Summary

のためのシステム<em> ex vivoで</em胚膵臓>培養

Published: August 27, 2012
doi:

Summary

ここでは、マウス胚性膵臓の分離、培養および操作のための方法を説明します。これは、優れたを表し<em> ex vivoで</em形態形成、分化、成長を含む膵臓開発のさまざまな側面を研究するための>システム。膵原外植片は、数日間培養し、ホールマウント蛍光免疫とライブイメージングなど、さまざまなアプリケーションの範囲で使用することができます。

Abstract

膵臓は消化酵素の生産と血糖値1の規制を含め、私たちの体の重要な機能を制御します。過去10年間に多くの研究では、膵臓の器官形成を理解するための強固な基盤に貢献してきたが、重要なギャップが早期膵臓形成の2の我々の知識に固執する。これらの初期のイベントの完全な理解は、この臓器の開発への洞察を提供するだけでなく、糖尿病や膵臓癌などの膵臓をターゲット難病、になります。最後に、この情報は、糖尿病との関連で、細胞補充療法を開発するための青写真を生成します。

胚発生時、膵臓はマウス胚における3,4日胚(E)は9.5で、背側と腹側前腸内胚葉の異なる胚の増生に由来する。両方の派生物は、固体として周囲の上皮間葉に裏返しにする完全に成熟した器官2,5,6を生成するために、分岐や分化、増殖を受けるリットルの芽、。最近の証拠は、インスリン産生β細胞を含む膵臓細胞系譜、の成長や分化、分岐膵臓上皮7,8内の適切な組織アーキテクチャ、上皮リモデリングと細胞の位置に依存していることを示唆している。しかし、分枝形態形成方法と発生し、膵臓の増殖と分化との間で調整されているほとんど知られていない。これは、形態形成のイベントは非常に動的でありながら、これらの発達過程に関する現在の知識は、固定された試料の分析にほぼ独占的に依存してきたという事実のために一部になっています。

ここでは、開発膵臓( 図1)の直接可視化を可能にするガラスボトムディッシュ上でex vivoで解剖し、培養マウス胚膵芽する方法について検討する。このカルトUREシステムは、理想的には、特に、ライブセルイメージング共焦点レーザー走査顕微鏡と、ために考案されています。膵臓外植片だけでなく、野生型マウスの胚から調製しただけでなく、遺伝子組み換えマウス系統( 例えば、トランスジェニックやノックアウト)から、変異体の表現型のリアルタイムの研究を可能にすることができます。また、このex vivoで培養系 、増殖、成長、伸長、分岐、細管形成と分化に関する定量的なデータを取得できるように、膵臓の開発に化学化合物の効果を研究するために貴重なものです。結論として、高分解能イメージングを組み合わせるex vivoでの膵臓移植片培養法の開発は、彼らが開発したマウス胚の中で発生した形態形成と分化のイベントを観察するための強力なプラットフォームを提供します。

Protocol

ここで説明されたプロトコルは、もともとパーシバルとスラック9に記載されており、共焦点顕微鏡検査用に最適化手法から適応されています。 1。グラスボトム培養皿のコーティング次の手順は、層流フード内の無菌条件下で行われるべきである。 膵臓外植片を直径20mmガラス底マイクロウェル( 例えばマテック株式会社)と3…

Discussion

膵臓運命が指定されると、膵臓前駆細胞は、最終的に成熟しており、機能的な臓器2,4を形成するために大規模な増殖、分化、形態形成を受ける。現時点では、分岐方法は、膵臓で行われ、それがどのように前駆細胞の増殖と分化に接続されているほとんど知られていない。膵臓外植培養 、ex vivo 5,9,11、これらのプロセスを解明するための理想的なシステムを表します…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

の研究 スパニョーリラボ。ヘルムホルツ協会、FP7-IRG-2008-ENDOPANC助成とERC-2009-開始HEPATOPANCREATIC助成金によって賄われています。

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Antibodies:
Carboxypeptidase
E-cadherin
F-actin
Glucagon
Insulin
β1-integrin
Pdx1
Pdx1
Phospho-Histone H3
AbD Serotec
Invitrogen
Molecular Probes
ImmunoStar
Millipore
Millipore
Abcam
Hybridoma bank
Cell Signalling
1810-0006
13-1900
A-12373
20076
4011-01
MAB1997
ab47267
F109-D12
9706
 
Basal Medium Eagle (BME) Sigma B1522-500ML Kept in sterile conditions
Cell culture grade water PAA S15-012 Kept in sterile conditions
Culture dishes (glass-bottomed), 35-mm MatTek Corporation P35G-0-20-C  
Donkey Serum Chemicon S30-100 ml  
Fetal calf serum Gold PAA A15-151 Kept in sterile conditions
Fibronectin Invitrogen 330100-8 Stock sol. 1 mg/ml in cell culture grade water
Gentamicin Invitrogen 15750-037 Kept in sterile conditions
Glutamine Invitrogen 25030-024 Kept in sterile conditions
4-well Multidishes Nunc 176740  
Microscopes:
Inverted Confocal Microscope (LSM 700)
Stereomicroscope (Discovery V12)
Zeiss

Zeiss
  Objectives:
C-Apochromat 10X / 0.45 W M27 (work. dist. 1.8 mm; imaging depth ~100 mm); C-Apochromat 40X / 1.2 W Corr M27 (work. dist. 0.28 mm; ~imaging depth 50 μm)

Transillumination from below and fiber-optic illumination from above
Paraformaldehyde Roth 0335.3 Stock solution 20%
Pasteur Pipet (Glass), 150 mm VWR HECH567/1  
Penicillin/Streptomycin PAA P11-010 Kept in sterile conditions
Petri dishes, 60 mm Greiner Bio-One 628102  
Petri dishes, 35 mm Greiner Bio-One 627161  
1X PBS, pH7.4 PAA H15-002 Kept in sterile conditions
Spring Scissors 8 mm blade curved Fine Science Tools 15023-10  
Triton-X100 Roth 3051.3  
Watchmaker’s foreceps Dumont #5 Roth K342.1  

Referências

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Citar este artigo
Petzold, K. M., Spagnoli, F. M. A System for ex vivo Culturing of Embryonic Pancreas. J. Vis. Exp. (66), e3979, doi:10.3791/3979 (2012).

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