Summary

In Vivo Imaging Systems (IVIS) Påvisning av en Neuro-Invasive betennelsesskade Virus

Published: December 02, 2012
doi:

Summary

Utnytte luciferase og in vivo avbildning systemer (IVIS) som en roman betyr å identifisere sykdom endepunkter før kliniske utviklingen skjer. IVIS har tillatt oss å visualisere i sanntid invasjonen av betennelsesskade virus over flere dager, og gir en mer nøyaktig sykdom modell for fremtidig studie. Det har også tillatt oss å identifisere potensielle beskyttende funksjonene antivirale og vaksiner raskere enn i dag utnyttet dyremodeller. Muligheten til å utnytte enkelte dyr over flere tidspunkter sikrer reduserte dyrenes krav, kostnader og generelle sykelighet til dyrene brukt sikre en mer human og mer vitenskapelig måte av sykdom studien.

Abstract

Moderne fremskritt i bildeteknologi oppmuntre til videre utvikling og forbedring i måten viral forskning er skjedd. Utgangspunktet foreslått av Russel og Burch i Hume 3R (erstatning, reduksjon, raffinement), er utnyttelsen av dyremodeller i vitenskapelig forskning under konstant press for å identifisere nye metoder for å redusere dyr bruk samtidig forbedre vitenskapelig nøyaktighet og hastighet. En stor utfordring for Hume oppdragsgivere er imidlertid hvordan man skal sikre at studiene er statistisk nøyaktig samtidig redusere dyresykdom sykelighet og generelle tall. Vaksineeffekt studier øyeblikket krever et stort antall dyr for å bli ansett som statistisk signifikant og ofte resultere i høy sykelighet og dødelighet endepunkter for identifisering av immun beskyttelse. Vi utnyttet in vivo avbildning systemer (IVIS) i forbindelse med en ildflue Bioluminescent enzymet til progressivt spore invasjonen av sentralnervesystemet (CNS) av en hetphalitic virus i en murin modell. Vanligvis, utvikler sykdommen relativt langsomt, men virusreplikasjon er hurtig, spesielt innenfor CNS, og kan føre til en ofte, dødelige utfall. Etter intranasal infeksjon i mus med TC83-Luc, en svekket Venezuelan equine encefalitt virus stamme endret uttrykker et luciferase genet, vi er i stand til å visualisere virusreplikasjon i hjernen minst tre dager før utviklingen av klinisk sykdom symptomer. Utnytte CNS invasjon som en viktig betennelsesskade sykdomsutvikling endepunkt vi er i stand til å raskt identifisere terapeutisk og vaksine beskytter mot TC83-Luc infeksjon før kliniske symptomer. Med IVIS teknologi er vi i stand til å demonstrere en rask og nøyaktig testing av narkotika legemiddelselskap og vaksiner samtidig redusere dyrenummer og sykelighet.

Protocol

1. Animal Forberedelse Animal ankomst: Ved ankomst til dyret biosikkerhet nivå 2 (ABSL2) fasiliteter, tillater dyr minimum 2 dager å venne seg til sitt nye miljø. Etter dette hvileperiode, inspisere dyrene å vurdere deres helse og generelle utseende. Ved bruk av fluorescerende reportere er det viktig å plassere alle forsøksdyr på en alfalfa gratis diett for å begrense mengden av GI autofluorescens og bakgrunn signal. Shave dyr: For å forbedre bioluminescent signalet oppda…

Representative Results

Med en genmodifisert virus, TC83-Luciferase, så vi en økning i bioluminescent signalstyrke som virusreplikasjon beveger seg fra nasal regionen til de sentrale CNS (figur 1). Grunn av den høye virusreplikasjon rente, forventer vi å se høye nivåer av bioluminescent signal (figur 2A) avhengige vektoren og dyret immunrespons til vektoren. Vi forventer dette signalet økningen for å fortsette til en topp, mellom dager 5-7 etter infeksjon, i kombinasjon med virusreplikasjon peak i SNS …

Discussion

Mens denne protokollen dekker tenkelig aspekter for in vivo analyse, er det viktig å anerkjenne bioluminescent vektor som en nøkkelfaktor for fremtidige studier. Vår utnyttelse av TC83, en svekket vaksinestamme av VEEV, som en vektor for ekspresjon av luciferase sikrer at store mengder av enzymet blir produsert på grunn av den høye frekvensen av replikering viruset i CNS som tidligere beskrevet 1-4. Mens tilsetning av en andre subgenome promotoren og luciferase genet resulterer i ytterligere dem…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Institutt for Translasjonell Sciences UTMB-NIH stipend 1UL1RR029876-01 og Alisha Prather for hennes assistanse med videoredigering for dette manuskriptet.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
D-Luciferin
Isoflurane
Xenogen IVIS System (Spectrum) Caliper Life Sciences
XGI-8-gas Anesthesia System Caliper Life Sciences
XIC-3 Containment Box Caliper Life Sciences
LivingImage 4.0 Software Caliper Life Sciences
Telemetry/identification chips Bio Medic Data Systems IPTT-300 Animal ID and Temperature
BD Integra 1ml TB syringe with 26 g x 3/8” needle Fisher Scientific 305279
Vet Bond tissue adhesive Fisher Scientific NC9259532
Vetropolycin Ophthalmic Ointment Webster Veterinary Products 78444656
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline 1X Invitrogen 14190-144
BMDS Chip Reader Bio Medic Data Systems DAS-7007S
DAS-HOST Software Bio Medic Data Systems Used to download probe information

Referências

  1. Steele, K. E., et al. Comparative Neurovirulence and Tissue Tropism of Wild-type and Attenuated Strains of Venezuelan Equine Encephalitis Virus Administered by Aerosol in C3H/HeN and BALB/c Mice. Veterinary Pathology Online. 35, 386-397 (1998).
  2. Ludwig, G. V., et al. Comparative neurovirulence of attenuated and non-attenuated strains of Venezuelan equine encephalitis virus in mice. Am. J. Trop. Med. Hyg. 64, 49-55 (2001).
  3. Charles, P. C., Walters, E., Margolis, F., Johnston, R. E. Mechanism of Neuroinvasion of Venezuelan Equine Encephalitis Virus in the Mouse. Virology. , 208-662 (1995).
  4. Volkova, E., Gorchakov, R., Frolov, I. The efficient packaging of Venezuelan equine encephalitis virus-specific RNAs into viral particles is determined by nsP1-3 synthesis. Virology. 344, 315-327 (2006).
  5. Patterson, M., et al. Rapid, non-invasive imaging of alphaviral brain infection: Reducing animal numbers and morbidity to identify efficacy of potential vaccines and antivirals. Vaccine. 29, 9345-9351 (2011).
  6. Cook, S. H., Griffin, D. E. Luciferase Imaging of a Neurotropic Viral Infection in Intact Animals. J. Virol. 77, 5333-5338 (2003).
  7. Contag, P. R., Olomu, I. N., Stevenson, D. K., Contag, C. H. Bioluminescent indicators in living mammals. Nat. Med. 4, 245-247 (1998).
  8. Osorio, J. E., Iams, K. P., Meteyer, C. U., Rocke, T. E. Comparison of Monkeypox Viruses Pathogenesis in Mice by In Vivo Imaging. PLoS ONE. 4, e6592 (2009).
  9. Luker, G. D., Prior, J. L., Song, J., Pica, C. M., Leib, D. A. Bioluminescence Imaging Reveals Systemic Dissemination of Herpes Simplex Virus Type 1 in the Absence of Interferon Receptors. J. Virol. 77, 11082-11093 (2003).
  10. Russell, W. M. S., Burch, R. L. . The Principles of Humane Experimental Technique. , (1959).
  11. Kuehne, R. W., Pannier, W. L., Stephen, E. L. Indirect mouse model for the evaluation of potential antiviral compounds: results with Venezuelan equine encephalomyelitis virus. Antimicrob. Agents Chemother. 11, (1977).
  12. Lukaszewski, R. A., Brooks, T. J. G. Pegylated Alpha Interferon Is an Effective Treatment for Virulent Venezuelan Equine Encephalitis Virus and Has Profound Effects on the Host Immune Response to Infection. J. Virol. 74, 5006-5015 (2000).
check_url/pt/4429?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Poussard, A., Patterson, M., Taylor, K., Seregin, A., Smith, J., Smith, J., Salazar, M., Paessler, S. In Vivo Imaging Systems (IVIS) Detection of a Neuro-Invasive Encephalitic Virus. J. Vis. Exp. (70), e4429, doi:10.3791/4429 (2012).

View Video