Summary

Effektiv differentiering af stamceller fra mus i Motoriske neuroner

Published: June 09, 2012
doi:

Summary

Vi har udviklet en ny protokol for at forbedre effektiviteten af ​​in vitro differentiering af muse embryonale stamceller i motoriske neuroner. De differentierede ES-celler opnået motoriske neuroner har som vist ved ekspressionen af ​​neuronale og motorisk neuron markører under anvendelse immunohistokemiske teknikker.

Abstract

Direkte differentiering af embryoniske stamceller (ES)-celler i funktionelle motorneuroner repræsenterer en lovende ressource til at studere sygdomsmekanismer, at screene nye lægemiddelforbindelser, og at udvikle nye terapier for motoriske neuronsygdomme, såsom spinal muskulær atrofi (SMA) og amyotrofisk lateral sklerose ( ALS). Mange nuværende protokoller anvender en kombination af retinsyre (RA) og sonisk hedgehog (Shh) til at differentiere muse embryonale stamceller (MES)-celler i motorneuroner 1-4. Imidlertid har differentiering effektiviteten af ​​MES celler i motorneuroner kun mødt med begrænset succes. Vi har udviklet et to-trins differentiering protokol 5, der væsentligt forbedrer differentiering effektivitet sammenlignet med i dag etablerede protokoller. Det første trin er at forbedre neuralization processen ved tilsætning af noggin og fibroblastvækstfaktorer (FGF'er). Noggin er et knoglemorfogenetisk protein (BMP)-antagonist og er impliceret i neural induktion enccording til standard model neurogenese og resulterer i dannelsen af anterior neural mønsterdannelse 6. FGF signalering virker synergistisk med Noggin i at fremkalde nervevæv dannelsen ved at fremme en posterior neural identitet 7-9. I dette trin blev MES celler primet med noggin, bFGF og FGF-8 i to dage for at fremme differentiering til neurale cellelinier. Det andet skridt er at fremkalde motorisk neuron specifikation. Noggin / FGF'er eksponerede MES-celler blev inkuberet med RA og Shh-agonist, Smoothened agonist (SAG) i yderligere 5 dage for at lette motorneuroner generation. At overvåge differentiering af masse ved motoriske neuroner, anvendte vi en ES-cellelinie afledt fra en transgen mus, der udtrykker EGFP under kontrol af motorneuroner promotor Hb9 1. Anvendelse af denne robuste protokol, opnåede vi 51 ± 0,8% af differentiering virkningsgrad (n = 3, p <0,01, Student t-test) 5. Resultaterne fra immunofluorescensfarvning viste, at GFP +-celler udtrykker motorneuroner specifikke markører, ø-1 og cholinacetyltransferase (ChAT). Vores to-trins differentiering protokol giver en effektiv måde at differentiere MES celler i spinale motoriske neuroner.

Protocol

1. Trin 1: Mouse embryonale stamceller (MES) Cell Culture (Timing: 3 dage) 1. Udpladning primære embryoniske musefibroblaster (PMEF) Coat fire 100 mm vævskulturskåle med gelatine til PMEF adhæsion. Tilsættes 8 ml 0,1% gelatine-opløsning (StemCell Technologies) til hver skål, og inkuberes i 30 minutter ved stuetemperatur. Fjern overskydende gelatine fra retter. Må ikke skylle opvasken. Fortyndes et hætteglas af mitomycin C-inaktiveret PMEF (Millipore), der…

Discussion

Kvaliteten af ​​MES-celler er den mest kritiske parameter for effektiv produktion af motorneuroner. MES-celler skal dyrkes på PMEF at forhindre spontan differentiering. Tilsætningen af ​​LIF hjælper med at bevare MES cellerne i en udifferentieret tilstand. Som MES cellerne deler hver 12-15 timer, dyrkningsmediet bliver nedbrydes hurtigt og skal udskiftes dagligt.

Effektiv aktivering af Shh pathway er en kritisk parameter for at inducere motorneuroner specifikation. Shh-protein (R …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette håndskrift er dedikeret til mindet om Dr. Wenlan Wang, der gik bort den 26. maj 2011. Vi takker Dr. Douglas A. Kerr for generøst tilvejebringe de HBG3 MES celler anvendt i denne undersøgelse. Dette arbejde blev finansieret af Nemours, et tilskud (2 RR016472-10) under INBRE program National Center for Research Resources (NCRR), og en Cobre Grant Award fra NCRR (5 P20 RR020173-05) til støtte for Center for Pediatric Forskning på Alfred I. DuPont Hospital for Children, Wilmington, Delaware, USA.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Final concentration
PMEF Millipore PMEF-H N.A.
       
PMEF medium      
DMEM Invitrogen 11965-118 N.A.
FBS Invitrogen 16140-071 10%
L-glutamine Invitrogen 25030-081 1%
Penicillin/streptomycin Invitrogen 15240-063 1%
       
mES medium      
DMEM StemCell Technologies 36250 N.A.
ES Cell-Qualified FBS Invitrogen 16141-079 15%
GlutaMax-I Invitrogen 35050-061 1%
Non-essential amino acids Invitrogen 11140-050 1%
Nucleosides Millipore ES-008-D 1%
β-mercaptoethanol Millipore ES-007-E 0.1 mM
Penicillin/streptomycin Millipore TMS-AB2-C 1%
LIF Millipore LIF2010 10 ng/ml
       
Neural Differentiation medium      
DMEM StemCell Technologies 36250 N.A.
ES Cult FBS StemCell Technologies 06905 15%
Non-essential amino acids Invitrogen 11140-050 1%
Mono-thio glycerol Sigma-Aldrich M-6145 1mM
Noggin Invitrogen PHC1506 50 ng/ml
FGF-8 Invitrogen PHG0274 20 ng/ml
bFGF Invitrogen PHG0024 20 ng/ml
       
MND medium (differentiation)      
ES-Cult Basal Medium-A StemCell Technologies 5801 N.A.
Knockout serum replacement Invitrogen 10828-028 10%
N-2 supplement Invitrogen 17502-048 1%
ITS Supplement-B StemCell Technologies 07155 1%
Ascorbic acid StemCell Technologies 07157 1%
Penicillin/streptomycin Millipore TMS-AB2-C 1%
GlutaMax-I Invitrogen 35050-061 1%
D-glucose Sigma-Aldrich G-8270 0.15% in d2H2O
Fibronectin StemCell Technologies 07159 5 μg/ml
Heparin Sigma-Aldrich H3149 20 μg/ml in d2H2O
β-mercaptoethanol Millipore ES-007-E 0.1 mM
Retinoic Acid Sigma-Aldrich R-2625 1 μM
SAG EMD Chemicals 566660 1 μM
       
MND medium (Motor Neuron culture)      
ES-Cult Basal Medium-A StemCell Technologies 5801 N.A.
Knockout serum replacement Invitrogen 10828-028 10%
N-2 supplement Invitrogen 17502-048 1%
ITS Supplement-B StemCell Technologies 07155 1%
Ascorbic acid StemCell Technologies 07157 1%
Penicillin/streptomycin Millipore TMS-AB2-C 1%
GlutaMax-I Invitrogen 35050-061 1%
D-glucose Sigma-Aldrich G-8270 0.15% in d2H2O
Fibronectin StemCell Technologies 07159 5 μg/ml
Heparin Sigma-Aldrich H3149 20 μg/ml in d2H2O
β-mercaptoethanol Millipore ES-007-E 0.1 mM
BDNF R&D Systems 248-BD-005/CF 10 ng/ml
CNTF R&D Systems 257-NY-010/CF 10 ng/ml
GDNF R&D Systems 212-GD-010/CF 10 ng/ml
NT-3 R&D Systems 267-N3-005/CF 10 ng/ml

N.A. = Non-applicable.

Table 1. PMEF and Media for mES cell culture or differentiation.

Name of the reagent Company Catalogue number Final Concentration
0.1% Gelatin StemCell Technologies 07903 N.A.
Poly-DL-ornithine Sigma-Aldrich P0421 0.1 mg/ml in d2H2O
Mouse laminin Millipore CC095 2 μg/ml in PBS
0.25% Trypsin/EDTA StemCell Technologies 07901 N.A.
Accumax Millipore SCR006 N.A.

N.A. = Non-applicable.

Table 2. Reagents for coating and dissociation.

Referências

  1. Wichterle, H., Lieberam, I., Porter, J. A., Jessell, T. M. Directed differentiation of embryonic stem cells into motor neurons. Cell. 110, 385-397 (2002).
  2. Miles, G. B. Functional properties of motoneurons derived from mouse embryonic stem cells. J. Neurosci. 24, 7848-7858 (2004).
  3. Wichterle, H., Peljto, M. Differentiation of mouse embryonic stem cells to spinal motor neurons. Curr. Protoc. Stem Cell. Biol. Chapter 1, Unit 1H.1.1-Unit 1H.1.9 (2008).
  4. Kiris, E. Embryonic stem cell-derived motoneurons provide a highly sensitive cell culture model for botulinum neurotoxin studies, with implications for high-throughput drug discovery. Stem Cell Res. 6, 195-205 (2011).
  5. Wu, C. Y. Proteomic assessment of a cell model of spinal muscular atrophy. BMC Neurosci. 12, 25 (2011).
  6. McMahon, J. A. Noggin-mediated antagonism of BMP signaling is required for growth and patterning of the neural tube and somite. Genes Dev. 12, 1438-1452 (1998).
  7. Storey, K. G. Early posterior neural tissue is induced by FGF in the chick embryo. Development. 125, 473-484 (1998).
  8. Launay, C., Fromentoux, V., Shi, D. L., Boucaut, J. C. A truncated FGF receptor blocks neural induction by endogenous Xenopus inducers. Development. 122, 869-880 (1996).
  9. Sinha, S., Chen, J. K. Purmorphamine activates the Hedgehog pathway by targeting Smoothened. Nat. Chem. Biol. 2, 29-30 (2006).
  10. Chen, J. K., Taipale, J., Young, K. E., Maiti, T., Beachy, P. A. Small molecule modulation of Smoothened activity. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 99, 14071-14076 (2002).
  11. Lee, S. M., Danielian, P. S., Fritzsch, B., McMahon, A. P. Evidence that FGF8 signaling from the midbrain-hindbrain junction regulates growth and polarity in the developing midbrain. Development. 124, 959-969 (1997).
check_url/pt/3813?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Wu, C., Whye, D., Mason, R. W., Wang, W. Efficient Differentiation of Mouse Embryonic Stem Cells into Motor Neurons. J. Vis. Exp. (64), e3813, doi:10.3791/3813 (2012).

View Video