Summary

Imaging Analyse af Neuron til glia Interaktion i Mikrofluid Kultur Platform (MCP)-baseret Neuronal Axon og glia Co-kultur System

Published: October 14, 2012
doi:

Summary

Denne undersøgelse beskriver procedurerne for at oprette en ny neuronal axon og (astro) glia co-kultur platform. I dette co-kultursystem, bliver manipulation af direkte interaktion mellem en enkelt axon (og enkelt gliacelle) mulig, således mekanistisk analyse af den gensidige neuron til gliale signalering.

Abstract

Korrekt neuron at glia interaktion er kritisk for fysiologiske funktion af centralnervesystemet (CNS). Denne tovejskommunikation er sofistikerede medieret af specifikke signalveje mellem neuron og glia 1,2. Identifikation og karakterisering af disse signalveje er afgørende for forståelsen af, hvordan neuron til glia interaktion figurer CNS fysiologi. Tidligere har neuron-og glia blandede kulturer været almindeligt anvendt til afprøvning og karakterisering af signalveje mellem neuron-og glia. Hvad vi har lært af disse præparater og andre in vivo værktøjer har dog foreslået, at de gensidige signalering mellem neuron og glia ofte forekom i specifikke rum i neuroner (dvs. axon, dendritceller, eller soma) 3. Det gør det vigtigt at udvikle en ny kultur, der tillader adskillelse af neuronale rum og specifikt undersøger samspillet mellem glia og neuronale axoner / dendritter. Endvidere er den konventionelle blandede kultursystem ikke individualisere de opløselige faktorer og direkte membran kontaktsignaler mellem neuron-og glia. Det store antal neuroner og gliaceller i den konventionelle co-kultur-systemet mangler opløsningen nødvendigt at observere interaktionen mellem en enkelt axon og en gliacelle.

I denne undersøgelse beskriver vi en hidtil ukendt axon-og glia co-dyrkningssystem med anvendelse af en mikrofluid kultur platform (MCP). I dette co-kultursystem er neuroner og gliaceller dyrket i to separate kamre, der er forbundet gennem flere centrale kanaler. I denne microfluidic kultur platform, kan der kun neuronale processer (især axoner) indtast den glial side gennem de centrale kanaler. I kombination med kraftige fluorescerende protein mærkning, tillader dette system direkte undersøgelse af signalveje mellem axonale / dendritisk og glial interaktioner, sådans axon-transkriptionel regulering i glia, glia-medieret receptor handel i neuronale terminaler, og glia-medierede Axon vækst. Den snævre diameter af kammeret også signifikant forbyder strømmen af ​​neuron-beriget medium ind i glia kammer, lette probning af den direkte membran-protein-interaktion mellem axoner / dendritter og glial overflader.

Protocol

1. Montering af Mikrofluid Kultur Afdeling (MCP) MCP (fig. 1) er åbne kamre konstrueret til rumopdelt kulturer af forskellige typer af celler 4. Det har typisk to rum, der er forbundet gennem de centrale kanaler (3 um i diameter). Montering af MCP med glas-bund retter er nødvendig for at udarbejde kulturer og efterfølgende billedbehandling analyse. Dels coat sterile glas-bund retter med polyornithin (Sigma-Aldrich, 1 mg / ml) opløst i natriumtetraborat (Sigma-Aldrich,…

Representative Results

Time-lapse imaging analyse af axon-induceret GLT1 promotoraktivering i astrocytter Den rumopdelt neuron og astrocyt co-kultur system tillader kun de neuronale processer, især de axoner, til selektivt at interagere med astrocytter. Efter den vellykkede etablering af axon-og astrocyt (eller andre glialceller) co-kultur i den samlede MCP, kan forskellige typer af axon-glia vekselvirkninger undersøges såsom, axon-induceret aktivering af astroglial genpromotor aktivering, astrocyt-induceret axon …

Discussion

MCP baserede neuron og astrocytter co-kultur system tillader dissektion af detaljerede neuron til astroglia signalveje ved kun at tillade axonerne passerer de centrale kanaler og interaktion med astrogliale celler. Denne co-kultursystem kan hensigtsmæssigt konfigureres med konventionelle neuron og astrocyt kultur procedurer. Vi beskrev også en praktisk anvendelse af denne co-kultur ved at ansætte en eGFP baseret reporter for at demonstrere axon-afhængig GLT1 promotoraktivering i astrocytter.

<p class="jove_conte…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gerne takke Dr. Jeffrey Rothstein for at give BAC GLT1 eGFP mus og GLT1 antistof, Tufts Center for Neuroscience Research (NIH P30 NS047243, PI, Rob Jackson) til at give værdifulde core faciliteter, New fakultet rekruttering tilskud (NIH P30 5P30NS069254-02 , PI, Phil Haydon) i Tufts Neuroscience afdeling.

Materials

Fetal bovine serum Hyclone SH30070.03 for plating neuron for neuron cutlure medium
Fetal bovine serum Sigma-Aldrich F4135 for astrocyte culture medium
Glial derived nerve factor R&D systems 212-GD Apply 10-20 ng/ml to neuron side of chamber
Dulbecco modified eagle medium high glucose Sigma-Aldrich 11995  
70 mm cell strainer BD Falcon 352350  
Sterile glass bottom dish MatTek Corporation    
Microfluidic culture platforms Xona Microfluidics LLC SND150  
6 wells of the culture plate Cellstar 657 160  
     

Neuron culture medium

  • Neurobasal medium
  • 2% B27 Neurobasal supplement
  • 2 mM glutamate by adding 1% 100x GlutaMAX
  • 1% Penicillin-streptomysin
     

Neuron culture medium for plating cell

  • Neurobasal medium
  • 2% B27 Neurobasal supplement
  • 2 mM glutamate by adding 1% 100x GlutaMAX
  • 1% Penicillin-streptomysin
  • 5% Fetal bovine serum SH30070.03
     

Astrocyte culture medium

  • Dulbecco modified eagle medium high glucose
  • 10% Fetal bovine serum F4135
  • 1% Penicillin-streptomysin
     

Table 1. Materials used in the microfluidic culture platform-based neuronal axon and glia co-culture system.

Referências

  1. Stevens, B. Neuron-astrocyte signaling in the development and plasticity of neural circuits. Neuro-Signals. 16, 278-288 (2008).
  2. Paixao, S., Klein, R. Neuron-astrocyte communication and synaptic plasticity. Current opinion in neurobiology. 20, 466-473 (2010).
  3. Fields, R. D., Stevens-Graham, B. New insights into neuron-glia communication. Science. 298, 556-562 (2002).
  4. Park, J. W., Vahidi, B., Taylor, A. M., Rhee, S. W., Jeon, N. L. Microfluidic culture platform for neuroscience research. Nature. 1, 2128-2136 (2006).
  5. Wang, C. Y. Regulation of neuromuscular synapse development by glial cell line-derived neurotrophic factor and neurturin. The Journal of biological chemistry. 277, 10614-10625 (2002).
  6. Yang, Y. Presynaptic regulation of astroglial excitatory neurotransmitter transporter GLT1. Neuron. 61, 880-894 (2009).
  7. Regan, M. R. Variations in promoter activity reveal a differential expression and physiology of glutamate transporters by glia in the developing and mature CNS. The Journal of neuroscience. 27, 6607-6619 (2007).
  8. Swanson, R. A. Neuronal regulation of glutamate transporter subtype expression in astrocytes. The Journal of neuroscience. 17, 932-940 (1997).
  9. Schlag, B. D. Regulation of the glial Na+-dependent glutamate transporters by cyclic AMP analogs and neurons. Molecular pharmacology. 53, 355-369 (1998).
  10. Ponomarev, E. D., Novikova, M., Maresz, K., Shriver, L. P., Dittel, B. N. Development of a culture system that supports adult microglial cell proliferation and maintenance in the resting state. Journal of immunological. 300, 32-46 (2005).
  11. Espinosa-Jeffrey, A., Wakeman, D. R., Kim, S. U., Snyder, E. Y., de Vellis, J. Culture system for rodent and human oligodendrocyte specification, lineage progression, and maturation. Current protocols in stem cell biology. Chapter 2, (2009).
  12. Barres, B. A. The mystery and magic of glia: a perspective on their roles in health and disease. Neuron. 60, 430-440 (2008).
  13. Debanne, D., Rama, S. Astrocytes shape axonal signaling. Science signaling. 4, pe11 (2011).
check_url/pt/4448?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Higashimori, H., Yang, Y. Imaging Analysis of Neuron to Glia Interaction in Microfluidic Culture Platform (MCP)-based Neuronal Axon and Glia Co-culture System. J. Vis. Exp. (68), e4448, doi:10.3791/4448 (2012).

View Video