Summary

מתא בודד פרופיל של נוירונים רשתית מתפתחות מבוגרים

Published: April 19, 2012
doi:

Summary

שיטת בידוד של תאים ברשתית יחיד הגברה הבאות של cDNAs שלהם מתואר. מתא בודד transcriptomics מגלה את מידת ההטרוגניות הנוכחי הסלולר ברקמות ו חושף גנים סמן חדשים אוכלוסיות תאים נדירות. בפרוטוקול הנלווה יכול להיות מותאם כך שיתאים רבים סוגי תאים שונים.

Abstract

אוכלוסיות מאוד מיוחדים, אבל קטן מאוד של תאים ממלאים תפקידים חשובים ברקמות רבות. זיהוי תאים מסוג סמנים ספציפיים ביטוי הגן תוכניות תת תאים נדירים ביותר כבר אתגר משתמש רגיל כולו רקמות גישות. ביטוי גנים פרופיל של תאים בודדים מאפשר גישה חסרת תקדים סוגי תאים המרכיבים רק אחוז קטן של רקמה בסך הכל 1-7. בנוסף, טכניקה זו ניתן להשתמש כדי לבחון את ביטוי הגן תוכניות באים לידי ביטוי זמני של מספר קטן של תאים במהלך מעברים התפתחותיים דינמיים 8.

בעיה זו של גיוון הסלולר עולה שוב ושוב במערכת העצבים המרכזית (CNS) שבו קשרים עצביים יכול להתרחש בין תאים שונים לגמרי 9. מספרם המדויק של תאים מסוגים שונים אינו ידוע במדויק, אך ההערכה היא כי ייתכנו כמה שרק 1000 סוגים שונים של קליפת המוח אניtself 10. הפונקציה (ים) של מעגלים עצביים מורכבים יכול לסמוך על כמה סוגי נוירונים נדירים הגנים שהם מבטאים. על ידי זיהוי סמנים חדשים וסיוע מולקולרי לסווג נוירונים שונים, הגישה מתא בודד שימושית במיוחד בניתוח של סוגי תאים במערכת העצבים. היא עשויה גם לעזור להבהיר מנגנוני ההתפתחות העצבית על ידי זיהוי גנים לידי ביטוי באופן דיפרנציאלי ושבילים גנים במהלך בשלבים המוקדמים של הפיתוח אבי העצבית.

כמו רקמה, פשוט לגשת בקלות עם מגוון עצבי ניכר, חוליות הרשתית היא מערכת מודל מעולה ללימוד תהליכי פיתוח הסלולר, בידול עצבית גיוון עצבי. עם זאת, כמו בחלקים אחרים של מערכת העצבים המרכזית, זה הגיוון הסלולרי יכול להציג בעיה לקבוע את המסלולים הגנטיים המניעים אבות רשתית לאמץ גורל תאים ספציפיים, במיוחד לנוכח העובדה photoreceptors מוט לפצות את אמאjority של האוכלוסייה הכולל תא רשתית 11. כאן אנו מדווחים על שיטה לזיהוי של תמלילי לידי ביטוי בתאי רשתית יחיד (איור 1). הטכניקה מתחיל מתא בודד פרופיל מאפשר הערכה של כמות הנוכחי הטרוגניות בתוך אוכלוסיות סלולריים שונים של הרשתית 2,4,5,12. בנוסף, שיטה זו חשף שורה של גנים מועמדים חדשים אשר עשויים לשחק תפקיד (ים) את גורל התא תהליכי קבלת ההחלטות המתרחשים קבוצות משנה של ובתאים רשתית 8. עם כמה שינויים פשוטים לפרוטוקול, טכניקה זו יכולה להיות מנוצל על רקמות שונות סוגי תאים.

Protocol

1. תא דיסוציאציה תרשים זרימה מתאר את הפרוטוקול הוא מוצג באיור 1. לקבלת מספרי קטלוג של חומרים כימיים מסוימים בשימוש בכל פרוטוקול זה, עיין בטבלה 1. לנתח את הרשתית באמבטיה PBS. במהלך הנתיחה, עדיף להסיר את הז…

Discussion

מספר המתרחבת של מחקרים חושפים שונות חזקים תא אל תא אוכלוסיות שנחשבו הומוגנית יותר מבחינת ביטוי הגנים שלהם 6,8. לפחות במקרה אחד, ביטוי הגן הזה "רעש" הוכח לשחק תפקיד ביולוגי חשוב 13. ביטוי גנים ההבדלים בין תאים בודדים הם הסתירו באמצעות מסורתיים כולו רקמות…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Materials

Reaction mixtures:

Cell Lysis buffer

0.45 μ 10X reaction buffer (100 mM Tris-HCl pH 8.3, 500 mM KCl, 2 mM MgCl2)
0.23 μl 10% NP-40
0.23 μl 0.1M DTT
0.05 μl RNase Inhibitor (40 U/μl)
0.05 μl SUPERase-In (20U/μl)
0.13 μl Modified Oligo d(T) primer
(TATAGAATTCGCGGCCGCTCGCGATTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTT)
0.09 μl dNTPs (2.5 mM each)
3.27 μl dH20 (use molecular biology grade for all reaction mixtures)

Tailing Reaction Mixture

0.18 μl 100 mM dATP
0.6 μl 10X reaction buffer(100 mM Tris-HCl pH 8.3, 500 mM KCl, 2 mM MgCl2)
4.62 μl dH2O
0.3 μl TdT (400 U/μl)
0.3 μl RNase H (2 U/μl)

PCR Reaction Mixture

10 μl 10x Ex-Taq HS Buffer with Mg2+
10 μl 2.5 mM dNTPs
0.2 μl Modified Oligo d(T) primer (10 μg/μl)
1 μl Ex-Taq HS Polymerase (5U/μl)
68.8 μl dH2O

10X One-Phor All Buffer

0.5M Potassium acetate
0.1M Tris acetate (pH 7.6)
0.1M Magnesium acetate

Solutions:

10X Phosphate buffered saline (1 liter)

80g NaCl
2g KCl
14.4 g Na2PO4
2.4 g KH2PO4
adjust to pH 7.4 with NaOH and bring the volume to 1 liter with water

Name of the reagent Company Catalog number Comments
Vertical needle puller David Kopf Instruments Model 750  
Microcapillary tubes Sigma P0674  
Aspirator tube assembly Sigma A5177  
Corning filter tips (100-1000 μl Fisher Scientific 07-200-265  
Hank’s balanced salt solution (1X) Lonza BioWhittaker 10-508F  
HEPES buffer (1M) MP Biomedicals 091688449  
Bovine serum albumin Sigma A9418  
DNase I Roche 04716728001  
papain Worthington LS03126  
Superscript III Invitrogen 18080-044  
RNase Inhibitor Applied Biosystems AM2682 These two RNase inhibitors seem to work the best. Contaminants present in other inhibitors can contribute to a background smear.
SUPERase-In Applied Biosystems AM2694 These two RNase inhibitors seem to work the best. Contaminants present in other inhibitors can contribute to a background smear.
Modified Oligo d(T) primer (gel purified) Oligos ETC   We have used primers purchased from many different companies and have seen the most reliable and reproducible results from Oligos ETC.
T4 gene 32 protein New England Biolabs M0300L  
Exonuclease I New England Biolabs M0293S  
TdT Roche 3 333 574 As with other reagents, using a TdT enzyme from other companies gave more variable results.
RNase H Invitrogen 18021-014  
Ex-Taq HS Polymerase Takara RR006A  
Biotin N6-ddATP Enzo Biosciences 42809  

Table 1. Specific reagents and equipment.

Referências

  1. Tietjen, I. Single-cell transcriptional analysis of neuronal progenitors. Neuron. 38, 161-175 (2003).
  2. Trimarchi, J. M. Molecular heterogeneity of developing retinal ganglion and amacrine cells revealed through single cell gene expression profiling. J. Comp. Neurol. 502, 1047-1065 (2007).
  3. Trimarchi, J. M., Cho, S. H., Cepko, C. L. Identification of genes expressed preferentially in the developing peripheral margin of the optic cup. Dev. Dyn. 238, 2327-2327 (2009).
  4. Cherry, T. J., Trimarchi, J. M., Stadler, M. B., Cepko, C. L. Development and diversification of retinal amacrine interneurons at single cell resolution. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 106, 9495-9500 (2009).
  5. Roesch, K. The transcriptome of retinal Muller glial cells. J. Comp. Neurol. 509, 225-238 (2008).
  6. Ramos, C. A. Evidence for diversity in transcriptional profiles of single hematopoietic stem cells. PLoS Genet. 2, e159 (2006).
  7. Chiang, M. K., Melton, D. A. Single-cell transcript analysis of pancreas development. Dev. Cell. 4, 383-393 (2003).
  8. Trimarchi, J. M., Stadler, M. B., Cepko, C. L. Individual retinal progenitor cells display extensive heterogeneity of gene expression. PLoS ONE. 3, e1588 (2008).
  9. Nelson, S. B., Sugino, K., Hempel, C. M. The problem of neuronal cell types: a physiological genomics approach. Trends Neurosci. 29, 339-345 (2006).
  10. Stevens, C. F. Neuronal diversity: too many cell types for comfort. Curr. Biol. 8, R708-R710 (1998).
  11. Cepko, C. L., Austin, C. P., Yang, X., Alexiades, M., Ezzeddine, D. Cell fate determination in the vertebrate retina. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 93, 589-595 (1996).
  12. Kim, D. S. Identification of molecular markers of bipolar cells in the murine retina. J. Comp. Neurol. 507, 1795-1810 (2008).
  13. Chang, H. H., Hemberg, M., Barahona, M., Ingber, D. E., Huang, S. Transcriptome-wide noise controls lineage choice in mammalian progenitor cells. Nature. 453, 544-547 (2008).
  14. Levsky, J. M., Singer, R. H. Gene expression and the myth of the average cell. Trends Cell Biol. 13, 4-6 (2003).
  15. Livesey, F. J., Cepko, C. L. Vertebrate neural cell-fate determination: lessons from the retina. Nat. Rev. Neurosci. 2, 109-118 (2001).
  16. Masland, R. H., Raviola, E. Confronting complexity: strategies for understanding the microcircuitry of the retina. Annu. Rev. Neurosci. 23, 249-284 (2000).
  17. Blackshaw, S. Genomic analysis of mouse retinal development. PLoS Biol. 2, e247 (2004).
  18. Livesey, F. J., Young, T. L., Cepko, C. L. An analysis of the gene expression program of mammalian neural progenitor cells. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 101, 1374-1379 (2004).
  19. Chowers, I. Identification of novel genes preferentially expressed in the retina using a custom human retina cDNA microarray. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 44, 3732-3741 (2003).
  20. Clarke, G. C., Leavitt, R. A., Andrews, B. R., Hayden, D. F., Lumsden, M. R., J, C., McInnes, R. R. A one-hit model of cell death in inherited neuronal degenerations. Nature. 406, 195-199 (2000).
  21. McEvoy, J. F. -. O., Zhang, J., Nemeth, J., Brennan, K., Bradley, R., Krafcik, C., Rodriguez-Galindo, F., Wilson, C., Xiong, M., Lozano, S. Coexpression of normally incompatible developmental pathways in retinoblastoma genesis. Cancer Cell. 20, 260-275 (2011).
  22. Gelder, R. N. V. a. n. Amplified RNA synthesized from limited quantities of heterogeneous cDNA. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 87, 1663-1667 (1990).
  23. Ginsberg, S. D., Che, S. Expression profile analysis within the human hippocampus: comparison of CA1 and CA3 pyramidal neurons. J. Comp. Neurol. 487, 107-118 (2005).
  24. Iscove, N. N. Representation is faithfully preserved in global cDNA amplified exponentially from sub-picogram quantities of mRNA. Nat. Biotechnol. 20, 940-943 (2002).
  25. Subkhankulova, T., Livesey, F. J. Comparative evaluation of linear and exponential amplification techniques for expression profiling at the single-cell level. Genome Biol. 7, R18 (2006).
check_url/pt/3824?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Goetz, J. J., Trimarchi, J. M. Single-cell Profiling of Developing and Mature Retinal Neurons. J. Vis. Exp. (62), e3824, doi:10.3791/3824 (2012).

View Video