Summary

Induktion Dendritic Tillväxten i Odlade sympatiska nervceller

Published: March 21, 2012
doi:

Summary

Vi beskriver ett protokoll för användning av benmorfogenetiskt protein-7 (BMP-7) eller Matrigel att selektivt inducera dendritisk tillväxt i primära sympatiska neuroner dissocierade från ganglion cervicale superius (SCG) hos perinatal råtta.

Abstract

Formen på dendritiska bersån bestämmer den totala synaptiska mata in ett neuron kan ta emot 1-3, och påverkar de typer och fördelningen av dessa ingångar 4-6. Förändrade mönster av dendritiska tillväxt och plasticitet är förknippade med nedsatt neurodysfunktion funktion i experimentella modeller 7, och tros bidra till kliniska symptom som observerats i både nervsystemets sjukdomar 8-10 och neurodegenerativa sjukdomar 11-13. Sådana observationer understryker funktionella betydelsen av exakt reglering dendritiska morfologi, och tyder på att identifiera mekanismer som styr dendritiska tillväxten inte bara kommer att öka förståelsen för hur nervkopplingar regleras under normal utveckling, men kan också ge insikt om nya terapeutiska strategier för olika neurologiska sjukdomar.

Mekanistiska studier av dendritiska tillväxten skulle vara mycket underlättas av tillgången oFA modellsystem som gör att nervceller kan experimentellt kopplas från en stat där de inte sträcker sig dendriter till en där de utarbeta en dendritisk berså jämförbar med den av deras in vivo motsvarigheter. Primära kulturer av sympatiska neuroner dissocierade från ganglion cervicale superius (SCG) hos perinatal gnagare ger en sådan modell. Vid odling i definierat medium i frånvaro av serum och ganglion gliaceller, sympatiska neuroner sträcker sig ett enda förfarande, som är axonal, och detta unipolär tillstånd varar i veckor eller månader i odling 14,15. Emellertid utlöser tillsats av antingen benmorfogenetiskt protein-7 (BMP-7) 16,17-eller Matrigel 18 till odlingsmediet dessa neuroner sträcker sig till multipla processer som uppfyller de morfologiska, biokemiska och funktionella kriterier för dendriter. Sympatiska nervceller dissocierade från SCG av perinatala gnagare och odlas under definierade förhållanden är en homogen population av neuroner 19att reagera på samma sätt för den dendritliknande aktiviteten av Matrigel, BMP-7 och andra BMP i decapentaplegic (DPP) och 60A underfamiljer 17,18,20,21. Viktigare, inträffar Matrigel-och BMP-inducerade dendritbildning i frånvaro av förändringar i cellöverlevnad eller axonal tillväxt 17,18.

Här beskriver vi hur du ställer in dissocierade kulturer av sympatiska nervceller härrör från SCG av perinatala råttor så att de är lyhörda för den selektiva dendritliknande främja aktivitet Matrigel eller BMP.

Protocol

1. Beredning av odlingsmedium (C2 medium) Lägg till följande i angiven ordning, till en steril engångs 500 ml Erlenmeyerkolv: Mängd Komponent Slutkoncentration 190 ml DMEM (låg glukos) N / A 10 ml BSA utan fettsyror (20mg/ml i DMEM) 50 | ig / ml 2,8 ml L-glutamin 1,4 mM <t…

Discussion

Fördelarna med denna modell innefattar: (a) kulturerna består av en homogen population av sympatiska neuroner som saknar andra celltyper 17,23, (b) de tillväxtfaktorreceptorer krav sympatiska neuroner är väl etablerad, vilket medger användning av definierat medium, och en mängd olika definierade medier och substrat fungerar bra för att odla och upprätthålla sympatiska neuroner 23, (c) neuroner i dessa kulturer reagera på samma sätt för den dendritliknande aktiviteten av Matrigel, BMP-7…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av finansiering från National Institutes of Health (bidrag R21 NS45037 och R01 ES014901).

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Glass coverslips Bellco 1943-10012 12 mm Round Coverslip #1 Thickness, German glass
Bent tip pipets Bellco 1273-50003  
Poly-D-lysine Sigma P0899-100MG Stock solution 1 mg/ml
Distilled water Gibco 15230  
Fine forceps Dumont no. 4 and 5 Fine Science Tools (FST) 11252-30 11241-30  
20-gauge needles Becton Dickinson 305176  
Leibovitz’s L-15 medium Invitrogen 11415  
Collagenase Worthington 4176 1 mg/ml
Dispase Roche 04942078001 5 mg/ml
Hank’s balanced salt solution( -Ca,-Mg) Invitrogen 14185-052  
DMEM Low glucose Invitrogen 11885  
L-Glutamine Invitrogen 25030 20 mM
Insulin/Transferrin/ Selenium Invitrogen 51500-056 100X
Fatty-acid free BSA Calbiochem 126609  
NGF Harlan Bioproducts 5017  
Ham F-12 nutrient medium (F-12) Invitrogen 11765  
Cytosine arabinoside Sigma C1768  
Matrigel BD Biosciences 356234 Avoid repeated freeze-thaw cycles
BMP-7 R&D Systems Curis, Inc. 345-BP BMP7-07H BMPs 4, 5 and 6 work equally as well as BMP-7 and are sometimes easier to obtain commercially
Paraformaldehyde Sigma P6148  
Triton X-100 Fisher BP151-500  
Mouse anti-rat MAP2 antibody Sternberg Monoclonals Inc. SMI52 1/5000
Alexa Fluor 546 goat-anti-mouse Invitrogen A11003 1/10000
Mounting media Prolong Antifade kit Molecular Probes P7481  

Table 1. Materials.

Referências

  1. Purpura, D. P., Quarton, Q. C., Melnechuk, T., Schmitt, F. O. . The Neurosciences: A Study Program. , 372-393 (1967).
  2. Purves, D. Functional and structural changes in mammalian sympathetic neurons following interruption of their axons. J. Physiol. 252, 429-463 (1975).
  3. Purves, D. . A Trophic Theory of Neural Connections. , (1988).
  4. Miller, J. P., Jacobs, G. A. Relationships between neuronal structure and function. J. Exp. Biol. 112, 129-145 (1984).
  5. Schuman, E. M. Synapse specificity and long-term information storage. Neuron. 18, 339-342 (1997).
  6. Sejnowski, T. J. The year of the dendrite. Science. 275, 178-179 (1997).
  7. Berger-Sweeney, J., Hohmann, C. F. Behavioral consequences of abnormal cortical development: insights into developmental disabilities. Behav. Brain Res. 86, 121-142 (1997).
  8. Connors, S. L. Fetal mechanisms in neurodevelopmental disorders. Pediatric Neurology. 38, 163-176 (2008).
  9. Pardo, C. A., Eberhart, C. G. The neurobiology of autism. Brain Pathology (Zurich, Switzerland). 17, 434-447 (2007).
  10. Zoghbi, H. Y. Postnatal neurodevelopmental disorders: meeting at the synapse. Science. 302, 826-830 (2003).
  11. de Ruiter, J. P., Uylings, H. B. Morphometric and dendritic analysis of fascia dentata granule cells in human aging and senile dementia. Brain Res. 402, 217-229 (1987).
  12. Flood, D. G., Coleman, P. D. Hippocampal plasticity in normal aging and decreased plasticity in Alzheimer’s disease. Prog. Brain Res. 83, 435-443 (1990).
  13. Jagadha, V., Becker, L. E. Dendritic pathology: an overview of Golgi studies in man. Can. J. Neurol. Sci. 16, 41-50 (1989).
  14. Bruckenstein, D. A., Higgins, D. Morphological differentiation of embryonic rat sympathetic neurons in tissue culture. I. Conditions under which neurons form axons but not dendrites. Dev. Biol. 128, 324-336 (1988).
  15. Tropea, M., Johnson, M. I., Higgins, D. Glial cells promote dendritic development in rat sympathetic neurons in vitro. Glia. 1, 380-392 (1988).
  16. Lein, P. The effects of extracellular matrix and osteogenic protein-1 on the morphological differentiation of rat sympathetic neurons. Int. J. Dev. Neurosci. 14, 203-215 (1996).
  17. Lein, P., Johnson, M., Guo, X., Rueger, D., Higgins, D. Osteogenic protein-1 induces dendritic growth in rat sympathetic neurons. Neuron. 15, 597-605 (1995).
  18. Lein, P. J., Higgins, D. Laminin and a basement membrane extract have different effects on axonal and dendritic outgrowth from embryonic rat sympathetic neurons in vitro. 136, 330-345 (1989).
  19. Higgins, D., Lein, P. J., Osterhout, D. J., Johnson, M. I., Banker, G., Goslin, K. . Culturing Nerve Cells. , 177-295 (1991).
  20. Beck, H. N., Drahushuk, K., Jacoby, D. B., Higgins, D., Lein, P. J. Bone morphogenetic protein-5 (BMP-5) promotes dendritic growth in cultured sympathetic neurons. BMC Neurosci. 2, 12-12 (2001).
  21. Guo, X., Rueger, D., Higgins, D. Osteogenic protein-1 and related bone morphogenetic proteins regulate dendritic growth and the expression of microtubule-associated protein-2 in rat sympathetic neurons. Neurosci. Lett. 245, 131-134 (1998).
  22. Lein, P. J. Glia induce dendritic growth in cultured sympathetic neurons by modulating the balance between bone morphogenetic proteins (BMPs) and BMP antagonists. J. Neurosci. 22, 10377-10387 (2002).
  23. Higgins, D., Lein, P., Osterhout, D., Johnson, M. I., Banker, G., Goslin, K. . Culturing Nerve Cells. , 177-205 (1991).
  24. Bruckenstein, D. A., Higgins, D. Morphological differentiation of embryonic rat sympathetic neurons in tissue culture. II. Serum promotes dendritic growth. Dev. Biol. 128, 337-348 (1988).
check_url/pt/3546?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Ghogha, A., Bruun, D. A., Lein, P. J. Inducing Dendritic Growth in Cultured Sympathetic Neurons. J. Vis. Exp. (61), e3546, doi:10.3791/3546 (2012).

View Video