Summary

In Vitro Analyse av PDZ-avhengige CFTR makromolekylær signalveier Komplekser

Published: August 13, 2012
doi:

Summary

Cystisk fibrose transmembrane konduktans regulator (CFTR), en epitelial klorid kanal, har blitt rapportert å samhandle med ulike proteiner og regulere viktige cellulære prosesser; blant dem CFTR PDZ motiv-medierte interaksjoner er godt dokumentert. Denne protokollen beskriver metoder vi utviklet for å montere en PDZ-avhengig CFTR macromolecular signaliserte kompleks<em> In vitro</em>.

Abstract

Cystisk fibrose transmembrane konduktans regulator (CFTR), en klorid kanal ligger hovedsakelig i den apikale membraner i epitelceller, spiller en avgjørende rolle i transepithelial væske homeostase 1-3. CFTR har vært innblandet i to alvorlige sykdommer: cystisk fibrose (CF) 4 og sekretoriske diaré fem. I CF, er syntesen eller funksjonell aktivitet av CFTR Cl-kanalen redusert. Denne lidelsen påvirker ca 1 i 2500 kaukasiere i USA seks. Overdreven CFTR aktivitet har også vært innblandet i tilfeller av toksin-indusert sekretorisk diaré (for eksempel ved koleratoksin og varme stabil E. coli enterotoksin) som stimulerer cAMP eller cGMP produksjon i tarmen 7.

Innsamling av bevismateriale tyder eksistensen av fysiske og funksjonelle samspillet mellom CFTR og et økende antall andre proteiner, inkludert transport, ionekanaler, reseptorer, kinaser, fosfataser, signaling molekyler, og cytoskeletal elementer, og disse interaksjoner mellom CFTR og dets proteiner har vist seg å være kritisk involvert i regulering av CFTR-mediert transepithelial ion transport in vitro og in vivo også 8-19. I denne protokollen, fokuserer vi kun på de metoder som hjelpemiddel i studiet av samspillet mellom CFTR carboxyl terminal hale, som besitter en protein-bindende motiv [referert til som PSD95/Dlg1/ZO-1 (PDZ) motiv], og en gruppe av stillas proteiner, som inneholder en spesifikk binding modul kalt PDZ domener. Så langt har flere forskjellige PDZ stillaset proteiner er rapportert å binde til carboxyl terminal hale av CFTR med ulike slektskap, som NHERF1 og NHERF2 og PDZK1 og PDZK2, Cal (CFTR-assosiert ligand), Shank2, og ta tak 20-27. Den PDZ motiv innenfor CFTR som er anerkjent av PDZ stillaset proteiner er de siste fire aminosyrene på C endestasjonen (dvs. 1477-DTRL-1480 i human CFTR) 20. Interessant,CFTR kan binde mer enn ett PDZ domene av både NHERFs og PDZK1, dog med varierende slektskap 22. Dette multivalency med hensyn til CFTR bindende har vist seg å være av funksjonell betydning, noe som tyder på at PDZ stillaset proteiner kan fremme dannelsen av CFTR macromolecular signalisere komplekser for spesifikke / selektiv og effektiv signalering i cellene 16-18.

Flere biokjemiske analyser har blitt utviklet for å studere CFTR-involverer protein interaksjoner, for eksempel co-immunoprecipitation, pull-down analysen, par-klok bindende analysen, kolorimetrisk par-klok bindende analysen, og macromolecular kompleks montering analysen 16-19,28,29 . Her fokuserer vi på de detaljerte prosedyrene og sammenstille et PDZ motiv-avhengig CFTR-holdig macromolecular kompleks in vitro, som brukes mye av vårt laboratorium for å studere protein-protein eller domene-domene interaksjoner som involverer CFTR 16-19,28,29.

Protocol

1. Uttrykk og rensing av rekombinant tagget Fusion Proteiner i Bakterier Forsterke definerte regioner i C-haler (de siste 50-100 aminosyrene som inneholder PDZ motivene ved C-terminus) for CFTR, 2 år 2. LPA, MRP2, MRP4, β, og NHERFs (full-lengde eller PDZ1 eller PDZ2 domener ) ved PCR tilnærming. Klone PCR produktene til pGEX4T-en vektor for GST-fusion proteiner (for eksempel GST-NHERFs, GST-MRP4 CT), pMAL-C2 vektor for MBP-fusion proteiner (som MBP-β 2 AR CT, MB…

Discussion

I denne protokollen viste vi en metode for in vitro montering og påvisning av en CFTR inneholder macromolecular signalisere kompleks med rensede proteiner (eller protein fragmenter) og / eller celle lysates som rapportert tidligere 16-19,29,30. For å oppnå best mulig resultat følgende kritiske punkter under forberedelsen prosessen krever spesiell oppmerksomhet:

  • Det er viktig at pH i eluering buffer bli justert til 8,0 etter at redusert glutation når rense GST-fusion protein som besk…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vårt arbeid har blitt støttet med tilskudd fra American Heart Association (Greater Sørøst Affiliate) Beginning-stipend-i-hjelp 0765185B, den Elsa U. Pardee Foundation forskningsstipend, og Wayne State University egenutført oppstart fond og Cardiovascular Research Institute Isis Initiative prisen. Denne metoden for in vitro CFTR macromolecular kompleks forsamlingen ble opprinnelig utviklet av Dr. AP Naren (University of Tennessee Health Science Center).

Materials

Name of the reagent Company Catalog number Comments
pGEX4T-1 vector GE Healthcare 28-9545-49 formerly Amersham Biosciences
pMAL-C2 vector New England BioLabs    
pET30 vector EMD Chemicals 69077-3 formerly Novagen
Glutathione agarose beads BD Biosciences 554780  
Amylose resin New England BioLabs E8021S  
Talon beads Clontech 635501  
reduced glutathione BD Biosciences 554782  
imidazole Fisher BP305-50  
maltose Fisher BP684-500  
S-protein agarose EMD Chemicals 69704-3 formerly Novagen
Anti-Flag HRP Sigma A8592  
Anti-CFTR IgG Custom-made R1104 mAb recognizing CFTR epitope at a.a. 722-734
Anti-MRP2 IgG Chemicon International MAB4148 Now a part of Millipore

Table 2. Specific reagents and equipment.

Referências

  1. Anderson, M. P. Demonstration that CFTR is a chloride channel by alteration of its anion selectivity. Science. 253, 202-205 (1991).
  2. Bear, C. E. Purification and functional reconstitution of the cystic fibrosis transmembrane conductance regulator (CFTR. Cell. 68, 809-818 (1992).
  3. Quinton, P. M. Chloride impermeability in cystic fibrosis. Nature. 301, 421-422 (1983).
  4. Cheng, S. H. Defective intracellular transport and processing of CFTR is the molecular basis of most cystic fibrosis. Cell. 63, 827-834 (1990).
  5. Gabriel, S. E., Brigman, K. N., Koller, B. H., Boucher, R. C., Stutts, M. J. Cystic fibrosis heterozygote resistance to cholera toxin in the cystic fibrosis mouse model. Science. 266, 107-109 (1994).
  6. Li, C., Naren, A. P. CFTR chloride channel in the apical compartments: spatiotemporal coupling to its interacting partners. Integr. Biol (Camb). 2, 161-177 (2010).
  7. Chao, A. C. Activation of intestinal CFTR Cl- channel by heat-stable enterotoxin and guanylin via cAMP-dependent protein kinase. Embo. J. 13, 1065-1072 (1994).
  8. Gabriel, S. E., Clarke, L. L., Boucher, R. C., Stutts, M. J. CFTR and outward rectifying chloride channels are distinct proteins with a regulatory relationship. Nature. 363, 263-268 (1993).
  9. McNicholas, C. M. Sensitivity of a renal K+ channel (ROMK2) to the inhibitory sulfonylurea compound glibenclamide is enhanced by coexpression with the ATP-binding cassette transporter cystic fibrosis transmembrane regulator. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 93, 8083-8088 (1996).
  10. Schreiber, R., Nitschke, R., Greger, R., Kunzelmann, K. The cystic fibrosis transmembrane conductance regulator activates aquaporin 3 in airway epithelial cells. J. Biol. Chem. 274, 11811-11816 (1999).
  11. Shumaker, H., Amlal, H., Frizzell, R., Ulrich, C. D., Soleimani, M. CFTR drives Na+-nHCO-3 cotransport in pancreatic duct cells: a basis for defective HCO-3 secretion in CF. Am. J. Physiol. 276, 16-25 (1999).
  12. Ahn, W. Regulatory interaction between the cystic fibrosis transmembrane conductance regulator and HCO3- salvage mechanisms in model systems and the mouse pancreatic duct. J. Biol. Chem. 276, 17236-17243 (2001).
  13. Sugita, M., Yue, Y., Foskett, J. K. CFTR Cl- channel and CFTR-associated ATP channel: distinct pores regulated by common gates. Embo. J. 17, 898-908 (1998).
  14. Naren, A. P. Regulation of CFTR chloride channels by syntaxin and Munc18 isoforms. Nature. 390, 302-305 (1997).
  15. Naren, A. P. Syntaxin 1A is expressed in airway epithelial cells, where it modulates CFTR Cl(-) currents. J. Clin. Invest. 105, 377-386 (2000).
  16. Naren, A. P. A macromolecular complex of beta 2 adrenergic receptor, CFTR, and ezrin/radixin/moesin-binding phosphoprotein 50 is regulated by PKA. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 100, 342-346 (1073).
  17. Li, C. Lysophosphatidic acid inhibits cholera toxin-induced secretory diarrhea through CFTR-dependent protein interactions. J. Exp. Med. 202, 975-986 (2005).
  18. Li, C. Spatiotemporal coupling of cAMP transporter to CFTR chloride channel function in the gut epithelia. Cell. 131, 940-951 (2007).
  19. Li, C., Schuetz, J. D., Naren, A. P. Tobacco carcinogen NNK transporter MRP2 regulates CFTR function in lung epithelia: implications for lung cancer. Cancer Lett. 292, 246-253 (2010).
  20. Hall, R. A. A C-terminal motif found in the beta2-adrenergic receptor, P2Y1 receptor and cystic fibrosis transmembrane conductance regulator determines binding to the Na+/H+ exchanger regulatory factor family of PDZ proteins. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 95, 8496-8501 (1998).
  21. Short, D. B. An apical PDZ protein anchors the cystic fibrosis transmembrane conductance regulator to the cytoskeleton. J. Biol. Chem. 273, 19797-19801 (1998).
  22. Wang, S., Yue, H., Derin, R. B., Guggino, W. B., Li, M. Accessory protein facilitated CFTR-CFTR interaction, a molecular mechanism to potentiate the chloride channel activity. Cell. 103, 169-179 (2000).
  23. Sun, F. E3KARP mediates the association of ezrin and protein kinase A with the cystic fibrosis transmembrane conductance regulator in airway cells. J. Biol. Chem. 275, 29539-29546 (2000).
  24. Cheng, J. A Golgi-associated PDZ domain protein modulates cystic fibrosis transmembrane regulator plasma membrane expression. J. Biol. Chem. 277, 3520-3529 (1074).
  25. Scott, R. O., Thelin, W. R., Milgram, S. L. A novel PDZ protein regulates the activity of guanylyl cyclase C, the heat-stable enterotoxin receptor. The Journal of biological chemistry. 277, 22934-22941 (1074).
  26. Lee, J. H. Dynamic regulation of cystic fibrosis transmembrane conductance regulator by competitive interactions of molecular adaptors. The Journal of biological chemistry. 282, 10414-10422 (2007).
  27. Gee, H. Y., Noh, S. H., Tang, B. L., Kim, K. H., Lee, M. G. Rescue of DeltaF508-CFTR trafficking via a GRASP-dependent unconventional secretion pathway. Cell. 146, 746-760 (2011).
  28. Naren, A. P. Methods for the study of intermolecular and intramolecular interactions regulating CFTR function. Met. Molecul. Med. 70, 175-186 (2002).
  29. Li, C., Roy, K., Dandridge, K., Naren, A. P. Molecular assembly of cystic fibrosis transmembrane conductance regulator in plasma membrane. The Journal of biological chemistry. 279, 24673-24684 (2004).
  30. Li, C., Naren, A. P. Analysis of CFTR Interactome in the Macromolecular Complexes. Met. Molecul. Med. 741, 255-270 (2011).
  31. Wu, Y. A chemokine receptor CXCR2 macromolecular complex regulates neutrophil functions in inflammatory diseases. J. Biol. Chem. , (2011).
check_url/pt/4091?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Wu, Y., Wang, S., Li, C. In Vitro Analysis of PDZ-dependent CFTR Macromolecular Signaling Complexes. J. Vis. Exp. (66), e4091, doi:10.3791/4091 (2012).

View Video