Summary

Spændingsfølsomme Dye Optagelse fra axoner, dendritter og dendrit udløberne af individuelle neuroner i hjernen Slices

Published: November 29, 2012
doi:

Summary

En imaging teknik til overvågning af membran potentielle ændringer i sub-mikrometer rumlige og sub-millisekund tidsopløsning er beskrevet. Teknikken, baseret på laser excitation af spændingsfølsomme farvestoffer, tillader målinger af signaler i axoner og axon soeskende terminale dendritiske grene, og individuelle dendritiske spidser.

Abstract

Forståelse af de biofysiske egenskaber og funktionelle organisation af enkelte neuroner, og hvordan de behandle oplysninger er grundlæggende for at forstå, hvordan hjernen fungerer. Den primære funktion af en nervecelle er at behandle elektriske signaler, sædvanligvis fra flere kilder. Elektriske egenskaber neuronale processer er overordentlig kompleks, dynamisk, og, i det generelle tilfælde, umuligt at forudsige i fravær af detaljerede målinger. For at opnå en sådan måling ville man ideelt set gerne være i stand til at overvåge, på flere steder, subtærskel begivenhederne, som de rejser fra de steder, hvor oprindelsen på neuronale processer og summere på særlige steder at påvirke aktionspotentialets indvielse. Dette mål er ikke nået i nogen neuron grund af tekniske begrænsninger af målinger, der beskæftiger elektroder. At overvinde denne ulempe, er det meget ønskeligt at supplere patch-elektrode tilgang med billeddannelsesteknikker, der tillader omfattende parallelle recordings fra alle dele af et neuron. Her beskriver vi en sådan teknik – optisk registrering af membranpotentiale transienter med organiske spændingsfølsomme farvestoffer (V m-imaging) – kendetegnet ved sub-millisekund-og sub-mikrometer opløsning. Vores fremgangsmåde er baseret på pionerarbejde på spændingsfølsomme molekylære prober to. Mange aspekter af den oprindelige teknologi er løbende blevet forbedret gennem flere årtier 3, 5, 11. Derudover tidligere arbejde dokumenteres to væsentlige egenskaber ved V m-billeddannelse. For det første er fluorescenssignaler er lineært proportional med membranpotentialet i hele fysiologiske område (-100 mV til +100 mV, 10, 14, 16). For det andet er loading neuroner med den spændingsfølsomme farvestof anvendt her (JPW 3028) ingen påviselige farmakologiske virkninger. Den registrerede udvidelse af spyddet i løbet af farvestof loading er helt reversibel 4, 7. Derudover eksperimentelle beviser viser, at det er muligt at opnået betydeligt antal (op til hundreder) af optagelser før nogen påviselige fototoksiske effekter 4, 6, 12, 13. I øjeblikket tager vi fordel af den fremragende lysstyrke og stabiliteten af en laserlyskilde ved næsten optimal bølgelængde at maksimere følsomheden for V m-billeddannelsesteknik. Den aktuelle følsomhed tillader flere stedet optiske optagelser af V m transienter fra alle dele af en neuron, herunder axoner og axon soeskende terminale dendritiske grene, og de ​​enkelte dendritiske Torner. Den indhentede information om signal interaktioner kan analyseres kvantitativt og visualiseres direkte i form af en film.

Protocol

1. Opsætning af udstyr Trin 1.1. Imaging setup Nøglen til optagelse spænding følsomme farvestof signaler er passende setup design. Vi bruger en opretstående mikroskop (BX51WI Olympus eller Zeiss AxioExaminer) udstyret med tre kameraer. Opsætningen er designet til belysning af individuelle neuroner i hjernen skiver efter excitationslys i epi-fluorescens, wide-field mikroskopi tilstand ved hjælp af enten Nikon 60X/1.0 NA eller Zeiss 63X/1.0 NA vand dyppe mål. Vo…

Representative Results

Vellykket konfokal mikroskopi skal der klart kan skelnes af intakte neuronale processer, som er tæt på overfladen af ​​skiven og ligger i et plan i fokus. Udvælgelsen af ​​nerveceller, der er passende for spænding billeddannelse inden spændingsfølsomme farvestof loading er kritisk. Et eksempel på konfokale billeder af L5 pyramidale neuroner, der udtrykker EGFP i en cortical skive (Crym transgene mus linie) er vist i figur 2. Axoner af individuelle neuroner er tydeligt synlige. Celler med …

Discussion

Denne artikel beskriver en spændingsfølsomme farvestof optagelse metode til overvågning elektriske aktivitet i individuelle neuroner med sub-mikrometer og sub-millisekund Spatiotemporal opløsning. Laser excitation ved næsten optimal bølgelængde (med hensyn til signal størrelse) forbedret følsomhed for registrering med en faktor på ~ 50 i forhold til tidligere fremgangsmåder. Den aktuelle følsomhed gør det muligt at overvåge elektriske signaler fra alle dele af de enkelte neuroner, herunder dendritter, axon…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi er taknemmelige for vores samarbejdspartnere Knut Holthoff, Arthur Konnerth og Marco Canepari som deltog i den indledende udvikling af denne teknik samt Leslie M. Loew for venligt at give farvestoffer. Støttet af NSF tilskud IOS-0817969, NIH tilskud NS068407 og M136043 og Kavli Institute for Neuroscience ved Yale University.

Materials

Name of the component Company Catalogue number Comments (optional)
Setup components
Upright Microscope Olympus Inc. BX51WI With three camera ports
Motorized Movable Stage Siskiyou MXOPi.2
Epi-fluorescence Condenser for Olympus BX51 TILL Photonics 0000-560-11659
Upright Microscope Carl Zeiss, LLC AxioExaminer D1 With three camera ports
Motorized Top Plate Scientifica Limited MMBP
Epi-fluorescence Condenser for Zeiss AxioExaminer TILL Photonics
Data Acquisition Camera RedShirtImaging LLC NeuroCCD-SM High speed, low read noise
CCD for IR-DIC Dage-MTI IR-1000
Spinning-Disc Confocal Scanner Yokogawa CSU-10
High Spatial Resolution CCD on Confocal Scanner PCO AG PixelFly 1392×1024 pixels
DPSS CW Laser (532 Nm) CNI Optoelectronics Tech. Co., Ltd MLL-III-532 400mW Excitation light source
Multi-Mode Fiber Launcher Siskiyou SM-CFT
Light Guide TILL Photonics 0000-515-11524
Shutter Vincent Associates LS6
Vibration Isolation Table Minus k Technology MK26
Specific reagents
Di-2-ANEPEQ (JPW 1114) Life Technologies D-6923 Voltage sensitive dye
Crym-EGFP Mouse Line GENSAT (MMRRC) STOCK Tg(Crym-EGFP)GF82Gsat/Mmcd Sparsely expressing EGFP in Layer 5 cortical neurons

Referências

  1. Bischofberger, J., Engel, D., Li, L., Geiger, J. R., Jonas, P. Patch-clamp recording from mossy fiber terminals in hippocampal slices. Nature Protocols. 1, 2075-2081 (2006).
  2. Cohen, L. B., Salzberg, B. M. Optical measurement of membrane potential. Ann. Rev. Neurosci. 1, 171-182 (1978).
  3. Cohen, L. B., Canepari, M., Zecevic, D. Historical overview and general methods of membrane potential imaging. Membrane Potential Imaging in the Nervous System. , (2010).
  4. Canepari, M., Djurisic, M., Zecevic, D. Dendritic signals from rat hippocampal CA1 pyramidal neurons during coincident pre- and post-synaptic activity: a combined voltage- and calcium imaging study. J. Physiol. 580, 463-484 (2007).
  5. Canepari, M., Popovic, M., Vogt, K., Holthoff, K., Konnerth, A., Salzberg, B. M., Grinvald, A., Antic, S. D., Zecevic, D., Canepari, M., Zecevic, D. Imaging submillisecond membrane potential changes from individual regions of single axons, dendrites and spines. Membrane Potential Imaging in the Nervous System. , (2010).
  6. Djurisic, M., Antic, S., Chen, W. R., Zecevic, D. Voltage imaging from dendrites of mitral cells: EPSP attenuation and spike trigger zones. J. Neurosci. 24, 6703-6714 (2004).
  7. Holthoff, K., Zecevic, D., Konnerth, A. Rapid time-course of action potentials in spines and remote dendrites of mouse visual cortical neurons. J. Physiol. 588, 1085-1096 (2010).
  8. Kole, M. H. P., Letzkus, J. J., Stuart, G. J. Axon initial segment Kv1 channels control axonal action potential waveform and synaptic efficacy. Neuron. 55, 633-647 (2007).
  9. Kuhn, B., Fromherz, P., Denk, W. High sensitivity of Stark-shift voltage-sensing dyes by one- or two-photon excitation near the red spectral edge. Biophysical J. 87, 631-639 (2004).
  10. Loew, L. M. Design and characterization of electrochromic membrane probes. J. Biochem. Biophys. Method. 6, 243-260 (1982).
  11. Loew, L., Canepari, M., Zecevic, D. Design and use of organic voltage sensitive dyes. Membrane Potential Imaging in the Nervous System. , (2010).
  12. Palmer, L. M., Stuart, G. J. Site of action potential initiation in layer 5 pyramidal neurons. J. Neurosci. 26, 1854-1863 (2006).
  13. Popovic, M. A., Foust, A. J., McCormick, D. A., Zecevic, D. The spatio-temporal characteristics of action potential initiation in layer 5 pyramidal neurons: a voltage imaging study. J. Physiol. 589, 4167-4187 (2011).
  14. Ross, W. N., Salzberg, B. M., Cohen, L. B., Grinvald, A., Davila, H. V., Waggoner, A. S., Wang, C. H. Changes in absorption, fluorescence, dichroism, and birefringence in stained giant axons: optical measurement of membrane potential. J. Membr. Biol. 33, 141-183 (1977).
  15. Shu, Y., Duque, A., Yu, Y., Haider, B., McCormick, D. A. Properties of action potential initiation in neocortical pyramidal cells: evidence from whole cell axon recordings. J Neurophysiol. 97, 746-760 (2007).
  16. Wu, J. -. Y., Cohen, L. B., Mason, W. T. Fast multisite optical measurement of membrane potential. A practical guide to technology for quantitative real-time analysis. , 389-404 (1993).
  17. Yuste, R. . Dendritic Spines. , (2010).
check_url/pt/4261?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Popovic, M., Gao, X., Zecevic, D. Voltage-sensitive Dye Recording from Axons, Dendrites and Dendritic Spines of Individual Neurons in Brain Slices. J. Vis. Exp. (69), e4261, doi:10.3791/4261 (2012).

View Video