Summary

زرع البنكرياس من الجزر في الكبسولة الكلى من الفئران من السكري

Published: October 31, 2007
doi:

Summary

وقد تم تطوير بروتوكول لدينا نظيفة وسهولة إيصال الجزر أو الخلايا تحت الكبسولة الكلى من الفئران. وتتركز الخلايا في الكريات في الأنابيب المستخدمة النهائية لزرع الخلايا تحت الكبسولة الكلى. سهولة هذا الأسلوب يقلل من الإجهاد على الخلايا والماوس.

Abstract

وقد تم تطوير بروتوكول لدينا نظيفة وسهولة إيصال الجزر أو الخلايا تحت الكبسولة الكلى السكري أو من الفئران العادية. وجدنا أنه من الأسهل أن تركز على الجزر أو في خلايا الكريات في الأنبوب التسليم النهائي (PE50) تستخدم لزرع الخلايا تحت الكبسولة الكلى. توفر هذه التقنية على حد سواء بسرعة وسهولة مع الحد من أي ضغوط لا داعي لها على الخلايا أو الماوس.

التحميل : تسويتها ، منتقاة ، ويستنشق بعناية أو خلايا الجزر مكعبات قبالة الجزء السفلي من أنبوب microcentrifuge 1.5 مل باستخدام pipetteman P200 وعلى التوالي ، غيض ماصة رقيقة الجدار. ومرفق طول أنابيب PE50 إلى الطرف ماصة تستخدم محول السيليكون الصغيرة الأنابيب. ويسمح للخلايا لتسوية ، في تلميح ، ومن ثم يتم نقلها إلى أنابيب PE50 عن طريق الاتصال برقم pipetteman ببطء. مرة واحدة في الخلايا قرب نهاية الأنبوب PE50 ، يتم إجراء شبك ويتم وضع أنابيب محول السيليكون خلال شبك. ينقل الأنبوب PE50 إلى 15 مل مل مخروطي يحتوي على قطع الماصة 5 ، وسجلت أكثر من الأنبوب PE50 جانب الماصة 5 مل لمنع الطرد المركزي خلال الشباك. ويسمح للخلايا لتصل إلى 1000 دورة في الدقيقة ، وتوقفت.

زرع : الفئران هي تخدير المتلقي ، حلق ، وتنظيفها. يتم إجراء شق صغير في الجهة اليمنى من الماوس وتتعرض الكلى. يتم الاحتفاظ في الكلى ، والدهون ، والأنسجة رطبة مع مسحة ملحي عادي. ويرد في نهاية البعيدة للPE50 إلى محرك هاميلتون حقنة المسمار ، وتحتوي على معلومات سرية ماصة ، وذلك باستخدام أنابيب محول السيليكون. وقدم نيك صغيرة على الجانب الجهة اليمنى في الكلى ، وليس غاية ولا كبيرة عميق جدا. نهاية مشطوف من أنابيب PE50 ، أقرب الخلايا ، وضعت بعناية تحت الكبسولة ، يتم نقل الأنابيب حول بلطف لافساح المجال بينما ينظف المالحة العادية ؛ كبسولة الجافة يمكن أن تمزق بسهولة. يتم تسليم فقاعة الهواء الصغيرة تحت الكبسولة ببطء عن طريق الاتصال برقم محرك المسمار المحاقن. ثم يتم تسليم الجزر ببطء وراء فقاعة الهواء. يتم الاحتفاظ بمجرد تسليم الجزر التوازن الكلى وأكتوي من المواهب مع الحرارة المنخفضة. يتم وضع الكلى مرة أخرى في التجويف وتتم خياطة الجلد والغشاء البريتوني وتدبيس. وتعامل على الفور مع الفئران فلونيكسين والبوبرينورفين مربع وضعت في قفص على وسادة التدفئة.

Protocol

إعداد الفشوت لزرع (تكساس) تحت المجهر المقلوب ، ومن ناحية اختيار الجزر باستخدام pipetman P200 ومباشرة من طرف الماصة الجزر مثقف في صفيحة 100mm. 100 عدد الجزر في وقت واحد ونقل في كل أنبوب microcentrifuge (~ 500 الجز…

Discussion

هذا البروتوكول يوفر خيار عملي وفعال لإيصال نظيفة بسهولة والجزر أو الخلايا تحت الكبسولة الكلى السكري أو من الفئران العادية. أسلوب التركيز والتكوير الجزر أو الخلايا في أنابيب التسليم النهائي (PE50) تستخدم لزرع الخلايا تحت الكبسولة الكلى توفر طريقة سهلة وفعالة لزرع الخلايا مع الحد …

Acknowledgements

UCSF مركز السكري. NIH UCSF الأساسية DERC جزيرة. JDRF. ايفسكان شركة جونسون آند جونسون الشركة.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Surgical gloves   Fisher 11-394-95(sz)  
Surgical scrub sponges   Moore medical 42940AK  
Forceps   Miltex 6-114 and 6-26 2 with teeth, 2 straight
Dissecting scissors n=2   Miltex 5-290  
Oster razor (sz. 40 blade)   Fisher 01-305-10B  
4×4 Sterile gauze pads   Moore Medical 08252AK  
Povidone Iodine pads   Moore Medical 08486AK  
Alcohol pads   Fisher 14-819-2  
Heating pad   Moore Medical 42508AK  
23G or 25G needles       1″ long
Cidex solution   Moore Medical 07535AK for cleaning/santizing instruments
PE50 polyethylene tubing   BD 427411 PE50, 0.965mm O.D. x 0.58mm I.D.
Cidex + 28 day soln   Moore 35625AK  
Silicone tubing   Spectrum Chromat. 123732 5/32”OD x 1/32” ID
Instrument sterilizing container   Moore Medical 39074AK  
Straight Pipet Tips   TipOne 1111-0810 sterile
Glass syringe w/screw-drive   Hamilton 1001  
Cauterizing tool   Roboz RS230  
Needle Holder   Moore Medical 41-067  
5-0 silk   Look 754B for suture (6-C)
Cotton tipped swab   Moore Medical    
9mm autoclip stapler   BD 7630  
9mm staples   BD 7631  
9mm staple remover   BD 7637  

Referências

  1. Tang, Q., Henriksen, K. J., Bi, M., Finger, E. B., Szot, G., Ye, J., Masteller, E. L., McDevitt, H., Bonyhadi, M., Bluestone, J. A. In vitro-expanded antigen-specific regulatory T cells suppress autoimmune diabetes. J Exp Med. 199, 1455-1465 (2004).
  2. Rulifson, I. C., Szot, G. L., Palmer, E., Bluestone, J. A. Inability to induce tolerance through direct antigen presentation. Am J Transplant. 2, 510-519 (2002).
  3. Lenschow, D. J., Zeng, Y., Hathcock, K. S., Zuckerman, L. A., Freeman, G., Thistlethwaite, J. R., Gray, G. S., Hodes, R. J., Bluestone, J. A. Inhibition of transplant rejection following treatment with anti-B7-2 and anti-B7-1 antibodies. Transplantation. Transplantation. 60, 1171-1178 (1995).
  4. Lenschow, D. J., Zeng, Y., Thistlethwaite, J. R., Montag, A., Brady, W., Gibson, M. G., Linsley, P. S., Bluestone, J. A. Long-term survival of xenogeneic pancreatic islet grafts induced by CTLA4lg. Science. 257, 789-792 (1992).
check_url/pt/404?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Szot, G. L., Koudria, P., Bluestone, J. A. Transplantation of Pancreatic Islets Into the Kidney Capsule of Diabetic Mice. J. Vis. Exp. (9), e404, doi:10.3791/404 (2007).

View Video