Summary

Måling af cellulære Kemotaksi med ECIS / Taxa

Published: April 01, 2012
doi:

Summary

Den ECIS / Taxa system er en automatiseret, real-time analyse, der måler cellulære kemotaksi. I dette assay flytte cellerne under et lag af agarose at nå frem til et mål elektrode. Cellulær bevægelse måles ved indtræden af ​​resistens over for vekselstrøm 0.

Abstract

Cellulære bevægelse som reaktion på ydre stimuli er afgørende for mange cellulære processer, herunder sårheling, inflammation og respons på infektion. En almindelig metode til at måle kemotaksi er Boyden kammer assay, i hvilket celler og kemotiltrækkende er adskilt af en porøs membran. Som celler migrerer gennem membranen mod det kemotiltrækkende de klæber til undersiden af membranen eller kan opdeles i de underliggende mediet, og efterfølgende farvet og visuelt tælles 1. Ved denne fremgangsmåde celler eksponeres for en stejl og transient kemoattraktant gradient, hvilket menes at være en dårlig gengivelse af gradienter, der findes i væv to.

Et andet assaysystem, under-agarose-kemotaxi-assay, 3, 4 foranstaltninger cellebevægelse over et fast substrat med en tynd vandig film, der dannes under agarose lag. Den gradient, der udvikler i agarose er lavvandet, og menes at være en appropriate repræsentation af naturligt forekommende gradienter. Kemotaksi kan vurderes ved mikroskopisk afbildning af den tilbagelagte afstand. Både Boyden-kammer-assayet og under-agarose assay sædvanligvis udformet som slutpunkt assays.

Den automatiserede ECIS / Taxa system kombinerer under-agarose tilgang med Electric Cell-substrat Impedans Sensing (ECIS) 5, 6. I dette assay, er target elektroder placeret i hver af 8 kamre. En stor modelektrode løber gennem hver af de 8 kamre (figur 2). Hvert kammer er fyldt med agarose og to små brønde er snit i agarosen på hver side af målet elektroden. En brønd fyldes med prøven cellepopulation, medens den anden holder kilder spredende kemoattraktant (figur 3). Strøm ledes gennem systemet kan anvendes til at bestemme ændringen i modstand, der opstår som celler passerer hen over mål-elektroden. Celler på målet electrode forøge modstandsdygtigheden af systemet 6. Desuden udgør hurtige fluktuationer i modstanden ændringer i interaktioner af celler med elektrodeoverfladen og er indikative for løbende cellulære formændringer. Den ECIS / Taxis system kan måle bevægelsen af ​​cellepopulationen i real-tid over længere tid, men er også følsom nok til at detektere ankomsten af ​​en enkelt celle ved målet elektroden.

Dictyostelium discoidium vides at migrere i nærvær af en folat gradient 7, 8 og kemotaktiske respons kan måles nøjagtigt ved ECIS / Taxis 9. Leukocytkemotaxis, har som reaktion på SDF1α og kemotaxi antagonister også blevet målt med ECIS / Taxis 10, 11. Et eksempel på leukocyt respons på SDF1α er vist i fig 1.

Protocol

1. ECIS / Taxa Electrode Forberedelse Guld overflade ECIS / taxaer elektrodesæt (bestående af 8 kamre pr objektglas) først stabiliseres ved forbehandling med steril 10 mM cystein i deioniseret vand (dH2O) i 15 minutter ved stuetemperatur under sterile betingelser. Aspirer cystein opløsning fra hver elektrode kammer skylles 3 gange med sterilt dH2O, og erstat med 250 ul komplet medium (RPMI 1640, 10% FBS, 25 mM HEPES-puffer). Slut elektrodeopstillingen at kontakte …

Discussion

Nye egenskaber ECIS / Taxis analysen omfatter dens evne til at automatisere indsamling af data i realtid, som cellerne reagerer på chemoattraktant. Mens den mest almindelige anvendelse af denne teknologi er at måle cellulære responser til individuelle kemotaktiske gradienter eller gradienter sammensat af blandinger af kemotaksi agonister og antagonister, til ECIS / taxier fremgangsmåde er også egnet til variationer af disse konfigurationer, som kan være ganske nyttige i Vurderingen af ​​cellulær respons. Der …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af tilskud fra National Institutes of Health (ES07408 og EB00208).

Materials

Name of Reagent Company Catalog number Comments
ECIS Zθ Applied Biophysics   http://www.biophysics.com/prodducts_Ecisz0.php
ECIS Electrode Array Applied Biophysics 8W Chemotaxis http://www.biophysics.com/cultureware.php
Seakem GTG agarose BioWhittaker Molecular Applications 50070  
RPMI1640 Cellgro 10-040  
HyClone Fetal Bovine Serum Thermo Scientific SH300703  
Penicillin/Streptomycin MP Biomedicals 1670049 Penicillin 5,000 IU/ml; Streptomycin 5 mg/ml
HEPES Buffer MP Biomedicals 1688449 1M solution, cell culture grade
14 Gauge stainless steel Cannula (2) 4 inch General Laboratory Supply 5-8365-1 Blunt point

Referências

  1. Boyden, S. The chemotactic effect of mixtures of antibody and antigen on polymorphonuclear leucocytes. J. Exp. Med. 115, 453-466 (1962).
  2. Lauffenburger, D. A., Tranquillo, R. T., Zigmond, S. H. Concentration gradients of chemotactic factors in chemotaxis assays. Methods Enzymol. 162, 85-101 (1988).
  3. Nelson, R. D., Quie, P. G., Simmons, R. L. Chemotaxis under agarose: a new and simple method for measuring chemotaxis and spontaneous migration of human polymorphonuclear leukocytes and monocytes. J. Immunol. 115, 1650-1650 (1975).
  4. Newton-Nash, D. K., Tonellato, P., Swiersz, M., Abramoff, P. Assessment of chemokinetic behavior of inflammatory lung macrophages in a linear under-agarose assay. J. Leukoc. Biol. 48, 297-305 (1990).
  5. Giaever, I., Keese, C. R. Monitoring fibroblast behavior in tissue culture with an applied electric field. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 81, 3761-374 (1984).
  6. Keese, C. G. I. A Whole Cell Biosensor bsed on Cell-Substrate Interactions. IEEE Engineering in Medicine and Biology Society. 12, 500-501 (1990).
  7. Laevsky, G., Knecht, D. A. Cross-linking of actin filaments by myosin II is a major contributor to cortical integrity and cell motility in restrictive environments. J. Cell. Sci. 116, 3761-3770 (2003).
  8. Condeelis, J., Bresnick, A., Demma, M., Dharmawardhane, S., Eddy, R., Hall, A. L., Sauterer, R., Warren, V. Mechanisms of amoeboid chemotaxis: an evaluation of the cortical expansion. 11, 5-6 (1990).
  9. Hadjout, N., Laevsky, G., Knecht, D. A., Lynes, M. A. Automated real-time measurement of chemotactic cell motility. Biotechniques. 31, 1130-1138 (2001).
  10. Hadjout, N., Yin, X., Knecht, D. A., Lynes, M. A. Automated real-time measurements of leukocyte chemotaxis. J. Immunol. Methods. 320, 70-80 (2007).
  11. Yin, X., Knecht, D. A., Lynes, M. A. Metallothionein mediates leukocyte chemotaxis. BMC Immunol. 6, 21-21 (2005).
  12. Lundien, M. C., Mohammed, K. A., Nasreen, N., Tepper, R. S., Hardwick, J. A., Sanders, K. L., Van Horn, R. D., Antony, V. B. Induction of MCP-1 expression in airway epithelial cells: role of CCR2 receptor in airway epithelial injury. J. Clin. Immunol. 22, 144-152 (2002).
  13. Zudaire, E., Cuesta, N., Murty, V. The aryl hydrocarbon receptor repressor is a putative tumor suppressor gene in multiple human cancers. J. Clin. Invest. 118, 640-650 (2008).
  14. Opp, D., Wafula, B., Lim, J., Huang, E., Lo, J. C., Lo, C. M. Use of electric cell-substrate impedance sensing to assess in vitro cytotoxicity. Biosens. Bioelectron. 24, 2625-269 (2009).
  15. Foxman, E. F., Kunkel, E. J., Butcher, E. C. Integrating conflicting chemotactic signals. The role of memory in leukocyte navigation. J. Cell. Biol. 147, 577-588 (1999).
  16. Heit, B., Tavener, S., Raharjo, E., Kubes, P. An intracellular signaling hierarchy determines direction of migration in opposing chemotactic gradients. J. Cell. Biol. 159, 91-102 (1999).
check_url/pt/3840?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Pietrosimone, K. M., Yin, X., Knecht, D. A., Lynes, M. A. Measurement of Cellular Chemotaxis with ECIS/Taxis. J. Vis. Exp. (62), e3840, doi:10.3791/3840 (2012).

View Video