelholder NR. 4 133 mm | Aesculap |
| Screw driver | conventional Hardware Store |
| Simplex Rapid (dental cement) | Kemdent |
| Skull screws | Component Supply Co. |
| Spatula | VWR |
| Spongestan special | Johnson & Johnson |
| Stereotacts | Kopf Instruments |
| Surgical forceps 100mm | Aesculap |
| Suture material Safil 5/0 | Aesculap |
| Syringe 10 ml | Omnifix |
| Syringe 1ml | Terumo |
| Syringe 5ml | Omnifix |
| Xylocaine (lidocaine/adrenaline) | Astra Zeneca |
Referências
- Russell, W. M. S., Burch, R. L. . The Principles of Humane Experimental Technique. , (1959).
- Richardson, C. A., Flecknell, P. A. Anaesthesia and post-operative analgesia following experimental surgery in laboratory rodents: are we making progress?. Altern. Lab Anim. 33, 119-127 (2005).
- Stokes, E. L., Flecknell, P. A., Richardson, C. A. Reported analgesic and anaesthetic administration to rodents undergoing experimental surgical procedures. Lab Anim. 43, 149-154 (2009).
- Flecknell, P. A. . Laboratory Animal Anaesthesia – A Practical Introduction for Research Workers and Technicians. , (2009).
- . DIRECTIVE 2010/63/EU OF THE EUROPEAN PARLIAMENT AND OF THE COUNCIL of 22 September 2010 on the protection of animals used for scientific purposes. Official Journal of the European Union. , (2010).
- Geiger, B. M., Frank, L. E., Caldera-Siu, A. D., Pothos, E. N. Survivable Stereotaxic Surgery in Rodents. J. Vis. Exp. (20), e880-e880 (2008).
- Hellebrekers, L. J., Booij, L. H. D. J., Flecknell, P. A., Van Zutphen, L. F. M., Baumans, V., Beynen, A. C. Anaesthesia, analgesia and euthanasia. Principles of Laboratory Animal Science. , 277-311 (2001).
- Walantus, W., Elias, L., Kriegstein, A. In utero intraventricular injection and electroporation of E16 rat embryos. J. Vis. Exp. (6), e236-e236 (2007).
- Paxinos, G., Watson, C. . The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates. , (1986).
- Paxinos, G., Watson, C. . The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates. , (2007).
- Swanson, L. W. . Brain Maps: Structure of the Rat Brain. , (1992).
