Il trapianto di isole pancreatiche nella capsula renale di topi diabetici
Summary
Il nostro protocollo è stato sviluppato per fornire in modo pulito e facilmente le cellule o isolotti sotto la capsula renale di topi. Le cellule sono concentrate in pellet nel tubo finale utilizzato per il trapianto delle cellule sotto la capsula renale. La facilità di questa tecnica riduce lo stress per le cellule e il mouse.
Abstract
Il nostro protocollo è stato sviluppato per fornire in modo pulito e facilmente le cellule o isolotti sotto la capsula renale di topi diabetici o normale. Abbiamo scoperto che era più facile concentrare le isolette o cellule in pellet nel tubo di consegna finale (PE50) utilizzato per il trapianto di cellule sotto la capsula renale. Questa tecnica fornisce velocità e facilità, riducendo qualsiasi sforzo eccessivo per le celle o per il mouse.
Caricamento in corso: Fondata, raccolte a mano, isolotti o cellule pellet sono accuratamente aspirato dal fondo di una provetta 1,5 ml con un pipetteman P200 e un rettilineo, a parete sottile punta della pipetta. Una lunghezza di PE50 tubo è attaccato alla punta della pipetta con un piccolo tubo di silicone adattatore. Le cellule sono permesso di stabilirsi, in punta, e poi vengono trasferiti al tubo PE50 lentamente componendo il pipetteman. Una volta che le cellule sono quasi alla fine del tubo PE50, un punto di discontinuità è fatto e il tubo in silicone adattatore è posizionato sopra il nodo. La PE50 tubo è trasferito ad un 15 ml conica contenente una riduzione del 5 pipetta ml, e il tubo PE50 è registrato sul lato della pipetta 5 mL per evitare il curling durante la centrifugazione. Le cellule sono permesso di raggiungere 1.000 giri al minuto e si fermò.
Trapianto: topi destinatari sono anestetizzati, rasato e pulito. Una piccola incisione viene fatta sul fianco sinistro del mouse e il rene è esposto. L', rene grasso e il tessuto sono mantenute umide con normale soluzione salina tampone. L'estremità distale del PE50 è attaccato ad una siringa Hamilton azionamento della vite, contenente un puntale, utilizzando il tubo adattatore silicone. Un piccolo nick è fatto sul lato fianco destro del rene, non troppo grande né troppo profondo. L'estremità smussata del tubo PE50, più vicino alle celle, è accuratamente posizionato sotto la capsula, il tubo viene spostato delicatamente per fare spazio, mentre tampone soluzione fisiologica; una capsula secca può strappare facilmente. Una piccola bolla d'aria è fornito sotto la capsula lentamente componendo il disco vite siringa. Isolotti sono poi lentamente consegnati dietro la bolla d'aria. Omeostasi renale una volta le isole sono state consegnate viene mantenuta e la knick è cauterizzato a basse temperature. Il rene è posto nuovamente dentro la cavità ed il peritoneo e la pelle sono suturate e pinzati. I topi sono immediatamente trattati con Buprenorfina e Flunixin mq e posto in una gabbia su una piastra elettrica.
Protocol
Discussion
Questo protocollo fornisce una soluzione pratica ed efficiente per fornire in modo pulito e facilmente le cellule o isolotti sotto la capsula renale di topi diabetici o normale. La tecnica di concentrazione e cubettatura le isolette o cellule nel tubo di consegna finale (PE50) utilizzato per il trapianto di cellule sotto la capsula renale offre un metodo semplice ed efficace di trapianto di cellule, riducendo qualsiasi sforzo eccessivo per le celle o per il mouse.
Acknowledgements
UCSF Diabetes Center. NIH UCSF DERC Islet Core. JDRF. LifeScan Inc. Johnson Johnson & Company.
Materials
| Material Name | Tipo | Company | Catalogue Number | Comment |
|---|---|---|---|---|
| Surgical gloves | Fisher | 11-394-95(sz) | ||
| Surgical scrub sponges | Moore medical | 42940AK | ||
| Forceps | Miltex | 6-114 and 6-26 | 2 with teeth, 2 straight | |
| Dissecting scissors n=2 | Miltex | 5-290 | ||
| Oster razor (sz. 40 blade) | Fisher | 01-305-10B | ||
| 4×4 Sterile gauze pads | Moore Medical | 08252AK | ||
| Povidone Iodine pads | Moore Medical | 08486AK | ||
| Alcohol pads | Fisher | 14-819-2 | ||
| Heating pad | Moore Medical | 42508AK | ||
| 23G or 25G needles | 1″ long | |||
| Cidex solution | Moore Medical | 07535AK | for cleaning/santizing instruments | |
| PE50 polyethylene tubing | BD | 427411 | PE50, 0.965mm O.D. x 0.58mm I.D. | |
| Cidex + 28 day soln | Moore | 35625AK | ||
| Silicone tubing | Spectrum Chromat. | 123732 | 5/32”OD x 1/32” ID | |
| Instrument sterilizing container | Moore Medical | 39074AK | ||
| Straight Pipet Tips | TipOne | 1111-0810 | sterile | |
| Glass syringe w/screw-drive | Hamilton | 1001 | ||
| Cauterizing tool | Roboz | RS230 | ||
| Needle Holder | Moore Medical | 41-067 | ||
| 5-0 silk | Look | 754B | for suture (6-C) | |
| Cotton tipped swab | Moore Medical | |||
| 9mm autoclip stapler | BD | 7630 | ||
| 9mm staples | BD | 7631 | ||
| 9mm staple remover | BD | 7637 |
Referências
- Tang, Q., Henriksen, K. J., Bi, M., Finger, E. B., Szot, G., Ye, J., Masteller, E. L., McDevitt, H., Bonyhadi, M., Bluestone, J. A. In vitro-expanded antigen-specific regulatory T cells suppress autoimmune diabetes. J Exp Med. 199, 1455-1465 (2004).
- Rulifson, I. C., Szot, G. L., Palmer, E., Bluestone, J. A. Inability to induce tolerance through direct antigen presentation. Am J Transplant. 2, 510-519 (2002).
- Lenschow, D. J., Zeng, Y., Hathcock, K. S., Zuckerman, L. A., Freeman, G., Thistlethwaite, J. R., Gray, G. S., Hodes, R. J., Bluestone, J. A. Inhibition of transplant rejection following treatment with anti-B7-2 and anti-B7-1 antibodies. Transplantation. Transplantation. 60, 1171-1178 (1995).
- Lenschow, D. J., Zeng, Y., Thistlethwaite, J. R., Montag, A., Brady, W., Gibson, M. G., Linsley, P. S., Bluestone, J. A. Long-term survival of xenogeneic pancreatic islet grafts induced by CTLA4lg. Science. 257, 789-792 (1992).
