선충류의 바디 크기 규정에 참여 유전자에 대한 화면으로 RNA로 인한 간섭 수유 전략을 사용하여<em> C. elegans</em
Summary
우리는에서 대상 유전자와 점수 몸 크기 표현형을 노크 RNAi 먹이 기술을 사용하는 방법을 보여줍니다<em> C. elegans</em>. 이 방법은 같은 DBL-1/TGF-β 신호의 몸 크기 조절에 관여 것과 같은 관심의 잠재적 유전자 구성 요소를 식별하기 위해 대규모 화면에 사용 될 수 있습니다.
Abstract
두 번 스트랜드 RNA로 인한 간섭 (RNAi)는 대상 유전자 표현 1-3를 비판 할 효과적인 전략이다. 그것은 식물, 무척추 동물 및 vertebrates 등 많은 모델 시스템에 적용되었습니다. 생체 4,5에서 RNAi를 달성하기위한 다양한 방법이 있습니다. 예를 들어, 대상 유전자는 RNAi 벡터로 변환 한 후 영구적 또는 transiently 셀 라인 또는 유전자 최저 효과를 달성 할 기본 세포로 변환 될 수 있으며, 대안 특정 대상 유전자 (RNAi oligos)에서 두 번 스트랜드의 oligonucleotides를 합성 transiently 수 있습니다 대상 유전자를 침묵하는 세포 라인 또는 기본 세포로 변환, 또는 합성 두 번 좌초 RNA 분자는 생명체로 microinjected 할 수 있습니다. 선충류 C. 이후 elegans는 박테리아가 대상 유전자에 대한 이중 가닥 RNA을 표현과 함께 동물 먹이, 식품 소스로 박테리아를 사용하는 가능한 전략 6 제공합니다. 여기 RNAi 먹이를 제공방법은 몸 크기 표현형의 점수를합니다. C. 몸 크기 elegans는 주로 TGF-β에 의해 규제되어 있습니다 – 같은 리간드 DBL-1,이 분석은 TGF-β 신호 구성 요소를 7 식별에 적합합니다. 우리는 RNAi 먹이 실험을 반복하는 두 RNAi 지나치게 긴장 등의 다양한 변종을 사용. 우리의 결과는 rrf-3 스트레인가 우리에게 가장 예상 RNAi의 표현형 준 것으로 나타났다. 방법은 수행 할 수 쉽게 재현, 쉽게 계량입니다. 또한, 우리의 프로토콜은 특수 장비의 사용을 최소화하기 때문에 작은 실험실 또는 주로 대학 기관에서 사람들에게 적합합니다.
Protocol
Representative Results
Discussion
이 프로토콜에서는, 우리는 C.의 몸 크기 결함이있는 돌연변이의 식별을위한 우리의 방법을 설명 RNAi 먹이로 elegans. 이 방법은 TGF-β 신호 구성 요소의 식별에 적용됩니다. 이러한 구성 요소가 매우 진화 15 일까지 보존되어 있으므로, 이러한 화면은 metazoans에서 TGF-β 신호의 분자 메커니즘을 elucidating에 관련이 있습니다. 이러한 화면 설계의 중요한 고려 사항은 시작 변형입니?…
Declarações
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
우리는 다양한 개발 시간 지점에서 동물의 숫자를 제공하기 위해 제임스 클락을 감사드립니다. C. 본 연구의 elegans 변종은 연구 자원에 대한 NIH 국립 센터 (NCRR)에 의해 지원됩니다 Caenorhabditis 유전학 센터에서 얻은되었습니다. 이 작품은 CUNY에서 JL과 CSD에 CIRG 1817에 의해 지원되었다, 그리고 NIH 1R15GM073678-01와 CSD로 1R15GM097692-01에 의해 우리는 원고에 대한 의견에 박사 윌리엄 J 쌀, 박사 Nathalia Holtzman, 그리고 멜리사 Silvestrini 감사드립니다. 이 작품은 뉴욕시 대학 (S. Xiong)의 대학원 센터에서 박사 학위에 대한 요구 사항의 일부 이행 실시되었다.
Materials
| RNAi worm plates 17.7 g Worm Medium Mix 60 g Agar Add H2O to 3 liters. Autoclave. Add 3 ml 1M IPTG(sterile) and 3 ml 25 mg/ml Carbenicillin(sterile); then pour into 60 mm Petri dishes. Worm plates 17.7 g Worm Medium Mix 0.6 g Streptomycin Sulfate 60 g Agar Add H2O to 3 liters. Autoclave. Pour into 60 mm Petri dishes. Worm Medium Mix 55 g Tris-Cl 24 g Tris-OH 310 g Bacto Peptone 800 mg Cholesterol 200 g NaCl Mix thoroughly and be sure to avoid chunks; this powdered mixture can be stored for many months prior to use. 2% agarose 0.5 g Agarose Add 25 ml dH2O. Heat in microwave until dissolved. 1M Isopropyl β-D-1-thiogalactopyranoside (IPTG) 2 g IPTG Dissolve in10 ml dH2O 1M NaN3 6.5 g NaN3 Add dH2O to 100 ml 25 mM NaN3 2.5 ml 1M NaN3 Add dH2O to 100 ml Caenorhabditis elegans from Caenorhabditis Genetics Center L4440 plasmid (carries ampicillin-resistance gene) Bacteria strain HT115 (DE3) (contains IPTG inducible T7 polymerase; deficient for RNAse III gene (a dsRNAse) which also carries tetracycline-resistance gene)16 60 mm Petri dishes 100 mm Petri dishes 14 ml round-bottom Falcon culture tubes glass slides glass coverslips 1-20 μl pipettor 20-200 μl pipettor 200-1000 μl pipettor 1-200 μl pipet tips 200-1000 μl pipet tips 1.5 ml Eppendorf tubes platinum wire worm pick |
Referências
- Melnyk, C. W., Molnar, A., Baulcombe, D. C. Intercellular and systemic movement of RNA silencing signals. Embo J. 30, 3553-3563 (2011).
- Wall, N. R., Shi, Y. Small RNA: can RNA interference be exploited for therapy. Lancet. 362, 1401-1403 (2003).
- Kalantidis, K., Schumacher, H. T., Alexiadis, T., Helm, J. M. RNA silencing movement in plants. Biol. Cell. 100, 13-26 (2008).
- Shim, M. S., Kwon, Y. J. Efficient and targeted delivery of siRNA in vivo. Febs. J. 277, 4814-4827 (2010).
- Amarzguioui, M., Rossi, J. J., Kim, D. Approaches for chemically synthesized siRNA and vector-mediated RNAi. FEBS Lett. 579, 5974-5981 (2005).
- Kamath, R. S., Ahringer, J. Genome-wide RNAi screening in Caenorhabditis elegans. Methods. 30, 313-321 (2003).
- Savage-Dunn, C., et al. Genetic screen for small body size mutants in C. elegans reveals many TGFb pathway components. Genesis. 35, 239-247 (2003).
- Timmons, L., Fire, A. Specific interference by ingested dsRNA. Nature. 395, 854 (1998).
- Sulston, J. E., Horvitz, H. R. Post-embryonic cell lineages of the nematode, Caenorhabditis elegans. Dev. Biol. 56, 110-156 (1977).
- Wang, J., Tokarz, R., Savage-Dunn, C. The expression of TGFβ signal transducers in the hypodermis regulates body size in C. elegans. Development. 129, 4989-4998 (2002).
- Liang, J., et al. The Caenorhabditis elegans schnurri homolog sma-9 mediates stage- and cell type-specific responses to DBL-1 BMP-related signaling. Development. 130, 6453-6464 (2003).
- Savage-Dunn, C. TGF-β signaling. WormBook. , 1-12 (2005).
- Simmer, F., et al. Loss of the putative RNA-directed RNA polymerase RRF-3 makes C. elegans hypersensitive to RNAi. Curr. Biol. 12, 1317-1319 (2002).
- Wang, D., et al. Somatic misexpression of germline P granules and enhanced RNA interference in retinoblastoma pathway mutants. Nature. 436, 593-597 (2005).
- De Robertis, E. M. Evo-devo: variations on ancestral themes. Cell. 132, 185-195 (2008).
- Timmons, L., Court, D. L., Fire, A. Ingestion of bacterially expressed dsRNAs can produce specific and potent genetic interference in Caenorhabditis elegans. Gene. 263, 103-112 (2001).
