Summary

Måling af Levetid i<em> Drosophila melanogaster</em

Published: January 07, 2013
doi:

Summary

Drosophila melanogaster er en kraftfuld model organisme for at udforske den molekylære basis for levetiden regulering. Denne protokol vil diskutere de skridt, der er involveret i at generere en reproducerbar, befolkning-baseret måling af levetiden samt potentielle faldgruber og hvordan man undgår dem.

Abstract

Aldring er et fænomen, der resulterer i steady fysiologiske forringelse af næsten alle organismer i hvilke det er blevet undersøgt, hvilket fører til nedsat fysisk ydeevne og øget risiko for sygdom. Individuel aldring er åbenbart på populationsniveau som en stigning i aldersafhængig dødelighed, som ofte måles i laboratoriet ved at observere levetid i store kohorter af aldersmatchede individer. Eksperimenter, der søger at kvantificere det omfang, hvori genetiske eller miljømæssige manipulationer indvirkning levetid i simple model organismer har været bemærkelsesværdigt vellykkede til forståelse af aspekter ved aldring, som er konserveret på tværs af enheder samt for inspirerende nye strategier til at udvide levetiden og forhindre aldersbetinget sygdom hos pattedyr .

Den eddike flyve, Drosophila melanogaster, er en attraktiv model organisme for at studere de mekanismer af aldring på grund af sin relativt korte levetid, praktisk dyrehold, og letkøbte genetik.Men demografiske foranstaltninger på ældning, herunder alder-specifik overlevelse og dødelighed, er overordentligt modtagelige for selv mindre variationer i eksperimentel design og miljø, og opretholdelse af strenge laboratoriepraksis for varigheden af ​​aldrende eksperimenter er påkrævet. Disse betragtninger, sammen med behovet for at praktisere omhyggelig kontrol af genetisk baggrund, er af afgørende betydning for at skabe robuste målinger. Faktisk er der mange bemærkelsesværdige kontroverser omkring slutning fra levealder forsøg i gær, orme, fluer og mus, der er blevet sporet til miljømæssige eller genetiske artefakter 1-4. I denne protokol, beskriver vi en række procedurer, der er blevet optimeret gennem mange års måling levetid i Drosophila hjælp laboratorium hætteglas. Vi beskriver også anvendelsen af dLife software, som blev udviklet af vort laboratorium og kan hentes ( http://sitemaker.umich.edu/pletcherlab / software). dLife accelererer throughput og fremmer god praksis ved at indarbejde optimale eksperimenterende design, forenkle flyve håndtering og indsamling af data, og standardisere data analyse. Vi vil også diskutere de mange potentielle faldgruber i design, indsamling, og fortolkning af levetid data, og vi leverer skridt til at undgå disse farer.

Protocol

Vi anbefaler opbevaring af eksperimentelle fødevarer, gær pasta, og drue agarplader, der vises i protokollen ved 4 ° C og bruge dem inden for 1-2 måneder, så længe mug og tørhed ikke har sat i. Standard miljøforhold for både larver og voksne fase involverer opretholdelse af fluer i en inkubator ved 25 ° C med en 12:12 timers lys mørke-cyklus og 60% relativ fugtighed. 1. Fremstilling af Eksperimentel Food For larve vækst, bruger vi en modificeret Caltech Medium 5,<…

Representative Results

En forenklet ordning af protokollen er vist i figur 1, hvor de vigtigste trin er skitseret. Synkroniseringen del af protokollen kan anvendes til forskellige assays, der kræver aldersmatchede voksne fluer. Typiske efterladte kurver for vildtype-fluer er vist i figur 2a, ved hjælp af dLife eksperimentet management software (figur 2b, c). Voksne hanner normalt lever kortere, med begge populationer opnå en middelværdi og median levetid på&g…

Discussion

Protokollen præsenteres her beskriver en fremgangsmåde til fremstilling af reproducerbare målinger af voksne levetid i Drosophila som er passende til vurdering af genetiske, farmakologiske, og miljømæssige tiltag. Afgørende aspekter af protokollen omfatter omhyggelig styring af larveudvikling miljø, minimere voksen stress, og minimerer skævhed tværs forsøgsgrupper og kontroller. Vi præsenterer også brugen af ​​dLife levetid eksperimentet management software. Ved blot at fastgøre en stregkode el…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af midler fra Ellison Medical Foundation (SDP, http://www.ellisonfoundation.org/index.jsp ), NIH K01AG031917 (NJL, http://www.nih.gov/ ), NIH 5T32GM007315-35 (JR) og NIH R01AG030593 (SDP). Dette arbejde udnyttede ressourcerne i Drosophila Aging Core (DAC) af Nathan Shock Center of Excellence i Biologi af de aldrende finansieret af National Institute of Aging P30-AG-013.283 ( http://www.nih.gov/ ). Forfatterne vil gerne takke Pletcher Laboratorium for personer diskussioner og især Brian Chung for kritisk læsning af manuskriptet. Vi vil gerne anerkende Nick Asher og Kathryn Borowicz for assistance med indsamling af data.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
Active Dry Yeast Fleishmann’s Yeast 2192  
Grape Agar Powder Premix Genesee Scientific 47-102  
Large Embryo Collection Cages Genesee Scientific 59-101  
Large Replacement End Caps Genesee Scientific 59-103  
6 oz Square Bottom Bottles, polypropylene Genesee Scientific 32-130  
Flugs Closures for Stock Bottles Genesee Scientific 49-100  
Drosophila Vials, Wide, Polystrene Genesee Scientific 32-117  
Flugs Closures for Wide Vials Genesee Scientific 49-101  
Wide Orifice Aardvark Pipet Tips, 200 ul Denville Scientific P1105-CP  
Flystuff Flypad, Standard Size Genesee Scientific 59-114  
BD Falcon 15 ml Conical Centrifuge Tubes Fisher Scientific 14-959-70C  
Fisherbrand Petri Dishes with Clear Lids, Raised Ridge; 100 O.D. x 15 mm H; Fisher Scientific 08-757-12  
Kimax* Colorware Flasks 1,000 ml yellow Fisher Scientific 10-200-47  
PBS pH 7.4 10x Invitrogen 70011044  
Gelidium Agar Mooragar n/a  
Brewer’s Yeast MP Biomedicals 0290331280  
Granulated Sugar Kroger n/a  
Tegosept Genesee Scientific 20-266 Fly Food Preservative
Propionic Acid, 99% Acros Organics 149300025 Fly Food Preservative
Kanamycin Sulfate ISC BioExpress 0408-10G  
Tetracycline HCl VWR 80058-724  

Referências

  1. Toivonen, J. M., et al. No influence of Indy on lifespan in Drosophila after correction for genetic and cytoplasmic background effects. PLoS Genet. 3, e95 (2007).
  2. Spencer, C. C., Howell, C. E., Wright, A. R., Promislow, D. E. Testing an ‘aging gene’ in long-lived drosophila strains: increased longevity depends on sex and genetic background. Aging Cell. 2, 123-130 (2003).
  3. Burnett, C., et al. Absence of effects of Sir2 overexpression on lifespan in C. elegans and Drosophila. Nature. 477, 482-485 (2011).
  4. Bokov, A. F., et al. Does reduced IGF-1R signaling in Igf1r+/- mice alter aging?. PLoS One. 6, e26891 (2011).
  5. Lewis, E. B. A new standard food medium. Drosophila Information Service. 34, 117-118 (1960).
  6. Skorupa, D. A., Dervisefendic, A., Zwiener, J., Pletcher, S. D. Dietary composition specifies consumption, obesity, and lifespan in Drosophila melanogaster. Aging Cell. 7, 478-490 (2008).
  7. Rera, M., et al. Modulation of longevity and tissue homeostasis by the Drosophila PGC-1 homolog. Cell Metab. 14, 623-634 (2011).
  8. Kaplan, E. L., Meier, P. Nonparametric Estimation from Incomplete Observations. Journal of the American Statistical Association. 53, 457-481 (1958).
  9. Pletcher, S. D. Mitigating the Tithonus Error: Genetic Analysis of Mortality Phenotypes. Sci. Aging Knowl. Environ. 2002, pe14 (2002).
  10. Pletcher, S. D., Khazaeli, A. A., Curtsinger, J. W. Why do life spans differ? Partitioning mean longevity differences in terms of age-specific mortality parameters. J. Gerontol. A Biol. Sci. Med. Sci. 55, 381-389 (2000).
  11. Promislow, , Tatar, , Pletcher, , Carey, Below-threshold mortality: implications for studies in evolution, ecology and demography. Journal of Evolutionary Biology. 12, 314-328 (1999).
  12. Pletcher, Model fitting and hypothesis testing for age-specific mortality data. Journal of Evolutionary Biology. 12, 430-439 (1999).
  13. Partridge, L., Gems, D. Benchmarks for ageing studies. Nature. 450, 165-167 (2007).
  14. Roman, G., Endo, K., Zong, L., Davis, R. L. P[Switch], a system for spatial and temporal control of gene expression in Drosophila melanogaster. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 98, 12602-12607 (2001).
  15. Ford, D., et al. Alteration of Drosophila life span using conditional, tissue-specific expression of transgenes triggered by doxycyline or RU486/Mifepristone. Exp. Gerontol. 42, 483-497 (2007).
  16. Priest, N. K., Mackowiak, B., Promislow, D. E. The role of parental age effects on the evolution of aging. Evolution. 56, 927-935 (2002).
  17. Smith, E. M., et al. Feeding Drosophila a biotin-deficient diet for multiple generations increases stress resistance and lifespan and alters gene expression and histone biotinylation patterns. J. Nutr. 137, 2006-2012 (2007).
  18. Sorensen, J. G., Loeschcke, V. Larval crowding in Drosophila melanogaster induces Hsp70 expression, and leads to increased adult longevity and adult thermal stress resistance. J. Insect Physiol. 47, 1301-1307 (2001).
  19. Bass, T. M., et al. Optimization of dietary restriction protocols in Drosophila. J. Gerontol. A Biol. Sci. Med. Sci. 62, 1071-1081 (2007).
  20. Miquel, J., Lundgren, P. R., Bensch, K. G., Atlan, H. Effects of temperature on the life span, vitality and fine structure of Drosophila melanogaster. Mechanisms of Ageing and Development. 5, 347-370 (1976).
  21. Pittendrigh, C. S., Minis, D. H. Circadian systems: longevity as a function of circadian resonance in Drosophila melanogaster. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 69, 1537-1539 (1972).
  22. Joshi, A., Mueller, L. D. Adult crowding effects on longevity in Drosophila melanogaster: Increase in age-dependent mortality. Current Science. 72, 255-260 (1997).
  23. Ja, W. W., et al. Prandiology of Drosophila and the CAFE assay. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104, 8253-8256 (2007).
  24. Lee, K. P., et al. Lifespan and reproduction in Drosophila: New insights from nutritional geometry. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105, 2498-2503 (2008).
  25. Gargano, J. W., Martin, I., Bhandari, P., Grotewiel, M. S. Rapid iterative negative geotaxis (RING): a new method for assessing age-related locomotor decline in Drosophila. Experimental gerontology. 40, 386-395 (2005).
check_url/pt/50068?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Linford, N. J., Bilgir, C., Ro, J., Pletcher, S. D. Measurement of Lifespan in Drosophila melanogaster. J. Vis. Exp. (71), e50068, doi:10.3791/50068 (2013).

View Video