Summary

En bekväm och General uttryck plattform för produktion av utsöndrade proteiner från humana celler

Published: July 31, 2012
doi:

Summary

I den post-genomik eran är tillgången av rekombinanta proteiner i nativa konformationer avgörande för strukturella, funktionella och terapeutisk forskning och utveckling. Här beskriver vi ett test-och storskaliga proteinuttryck system i humana embryonala njurceller 293T som kan användas för att tillverka en mängd olika rekombinanta proteiner.

Abstract

Rekombinant proteinuttryck i bakterier, typiskt E. coli, har varit den mest framgångsrika strategin för milligram mängden uttryck av proteiner. Emellertid prokaryota värdar är ofta inte lika lämpliga för uttryck av humana, virala eller eukaryota proteiner på grund av toxiciteten hos det främmande makromolekyl, skillnader i proteinets veckning maskinen, eller på grund av avsaknaden av särskilda co-eller post-translationella modifieringar i bakterier. Expressionssystem baserade på jäst (P. pastoris eller S. cerevisiae) 1,2, bakulovirus-infekterade insektsceller (S. frugiperda eller T. ni) celler 3, och cellfria in vitro-translation system 2,4 har med framgång använts för att producera däggdjursproteiner. Intuitivt, är den bästa matchningen att använda en däggdjursvärd för att säkerställa produktion av rekombinanta proteiner som innehåller de korrekta posttranslationella modifieringar. Ett antal däggdjurscellinjer (Humana embryonala KidNey (HEK) 293, har C V-1-celler i O rigin bär S V40 larget T-antigen (COS), kinesisk hamsterovarie (CHO), och andra) har med framgång används för att överuttrycka milligrammängder av ett antal humana proteiner 5-9. Emellertid är fördelarna med att använda däggdjursceller ofta motverkas av högre kostnader, krav på speciell laboratorieutrustning, lägre utbyten protein, och de långa för att utveckla stabila linjer expressionssystem cell. Ökad avkastning och producerar proteiner snabbare, samtidigt som kostnaderna hålls låga, är viktiga faktorer för många akademiska och kommersiella laboratorier.

Här beskriver vi ett tids-och kostnadseffektiv, två delar förfarande för uttrycket av utsöndrade humana proteiner från fastsittande HEK 293T-celler. Detta system är kapabel att producera mikrogram till milligrammängder av funktionellt protein för strukturella, biofysikaliska och biokemiska studier. Den första delen, flera konstruktioner av genen av intresse är gerd parallellt och övergående till vidhäftande HEK 293T-celler i liten skala. Detektering och analys av rekombinant protein som utsöndras i cellodlingsmediet utförs genom western blot-analys med användning av kommersiellt tillgängliga antikroppar riktade mot en vektor-kodade proteinet rening tagg. Därefter lämpliga konstruktioner för storskalig proteinproduktion transfekterades transient med användning polyetylenimin (PEI) i 10-skikt cellfabriker. Proteiner utsöndrade in liters-volymer av konditionerat medium koncentreras till hanterbara mängder med användning tangentiell flödesfiltrering, följt av rening av anti-HA-affinitetskromatografi. Användbarheten av denna plattform bevisas av dess förmåga att uttrycka milligrammängder av cytokiner, cytokinreceptorer, cellytreceptorer och inneboende faktorer restriktionsställen och virala glykoproteiner. Denna metod har också framgångsrikt använts vid strukturell bestämning av de trimera 5,10 ebolavirus glykoprotein.

<p class = "jove_content"> Sammanfattningsvis ger denna plattform användarvänlighet, snabbhet och skalbarhet och maximera protein kvalitet och funktionalitet. Vidare är ingen ytterligare utrustning som inte är en vanlig befuktad CO2-inkubator, som krävs. Detta förfarande kan snabbt utökas till system med större komplexitet, till exempel sam-expression av proteinkomplex, antigener och antikroppar, produktion av virusliknande partiklar för vacciner, eller produktion av adenovirus eller lentivirus för transduktion svåra cellinjer.

Protocol

1. Förberedelser – Konstruerar och cellodlingar Före start av protokollet bör genen av intresse vara kodon-optimerad för uttryck i däggdjursceller, och klonas in i en lämplig uttrycksvektor med användning av standardmässiga molekylärbiologiska tekniker. För att säkerställa den högsta risken för framgångsrik expression bör multipla varianter av genen av intresse kan genereras. Många däggdjursexpressionsvektorer är kommersiellt tillgängliga och har olika reningsförfaranden t…

Discussion

De 10-skikt cellfabriker är en effektiv kärl för produktion av milligrammängder av proteinet. En stor fördel med att använda cellfabrik framför andra traditionella kärl, såsom rullflaskor, kolvar skaka eller spinnkolvar, är att de inte kräver att köpa ytterligare laboratorieutrustning. En standard CO 2-inkubator (ca 6,0 cu. Fot) kommer lätt rymma fyra 10-lagers cellfabriker (Fig. 2). Dessutom är dessa kärl kräver mindre arbetskraft och utrymme än skålar, flaskor eller rullfl…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av en Ontario hiv-behandling Network Research driftsbidrag (ROG-G645) och kanadensiska Institutes of Health Research New Investigator Award (MSH-113.554) för att JEL och University of Toronto stipendier till HA, FCA, och JDC. Författarna vill tacka Marnie Fusco, Dafna Abelson och Dr Erica Ollmann Saphire på The Scripps Research Institute (La Jolla, CA) för att ge celler, ebolavirus GP expressionsvektor och allmänna råd.

Materials

Name of reagent Company Catalogue number Comments
Alkaline phosphatase (BCIP/NBT) liquid substrate solution Sigma B6404  
Antibiotic/Antimycotic, 100X Invitrogen 15240062  
Anti-HA affinity matrix, clone 3F10 Roche 1815016  
Anti-HA murine mAb, clone 16B12 Covance MMS-101P  
Cell culture flask, T75 cm2 tissue culture treated Corning 430641  
Cell culture flask, T225 cm2 tissue culture treated Corning 431082  
Cell culture plates,6-well tissue culture treated Corning 3516  
Cell factory, 10-layer CellSTACK Corning 3312  
Centramate Omega 5K Cassette Pall OS005C12  
Centramate Omega 30K Cassette Pall OS030C12  
Chromatography glass column, 1.0×10 cm Kontes 4204001010  
Ciprofloxacin Sigma 17850  
CO2      
Dulbecco’s modified Eagle’s media (DMEM) Sigma D5796  
Fetal bovine serum (FBS), heat inactivated Invitrogen 12484-028  
FuGENE HD transfection reagent Promega 4709691001  
GeneJuice transfection reagent EMD/Merck 70967-6  
Glycine Sigma G8898  
Goat anti-mouse IgG F(ab’)2 alkaline Thermo Scientific 31324  
phosphatase-conjugated antibody      
Hemagglutinin (HA) peptide, 100 mg Genscript custom synthesis  
(sequence: YPYDVPDYA; 95% purity)      
HEK 293T cells ATCC CRL-11268  
Household bleach (4% w/v sodium hypochlorite) various brands are available    
Immobilon-P PVDF membrane Millipore IPVH07850  
MiniPrep plasmid purification kit, PureLink Quick Invitrogen K2100-11  
MaxiPrep plasmid purification kit, PureLink HiPure Invitrogen K2100-07  
NaN3 Sigma S8032  
pDISPLAY expression vector Invitrogen V660-20  
Penicillin/streptomycin (pen/strep), 100X Invitrogen 15140-122  
Phosphate-buffered saline (PBS), sterile 1X Sigma D8537  
Polyethyleneimine (PEI), linear 25 kDa Polyscience 23966  
Skim milk dry powder Carnation    
Stericup-GP PES vacuum filtration unit, Millipore SCGPU05RE  
0.22 μm, 500 ml capacity      
Trypan blue Invitrogen 15250061  
Trypsin-EDTA, 0.05% (w/v) Invitrogen 25300-054  
Tween-20 Sigma P7949  
Valproic acid Sigma P4543  
Centramate tangential flow system Pall    
CO2 humidified incubator, standard 6.0 cu. ft. various brands are available    
Electrophoresis and transfer unit various brands are available    
Incubator, 37 °C various brands are available    

Referências

  1. Celik, E., Calik, P. Production of recombinant proteins by yeast cells. Biotechnol. Adv. , (2011).
  2. Yokoyama, S. Protein expression systems for structural genomics and proteomics. Curr. Opin. Chem. Biol. 7, 39-43 (2003).
  3. Nettleship, J. E., Assenberg, R., Diprose, J. M., Rahman-Huq, N., Owens, R. J. Recent advances in the production of proteins in insect and mammalian cells for structural biology. J. Struct. Biol. 172, 55-65 (2010).
  4. Carlson, E. D., Gan, R., Hodgman, C. E., Jewett, M. C. Cell-free protein synthesis: Applications come of age. Biotechnol. Adv. , (2011).
  5. Lee, J. E. Structure of the Ebola virus glycoprotein bound to an antibody from a human survivor. Nature. 454, 177-182 (2008).
  6. Bowden, T. A. Structural basis of Nipah and Hendra virus attachment to their cell-surface receptor ephrin-B2. Nat. Struct. Mol. Biol. 15, 567-572 (2008).
  7. Evans, M. J., Hartman, S. L., Wolff, D. W., Rollins, S. A., Squinto, S. P. Rapid expression of an anti-human C5 chimeric Fab utilizing a vector that replicates in COS and 293 cells. J. Immunol. Methods. 184, 123-138 (1995).
  8. Ye, J. High-level protein expression in scalable CHO transient transfection. Biotechnol. Bioeng. 103, 542-551 (2009).
  9. Wurm, F. M. Production of recombinant protein therapeutics in cultivated mammalian cells. Nat Biotechnol. 22, 1393-1398 (2004).
  10. Lee, J. E., Fusco, M. H., Hessell, A. J., Burton, D. R., Saphire, E. O. Techniques and tactics used in determining the structure of trimeric, prefusion Ebola virus GP. Acta Cryst. 65, 1162-1180 (2009).
  11. Aricescu, A. R. Eukaryotic expression: developments for structural proteomics. Acta. Crystallogr. D Biol. Crystallogr. 62, 1114-1124 (2006).
  12. Aricescu, A. R., Lu, W., Jones, E. Y. A time- and cost-efficient system for high-level protein production in mammalian cells. Acta. Crystallogr. D Biol. Crystallogr. D62, 1243-1250 (2006).
  13. Chang, V. T. Glycoprotein structural genomics: solving the glycosylation problem. Structure. 15, 267-273 (2007).
  14. Lee, J. E., Fusco, M. H., Saphire, E. O. An efficient platform for screening expression and crystallization of glycoproteins produced in human cells. Nature Protocols. 4, 592-604 (2009).
  15. Nettleship, J. E., Rahman-Huq, N., Owens, R. J. The production of glycoproteins by transient expression in Mammalian cells. Methods Mol. Biol. 498, 245-263 (2009).
  16. Neil, S. J., Zang, T., Bieniasz, P. D. Tetherin inhibits retrovirus release and is antagonized by HIV-1 Vpu. Nature. 451, 425-430 (2008).
  17. Nakamura, Y. Heterodimerization of the IL-2 receptor beta- and gamma-chain cytoplasmic domains is required for signalling. Nature. 369, 330-333 (1994).
  18. Wang, X., Rickert, M., Garcia, K. C. Structure of the quaternary complex of interleukin-2 with its alpha, beta, and gammac receptors. Science. 310, 1159-1163 (2005).
check_url/pt/4041?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Aydin, H., Azimi, F. C., Cook, J. D., Lee, J. E. A Convenient and General Expression Platform for the Production of Secreted Proteins from Human Cells. J. Vis. Exp. (65), e4041, doi:10.3791/4041 (2012).

View Video