Summary

Udarbejdelse af 3D Fibrin stilladser til Stem celledyrkningsapplikationer

Published: March 02, 2012
doi:

Summary

Dette arbejde nærmere udarbejdelse af 3D fibrin stilladser til dyrkning og differentiering plutipotent stamceller. Sådanne stilladser kan anvendes til at screene virkningerne af forskellige biologiske forbindelser på stamceller adfærd såvel som modificeret til at indeholde medikamentudleveringssystemer.

Abstract

Stamceller findes i naturligt forekommende 3D ​​mikromiljøer in vivo, hvilket ofte omtales som stamcellen niche 1. Dyrkning stamceller indersiden af 3D biomateriale stilladser tilvejebringer en måde til præcist efterligner disse mikromiljøer, hvilket giver en fordel i forhold til traditionelle 2D dyrkningsmetoder med polystyren samt en fremgangsmåde til splejsning af udskiftning af væv 2. Mens 2D vævskultur polystyren er blevet anvendt til de fleste celledyrkningsforsøg kan 3D biomateriale scaffolds nærmere replikere mikromiljøer fundet in vivo ved at muliggøre mere nøjagtig fastlæggelse af celle polaritet i miljøet, og som besidder biokemiske og mekaniske egenskaber svarende til blødt væv. 3. En række naturligt afledte og syntetiske biomateriale scaffolds er blevet undersøgt som 3D-miljøer til understøtning stamcelle vækst. Medens syntetiske stilladser kan syntetiseres til at have en større rAnge af mekaniske og kemiske egenskaber og har ofte en større reproducerbarhed, er naturlige biomaterialer ofte sammensat af proteiner og polysaccharider, der findes i den ekstracellulære matrix og som et resultat indeholder bindingssteder for celleadhæsion og let støtte cellekultur. Fibrin stilladser, fremstillet ved polymerisering af proteinet fibrinogen fra plasma, har været bredt undersøgt til forskellige vævsdyrkningsapplikationer både de vitro og in vivo 4. Sådanne stilladser kan modificeres ved anvendelse af en række fremgangsmåder til at optage systemer med kontrolleret frigivelse til afgivelse af terapeutiske faktorer 5. Tidligere arbejde har vist, at sådanne stilladser kan anvendes til vellykket dyrkning embryonale stamceller og denne scaffold-baserede kultursystem kan anvendes til at screene virkningerne af forskellige vækstfaktorer på differentiering af stamcellerne podet ind 6,7.

Denne protokol detaljer processen med polymerizing fibrin stilladser fra fibrinogen løsninger ved hjælp af den enzymatiske aktivitet af thrombin. Processen tager 2 dage at gennemføre, herunder en dialyse natten skridt for fibrinogenopløsning at fjerne citrater, der hæmmer polymerisering. Disse detaljerede fremgangsmåder er afhængige af fibrinogenkoncentrationer bestemt til at være optimal for embryonisk og induceret pluripotente stamcelle kultur. Andre grupper har yderligere undersøgt fibrin stilladser til en lang række celletyper og anvendelser – viser alsidigheden af denne fremgangsmåde 8-12.

Protocol

Bemærkninger, før du starter protokol: Fibrinogen er en blod afledt protein og dermed relevant uddannelse i sikkerhed skal være afsluttet inden håndtering. Denne protokol kræver 2 dage at fuldføre så tiden de ønskede stamceller kulturer hensigtsmæssigt at sikre, at de er klar til såning. I form af beregningen hvor meget fibrinogen at afveje tre 35 mm petriskåle i tris-bufret saltvand (TBS, pH 7,4) indeholdende 110 til 130 mg fibrinogen opløses i 3 ml TBS vil være tilstrækkelig til at fremb…

Discussion

Denne protokol beskrevet ovenfor tilvejebringer en fremgangsmåde til generering af 3D fibrin stilladser til pluripotente stamcelle kultur specifikt muse embryonale og inducerede pluripotente stamceller. Denne 3D biomateriale baseret kultur system mere nøjagtigt efterligner stamcelle niche findes de vivo, og som følge heraf kan det anvendes til at screene biologiske signaler for at bestemme deres virkninger på stamcelle-differentiation 6. Vore observationer har vist, at disse scaffolds ve…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne vil gerne takke NSERC Discovery Grant 402462 "manipuleret væv stilladser til styring af induceret pluripotente stamcelle adfærd".

Materials

Equipment needed:

Analytical balance
pH meter
Tissue culture incubator (37°C, 5% CO2)
Stir plate
Spectrophotometer
Sterile tissue culture hood

Tris buffered saline (pH 7.4) (Need 4 L plus enough for dissolving fibrinogen)
50 mM calcium chloride solution
Sterile conical tubes (15 or 50 mL)
35 mm Petri dishes
Dialysis tubing (7,000 MW cutoff)
Dialysis clips
5.0 μm syringe filters
Individually wrapped sterile 0.22 μm syringe filters
Syringe
24 well tissue culture plates

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Fibrinogen (human) Calbiochem 341578
Thrombin (human) Sigma T7009

Referências

  1. Keung, A. J., Healy, K. E., Kumar, S., Schaffer, D. V. Biophysics and dynamics of natural and engineered stem cell microenvironments. Wiley Interdiscip. Rev. Syst. Biol. Med. 2, 49-64 (2010).
  2. Willerth, S. M., Sakiyama-Elbert, S. E. Combining stem cells and biomaterial scaffolds for constructing tissues and cell delivery. StemBook. , (2008).
  3. Lee, J., Cuddihy, M. J., Kotov, N. A. Three-dimensional cell culture matrices: state of the art. Tissue Eng. Part B Rev. 14, 61-86 (2008).
  4. Ahmed, T. A., Dare, E. V., Hincke, M. Fibrin: a versatile scaffold for tissue engineering applications. Tissue Eng. Part B Rev. 14, 199-215 (2008).
  5. Breen, A., O’Brien, T., Pandit, A. Fibrin as a delivery system for therapeutic drugs and biomolecules. Tissue Eng. Part B Rev. 15, 201-214 (2009).
  6. Willerth, S. M., Faxel, T. E., Gottlieb, D. I., Sakiyama-Elbert, S. E. The effects of soluble growth factors on embryonic stem cell differentiation inside of fibrin scaffolds. Stem Cells. 25, 2235-2244 (2007).
  7. Willerth, S. M., Arendas, K. J., Gottlieb, D. I., Sakiyama-Elbert, S. E. Optimization of fibrin scaffolds for differentiation of murine embryonic stem cells into neural lineage cells. Biomaterials. 27, 5990-6003 (2006).
  8. Gorodetsky, R. Fibrin Microbeads Loaded with Mesenchymal Cells Support Their Long-Term Survival While Sealed at Room Temperature. Tissue Eng. Part C Methods. , (2011).
  9. Barsotti, M. C. Fibrin acts as biomimetic niche inducing both differentiation and stem cell marker expression of early human endothelial progenitor cells. Cell Prolif. 44, 33-48 (2011).
  10. Park, J. S., Yang, H. N., Woo, D. G., Jeon, S. Y., Park, K. H. Chondrogenesis of human mesenchymal stem cells in fibrin constructs evaluated in vitro and in nude mouse and rabbit defects models. Biomaterials. 32, 1495-1507 (2011).
  11. Mooney, R., Tawil, B., Mahoney, M. Specific fibrinogen and thrombin concentrations promote neuronal rather than glial growth when primary neural cells are seeded within plasma-derived fibrin gels. Tissue Eng. Part A. 16, 1607-1619 (2010).
  12. Liu, H., Collins, S. F., Suggs, L. J. Three-dimensional culture for expansion and differentiation of mouse embryonic stem cells. Biomaterials. 27, 6004-6014 (2006).
  13. Dellenback, R. J., Chien, S. The extinction coefficient of fibrinogen from man, dog, elephant, sheep, and goat at 280 mmu. Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 134, 353-355 (1970).
  14. Bain, G., Kitchens, D., Yao, M., Huettner, J. E., Gottlieb, D. I. Embryonic stem cells express neuronal properties in vitro. Dev. Biol. 168, 342-357 (1995).
  15. Li, X. J. Directed differentiation of ventral spinal progenitors and motor neurons from human embryonic stem cells by small molecules. Stem Cells. 26, 886-893 (2008).
  16. Lorentz, K. M., Kontos, S., Frey, P., Hubbell, J. A. Engineered aprotinin for improved stability of fibrin biomaterials. Biomaterials. 32, 430-438 (2011).
  17. Willerth, S. M., Rader, A., Sakiyama-Elbert, S. E. The effect of controlled growth factor delivery on embryonic stem cell differentiation inside fibrin scaffolds. Stem Cell Res. 1, 205-218 (2008).
  18. Chen, S. J. Functional improvement of focal cerebral ischemia injury by subdural transplantation of induced pluripotent stem cells with fibrin glue. Stem Cells Dev. 19, 1757-1767 (2010).

Play Video

Citar este artigo
Kolehmainen, K., Willerth, S. M. Preparation of 3D Fibrin Scaffolds for Stem Cell Culture Applications. J. Vis. Exp. (61), e3641, doi:10.3791/3641 (2012).

View Video