En rask metode for å undersøke interaksjoner og effekter på molekylære mekanismene knyttet til nærværet av antistoffer i en intracellulær miljø er beskrevet. Fremgangsmåten innebærer transfeksjon av antistoffer i levende celler ved hjelp av et ikke-kovalent kompleks formasjon basert på en lipid formulering. Teknikken er tilpasningsdyktig til udødeliggjort cellelinjer og primære celler.
Antistoffer gi muligheten til å få romanen innsikt i ulike arrangementer som finner sted i levende systemer. Evnen til å produsere svært spesifikke antistoffer mot target proteiner har åpnet for svært presise biologiske spørsmål tas opp. Viktigere, har antistoffer vært implisert i patogenesen av en rekke humane sykdommer inkludert systemisk lupus erythematosus (SLE), revmatoid artritt (RA), paraneoplastiske syndromer, multippel sklerose (MS) og human T-lymphotropic virus type 1 (HTLV-1) assosiert myelopati / tropisk spastisk paraparese (HAM / TSP) 1-9. Hvordan antistoffer forårsake sykdom er et område med pågående etterforskning, og data tyder på at interaksjoner mellom antistoffer og ulike intracellulære molekyler resultater i betennelser, endret cellulær messaging, og apoptose 10. Det har blitt vist at pasienter med MS og HAM / TSP produserer autoantistoffer til det intracellulære RNA bindingsprotein heterogen ribonuclear protein A1 (hnRNP A1) 3, 5-7, 9, 11. Nyere data indikerer at antistoffer til både intra-neuronal og overflateantigener er sykdomsfremkallende 3, 5-9, 11. Dermed, en prosedyre som gjør det mulig for studiet av intracellulær antistoff: ville protein interaksjoner låne stor innsikt i sykdommen patogenesen.
Gener er ofte transfekteres i primære celler og cellelinjer i kultur, har imidlertid transfeksjon av antistoffer i celler blitt hindret av endring av antistoff struktur eller dårlig transfeksjon effektivitet 12. Andre metoder for transfeksjon er antistoff transfeksjon basert på kationiske liposomer (bestående av DOTAP / DOPE) og polyethylenimines (PEI), som begge som resulterte i en ti-ganger reduksjon i antistoff transfeksjon forhold til kontroller 12. Metoden utføres i vår undersøkelse er lik kationiske lipid-medierte metoder og benytter et lipid-basert mekanisme for å danne ikke-kovalente komplekser med antistoffer gjennom elektrostatisk og hydrophobic interaksjoner 13. Vi utnyttet Ab-DeliverIN reagens, som er et lipid formulering som kan fange antistoffer gjennom ikke-kovalente elektrostatiske og hydrofobe interaksjoner og levere dem inne i celler. Således kjemisk og genetisk koblinger er ikke nødvendig for levering av funksjonelle antistoffer i levende celler. Denne metoden har gitt oss mulighet til å utføre ulike antistoff sporing og protein lokalisering eksperimenter, samt analyser av de molekylære konsekvensene av intracellulær antistoff: protein interaksjoner 9.
I denne protokollen, vil vi vise hvordan du transfektere antistoffer i nevroner raskt, reproduserbart og med en høy grad av transfeksjon effektivitet. Som et eksempel vil vi bruke anti-hnRNP A1 og anti-IgG antistoffer. For enkel kvantifisering av transfeksjon effektivitet brukte vi anti-hnRNP A1 antistoffer merket med Atto-550-NHS og FITC-merket IgG. Atto550 NHS er en ny etikett med høy molekylvekt absorpsjon og quantum yield. Eksitasjon kilde og fluorescerende filtre for Atto550 ligner Cy3 (eks. 556 Em. 578). I tillegg har Atto550 høy fotostabilitet. FITC-merket IgG ble brukt som en kontroll for å vise at denne metoden er allsidig og ikke fargestoff avhengige. Denne tilnærmingen og dataene som er generert vil bistå i forståelse av rollen som antistoffer til intracellulære mål antigener kan spille i patogenesen av menneskelige sykdommer.
For å teste hypoteser om spesifikke molekyler og deres uttrykk blir gener og andre vektorer som vanligvis transfektert inn i cellene. Det unike med denne prosedyren er muligheten til enkelt transfektere antistoffer i målcellene. Vi utførte denne metoden i fem separate eksperimenter hver i duplikater. Transfeksjon effektivitet resultatene var lik blant alle eksperimenter. Viktigere, muliggjør metoden oppføring av antistoffer inn i cellen uten å endre antistoff struktur eller funksjon. Videre, med bruk av fluorescen…
The authors have nothing to disclose.
Dette arbeidet støttes av Office of Research and Development, Medical Research Service, Department of Veterans Affairs. Denne studien ble finansiert av en VA Merit anmeldelse Award (til MCL) og University of Tennessee Health Science Center Multippel sklerose forskningsfond.
Name of Reagent | Company | Catalogue Number |
Fluorescent Microscope AxioObserver A1 | Zeiss | |
Axiovision version 4.2 | Zeiss | |
Anti-rhnRNPA1 | Abcam | Ab4791 |
FITC labeled anti-rIgG | OZ Biosciences | AI20100 |
Atto550 NHS ester | Sigma | 92835 |
Ab-DeliverIN | OZ Biosciences | AI20100 |
DMEM/F12 +10% FBS+1%antibiotics | Gibco | 11320-033 |
Poly-D-Lysine 8-well Culture Slides | BD | 354632 |
Multi-Purpose Rotator | Scientific Industries Inc | Model 151 |
DAPI Mounting Media | Millipore | S7113 |
PBS | Ambion | 9626 |
Dialyzer | Thermo Fisher Scientific | 66380 |
Amicon Ultra-0.5 | Millipore | UFC501096 |
Paraformaldehyde (4% solution) | Electron Microscopy Sciences | |
Nano-Drop | Thermo Fisher Scientific |