Summary

3-мерная литья смол и обработки изображений Мыши воротной вены или внутрипеченочных желчных протоков системы

Published: October 25, 2012
doi:

Summary

Метод визуализации и количественной оценки 3-мерной структуры мышь печеночной воротной вены или канал внутрипеченочных желчных описано. Эта техника литой изоляцией могут быть применены и к другим протоков или сосудистой системы и позволяет<em> На месте</em> Визуализации или количественного нетронутыми общения архитектуры системы.

Abstract

В органах, правильная архитектура сосудистой и протоковой структур является необходимым для надлежащего физиологические функции, а формирование и поддержание этих структур является строго регулируется процесс. Анализ этих сложных, 3-мерные структуры в значительной степени зависела от любой 2-мерной экспертизы в разделе, или на красителях исследований инъекции. Эти методы, однако, не в состоянии обеспечить полное и количественной представленности протоков или сосудистых структур, они предназначены для выяснения. Кроме того, природа 3-мерных пластиковых отливок смолы создает постоянную снимок системы и является новым и широко полезный метод для визуализации и количественной 3-мерной структуры и сети.

Важным преимуществом системы литья смол является возможность определения нетронутыми и подключены, или общения, структура кровеносных сосудов или протоков. Структура сосудистой и герцогаТаль сети имеют решающее значение для функции органа, и этот метод имеет потенциал, чтобы помочь изучению сосудистой и протоковой сети несколькими способами. Смола литья могут быть использованы для анализа нормальной морфологии и функциональной архитектуры просвета структуру, определить развитие морфогенетических изменений, и выявить морфологические различия в архитектуре ткани между нормальным и болезненных состояний. Предыдущая работа использованы смолы литья для изучения, например, архитектурных и функциональных дефектов в желчных внутрипеченочных мыши системе воздуховодов, которые не были отражены в 2-мерном анализе структуры 1,2, изменениями в мозге сосудистой болезни Альцгеймера мыши модель 3 , портал нарушения вены портал гипертонической и циррозом мышей 4, шаги в развитии крыс созревания лимфатических между незрелых и взрослых легких 5, непосредственные микрососудистых изменений в печени крыс, поджелудочной железы, почек и в ответ в химической травмы6.

Здесь мы представляем способ создания 3-мерного литой изоляцией из мыши или протоковой сосудистой сети, с особым акцентом на воротной вены и внутрипеченочных желчных проток. Эти слепки могут быть визуализированы, сняв или размягчения тканей и затем могут быть проанализированы. Эта техника может быть применена практически к любому сосудистой или протоковой системе и будет непосредственно применимы к любому исследованию, расследовавшей развития, функции, обслуживание или повреждение 3-мерное протоков или сосудистые структуры.

Protocol

1. Подготовка Канюля Теплые 1-дюймовый длинный участок трубы PE10 кончиками пальцев и растянуть его так, чтобы трубка становится тонким. Примечание: размер судна или канал для канюлировали будет определять степень растяжения требуется. Канюля должна быть хорошо растягивается…

Discussion

Мы описали конкретные примеры того, как воротной вены и внутрипеченочных желчных протоков системы печени может быть приведен, но эта техника может быть применена практически к любой другой протоков или сосудистая система с небольшими изменениями. Предыдущие исследования продемонстр…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана грантами от Национального института здоровья (NIH) для SSH (R01-DK078640), из Медицинского института Говарда Хьюза (HHMI) через HHMI / Vanderbilt University Программа Сертификата в области молекулярной медицины в TJW (GRDOT56006779), Vanderbilt диабета исследовательский и учебный центр (P30-DK020593) и пищеварительной Vanderbilt болезни исследовательский центр (P30-DK058404) предоставление основных услуг.

Materials

Name of reagent Company Catalog number Comments
PE10 polyethylene tubing Fisher Scientific 1417012P
5-0 surgical black braided silk Roboz Surgical SUT-15-1
Steriject 32 G x 13 mm needle Air-tite TSK3213
Spring scissors Fine Science Tools 15000-08
Number 5 forceps Fine Science Tools 91150-20
Mercox II kit Ladd Research 21247
Benzyl alcohol Fisher Scientific 1816-04 Only required for BABB-clearing
Benzyl benzoate MP Biomedicals, LLC 154839 Only required for BABB-clearing
Phosphate-buffered saline (PBS)
Modeling clay
Scale
Laboratory scissors
15 ml cap polypropylene tubes
4% paraformaldahyde
15% potassium hydroxide (KOH) Only required for maceration
Razor blade
100% methanol
3 ml luer lock syringe

Referências

  1. Sparks, E. E., Perrien, D. S., Huppert, K. A., Peterson, T. E., Huppert, S. S. Defects in hepatic Notch signaling result in disruption of the communicating intrahepatic bile duct network in mice. Dis. Model Mech. 4, 359-367 (2011).
  2. Vanderpool, C. Genetic interactions between hepatocyte nuclear factor-6 and notch signaling regulate mouse intrahepatic bile duct development in vivo. Hepatology. 55, 233-243 (2012).
  3. Meyer, E. P., Ulmann-Schuler, A., Staufenbiel, M., Krucker, T. Altered morphology and 3D architecture of brain vasculature in a mouse model for Alzheimer’s disease. Proceedings of the National Academy of Sciences. 105, 3587-3592 (2008).
  4. Van Steenkiste, C. Vascular corrosion casting: analyzing wall shear stress in the portal vein and vascular abnormalities in portal hypertensive and cirrhotic rodents. Lab Invest. 90, 1558-1572 (2010).
  5. Dickie, R., Cormack, M., Semmler-Behnke, M., Kreyling, W. G., Tsuda, A. Deep pulmonary lymphatics in immature lungs. Journal of Applied Physiology. 107, 859-863 (2009).
  6. Kelly, D. M., McEntee, G. P., McGeenery, K. F., Fitzpatrick, J. M. Microvasculature of the pancreas, liver, and kidney in cerulein-induced pancreatitis. Archives of Surgery. 128, 293-295 (1993).
  7. Sparks, E. E., Huppert, K. A., Brown, M. A., Washington, M. K., Huppert, S. S. Notch signaling regulates formation of the three-dimensional architecture of intrahepatic bile ducts in mice. Hepatology. 51, 1391-1400 (2010).
  8. Carlson, T. R. Endothelial expression of constitutively active Notch4 elicits reversible arteriovenous malformations in adult mice. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 102, 9884-9889 (2005).
  9. Hemmeryckx, B., Emmerechts, J., Bovill, E. G., Hoylaerts, M. F., Lijnen, H. R. Effect of ageing on the murine venous circulation. Histochem. Cell Biol. , (2012).
  10. Hossler, F. E., Olson, K. R. Microvasculature of the nasal salt gland of the duckling, Anas platyrhynchos: quantitative responses to osmotic adaptation and deadaptation studied with vascular corrosion casting. J. Exp. Zool. 254, 237-247 (1990).
  11. Hossler, F. E., West, R. F. Venous valve anatomy and morphometry: studies on the duckling using vascular corrosion casting. Am. J. Anat. 181, 425-432 (1988).
  12. Hossler, F. E., Monson, F. C. Structure and blood supply of intrinsic lymph nodes in the wall of the rabbit urinary bladder–studies with light microscopy, electron microscopy, and vascular corrosion casting. Anat. Rec. 252, 477-484 (1998).
  13. Hossler, F. E., Monson, F. C. Evidence for a unique elastic sheath surrounding the vesicular arteries of the rabbit urinary bladder–studies of the microvasculature with microscopy and vascular corrosion casting. Anat. Rec. 252, 472-476 (1998).
  14. Hossler, F. E., Kao, R. L. Microvasculature of the urinary bladder of the dog: a study using vascular corrosion casting. Microsc. Microanal. 13, 220-227 (2007).
  15. Wischgoll, T., Choy, J. S., Kassab, G. S. Extraction of morphometry and branching angles of porcine coronary arterial tree from CT images. Am J Physiol. Heart. Circ. Physiol. 297, H1949-H1955 (2009).
  16. Hossler, F. E., Douglas, J. E., Douglas, L. E. Anatomy and morphometry of myocardial capillaries studied with vascular corrosion casting and scanning electron microscopy: a method for rat heart. Scan Electron Microsc. , 1469-1475 (1986).
  17. Hossler, F. E., Douglas, J. E. Vascular Corrosion Casting: Review of Advantages and Limitations in the Application of Some Simple Quantitative Methods. Microsc. Microanal. 7, 253-264 (2001).
  18. Mondy, W. L. Micro-CT of corrosion casts for use in the computer-aided design of microvasculature. Tissue Eng. Part C Methods. 15, 729-738 (2009).
  19. Masyuk, T. V., Ritman, E. L., LaRusso, N. F. Quantitative Assessment of the Rat Intrahepatic Biliary System by Three-Dimensional Reconstruction. The American Journal of Pathology. 158, 2079-2088 (2001).
  20. Masyuk, T. V., Ritman, E. L., LaRusso, N. F. Hepatic Artery and Portal Vein Remodeling in Rat Liver: Vascular Response to Selective Cholangiocyte Proliferation. The American Journal of Pathology. 162, 1175-1182 (2003).
check_url/pt/4272?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Walter, T. J., Sparks, E. E., Huppert, S. S. 3-Dimensional Resin Casting and Imaging of Mouse Portal Vein or Intrahepatic Bile Duct System. J. Vis. Exp. (68), e4272, doi:10.3791/4272 (2012).

View Video