Summary

فيفو السابقين التصوير لايف من الانقسامات الخلوية واحدة في الظهارة العصبية ماوس

Published: April 30, 2013
doi:

Summary

نحن هنا تطوير الأدوات اللازمة لل<em> خارج الحي</em> التصوير الحي لتتبع الانقسامات خلية واحدة في الماوس E8.5 الظهارة العصبية

Abstract

قمنا بتطوير نظام يجمع بين التصوير الحي من علامات الفلورسنت وشرائح زراعة من الظهارة العصبية الجنينية الماوس. ونحن قد استفادت من خطوط الماوس القائمة لخلية تتبع نسب الوراثية: خط جنة المساواة العرقية تاموكسيفين محرض وخط مراسل لجنة المساواة العرقية معربا عن dsRed على إعادة التركيب لجنة المساواة العرقية بوساطة. باستخدام مستوى منخفض نسبيا من عقار تاموكسيفين، كنا قادرين على إحداث إعادة التركيب في عدد صغير من الخلايا، والسماح لنا لمتابعة انقسامات الخلية الفردية. بالإضافة إلى ذلك، لاحظنا استجابة النسخي إلى القنفذ الصوتي (صه) إشارات باستخدام Olig2-EGFP المعدلة وراثيا خط 1-3 ونحن رصدها تشكيل أهداب عن طريق إصابة شريحة مثقف مع فيروس معربا عن علامة أهداب، Sstr3-GFP 4. من أجل صورة الظهارة العصبية، ونحن حصاد الأجنة في E8.5، عزل الأنبوب العصبي، شنت شريحة العصبية في ظروف زراعة السليم في غرفة التصوير، وأجرى الوقت الفاصل بين التصوير متحد البؤر. لدينا السابقينفيفو طريقة التصوير الحي تمكننا من تتبع الانقسامات خلية واحدة لتقييم توقيت النسبية لتشكيل أهداب الابتدائية واستجابة صه بطريقة ذات الصلة من الناحية الفسيولوجية. هذه الطريقة يمكن تكييفها بسهولة باستخدام علامات الفلورسنت متميزة ويوفر مجال الأدوات التي لمراقبة سلوك الخلية في الوضع الطبيعي وفي الوقت الحقيقي.

Protocol

يصرح باستخدامها فئران بالغة من قبل خلع عنق الرحم الميكانيكية. وقد وافق جميع الإجراءات الحيوانية من قبل IACUC ولجنة السلامة الأحيائية في جامعة إيموري. 1. الجيل الجنين الصليب تاموكسيف…

Representative Results

هنا أجرينا السابقين فيفو تصوير حي من خلية واحدة الانقسامات داخل الظهارة العصبية الماوس E8.5. لتسمية الخلايا الفردية، ونحن يسببها لجنة المساواة العرقية recombinase البكتيري المحور في مجموعة فرعية من الخلايا التي تحتوي على خط مراسل لجنة المساواة العرقية التي عبرت عن dsRe…

Discussion

نظامنا فيفو السابقين تمكننا من مراقبة مباشرة الانقسامات خلية واحدة داخل الظهارة العصبية النامية في الوقت الحقيقي. وكمثال على ذلك درسنا الانقسامات الخلوية داخل الأنبوب العصبي الجنيني الماوس ومراقبتها إما تشكيل هدب أو استجابة صه. أكدنا نتائج التصوير دينا (ن</em…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وأيد هذا المشروع البحثي عن طريق الملحق الأذربيجانية، 5 R01 NS056380. وقدم دعم إضافي من خلال ناقلات الفيروسية الأساسية والأساسية الميكروسكوب من إيموري علم الأعصاب NINDS كور المرافق منحة، P30NS055077. نشكر ماوس إيموري المعدلة وراثيا واستهداف الجينات الأساسية لاشتقاق خط الماوس من GENSAT؛ جريج Pazour لمستقر SSTR3-GFP IMCD3 خط الخلية، وبرادلي يودر لSstr3-GFP lentiviral بناء. تم الحصول على الاجسام المضادة من دراسات الإنمائية الضفة هجين، وضعت تحت إشراف معاهد الصحة القومية، والتي تحتفظ بها جامعة أيوا، قسم العلوم البيولوجية، مدينة أيوا، IA 52242. وقد وافق جميع الإجراءات الحيوانية من قبل IACUC ولجنة السلامة الأحيائية في جامعة إيموري.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
Z/RED line (STOCK Tg(CAG-Bgeo,-DsRed*MST)1Nagy/J Jackson Laboratory 005438  
Olig2-eGFP line (STOCK Tg(Olig2-EGFP)EK23Gsat/Mmcd MMRRC, 010555-UCD  
CAGGCreER Jackson Laboratory 003724  
Tamoxifen Sigma T5648  
DMEM/F12 (1:1) GIBCO 21041-025  
Newborn calf serum Lonza 14-416F  
Penicillin/Streptomycin Invitrogen 15140-122  
Rat Serum SD male Harlan Bioproducts 4520  
1M Hepes BioWhittaker 17-737E  
L-Glutamine GIBCO 21041-025  
Light mineral oil Sigma M8410  
Sstr3-GFP lentivirus Emory Viral Core    
Micro-knife, size 0.025 mm Electron Microscopy Sciences 62091  
35 mm poly-L-lysine coated glass bottom dish MatTek P35GC-0-10-C  
100% petroleum jelly Kroger FL9958c  
A1R Laser Scanning Confocal Inverted Microscope Nikon    
NIS Elements software Nikon    
Imaris 3D software Bitplane AG Imaris 7.2.3  
OCT Tissue-Tek 4583  
Cryostat Leica CM1850  
Heat-inactivated sheep serum Invitrogen 16210-072  
Triton X-100 Fisher Scientific BP151  
Parafolmaldehyde Sigma P6148  
Phosphate Buffer Lab made    
Rat monoclonal anti-RFP (5F8) Chromotek 110411  
Rabbit anti-Arl13b serum NeuroMab    
mouse monoclonal anti-Arl13b 1:5 NeuroMab    
Rabbit anti-Olig2 Chemicon AB9610  
Mouse monoclonals Pax6 Developmental Hybridoma Bank Pax6  
Mouse monoclonalsShh Developmental Hybridoma Bank 5E1  
Mouse monoclonals Nkx2.2 Developmental Hybridoma Bank 74.5A5  
Rabbit polyclonal Ki67 Abcam AB15580  
Alexa Fluor 488 Molecular Probes A11029  
Alexa Fluor 568 Molecular Probes A11031  
Alexa Fluor 350 Molecular Probes A11046  
Hoechst Fisher AC22989  
TO-PRO-3 Invitrogen T3605  
ProLong Gold anti-fade reagent Invitrogen P36934  

Referências

  1. Yamada, T., Pfaff, S. L., Edlund, T., Jessell, T. M. Control of cell pattern in the neural tube: motor neuron induction by diffusible factors from notochord and floor plate. Cell. 73, 673-686 (1993).
  2. Ericson, J., Muhr, J., Placzek, M., Lints, T., Jessell, T. M., Edlund, T. Sonic hedgehog induces the differentiation of ventral forebrain neurons: A common signal for ventral patterning within the neural tube. Cell. 81, 747-756 (1995).
  3. Briscoe, J. A. Homeodomain Protein Code Specifies Progenitor Cell Identity and Neuronal Fate in the Ventral Neural Tube. Cell. 101, 435-445 (2000).
  4. Berbari, N. F., Johnson, A. D., Lewis, J. S., Askwith, C. C., Mykytyn, K. Identification of ciliary localization sequences within the third intracellular loop of G protein-coupled receptors. Mol. Biol. Cell. 19 (4), 1540-1547 (2008).
  5. Vintersten, K. Mouse in red: red fluorescent protein expression in mouse ES cells, embryos, and adult animals. Genesis. 40 (4), 241-246 (2004).
  6. Hayashi, S., McMahon, A. P. Efficient recombination in diverse tissue by a tamoxifen-inducible form of Cre: a tool for temporally regulated gene activation/inactivation in the mouse. Dev. Biol. 244 (2), 305-318 (2002).
  7. Gong, S., Zheng, C., Doughty, M. L., Losos, K., Didkovsky, N., Schambra, U. B., Nowak, N. J., Joyner, A., Leblanc, G., Hatten, M. E., Heintz, N. A gene expression atlas of the central nervous system based on bacterial artificial chromosomes. Nature. 425 (6961), 917-925 (2003).
  8. Mukouyama, Y. S., Deneen, B., Lukaszewicz, A., Novitch, B. G., Wichterle, H., Jessell, T. M., Anderson, D. J. Olig2+ neuroepithelial motoneuron progenitors are not multipotent stem cells in vivo. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 103 (5), 1551-1556 (2006).
  9. Jones, E. A. V., Crotty, D., Kulesa, P. M., Waters, C. W., Baron, M. H., Fraser, S. E., Dickinson, M. E. Dynamic in vivo imaging of postimplantation mammalian embryos using whole embryo culture. Genesis. 34, 228-235 (2002).
  10. Piotrowska-Nitsche, K., Caspary, T. Live imaging of individual cell divisions in mouse neuroepithelium shows asymmetry in cilium formation and Sonic hedgehog response. Cilia. 1 (6), (2012).
  11. Nowotschin, S., Ferrer-Vaquer, A., Hadjantonakis, A. -. K. Imaging mouse development with confocal time-lapse microscopy. Methods in Enzymology. 476, 351-377 (2010).
check_url/pt/4439?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Piotrowska-Nitsche, K., Caspary, T. Ex vivo Live Imaging of Single Cell Divisions in Mouse Neuroepithelium. J. Vis. Exp. (74), e4439, doi:10.3791/4439 (2013).

View Video