Summary

In vivo to-foton billedbehandling af oplevelsesbaseret afhængige molekylære ændringer i kortikal neuroner

Published: January 05, 2013
doi:

Summary

Erfaring-afhængige molekylære forandringer i neuroner er afgørende for hjernens evne til at tilpasse sig i svar til adfærdsmæssige udfordringer. En<em> In vivo</em> To-foton billedbehandling metode er beskrevet her, der gør det muligt at spore sådanne molekylære ændringer i de enkelte kortikale neuroner gennem genetisk kodede journalister.

Abstract

Hjernens evne til at ændre sig som svar på erfaring er afgørende for en sund hjernefunktion, og abnormaliteter i denne proces bidrager til en række forskellige hjernesygdomme 1,2. For bedre at forstå de mekanismer, der hjernens kredsløb reagerer på et dyrs oplevelse kræver evne til at overvåge erfaring-afhængige molekylære forandringer i et givent sæt af neuroner, der over en længere periode, i det levende dyr. Mens erfaring og tilknyttede neurale aktivitet er kendt for at udløse genekspression ændringer i neuroner 1,2, til de fleste af metoderne detektere sådanne ændringer ikke tillader gentagen observation af de samme neuroner over flere dage eller ikke har tilstrækkelig opløsning til at se individuelle neuroner 3 , 4. Her beskriver vi en fremgangsmåde, der kombinerer in vivo to-foton mikroskopi med en genetisk kodet fluorescerende reporter at spore erfaringer-afhængig genekspression ændringer i individuelle corticale neuroner over løbet af dag-til-dag oplevelse.

Et af de veletablerede erfaring-afhængige gener er Activity-regulerede cytoskeletal associeret protein (Arc) 5,6. Transskriptionen af Arc er hurtigt og yderst induceret af intensiveret neuronal aktivitet 3 og dens proteinprodukt regulerer endocytose af glutamatreceptorer og langsigtet synaptiske plasticitet 7. Ekspressionen af lysbuen er almindeligt anvendt som en molekylær markør til kortlægning neuronale kredsløb er involveret i specifikke adfærd 3. I de fleste af disse undersøgelser blev Arc ekspression detekteres ved in situ-hybridisering eller immunohistokemi i faste hjernesnit. Selv om disse metoder viste, at ekspressionen af ​​Arc blev lokaliseret til en delmængde af excitatoriske neuroner efter adfærdsmæssige erfaring, hvordan de cellulære mønstre af Arc udtryk kan ændre sig med flere episoder af gentagne eller særprægede oplevelser over dage blev ikke undersøgt.

ntent "> In vivo to-foton mikroskopi tilbyder en kraftfuld måde at undersøge erfaringerne-afhængige cellulære ændringer i den levende hjerne 8,9. For at undersøgelsen af Arc udtryk i levende neuroner ved to-foton mikroskopi, vi tidligere genererede et knock- i muse linje, hvori en GFP reporter anbringes under kontrol af den endogene promotor Arc 10. Denne protokol beskrives de kirurgiske forberedelser og billeddannende procedurer til sporing erfaring-afhængige Arc-GFP-ekspressionsmønstre i neuronale ensembler i det levende dyr. Ved denne fremgangsmåde , kroniske kranielle vinduer blev først implanteret i Arc-GFP mus over de kortikale områder af interesse. De pågældende dyr blev derefter gentagne gange afbildet af to-foton mikroskopi efter ønskede adfærdsmæssige paradigmer i løbet af nogle dage. Denne metode kan være generelt anvendelig til dyr, der bærer andre fluorescerende reportere erfaring-afhængige molekylære ændringer 4.

Protocol

De eksperimentelle procedurer, der beskrives nedenfor, blev godkendt af National Institute of Mental Health Animal Care og brug Udvalg og var i overensstemmelse med National Institutes of Health Guide til Pleje og anvendelse af forsøgsdyr. 1. Pre-operative Preparation Rengør alle redskaber i en varm perle sterilisator før aseptisk kirurgi, rense operationsstedet med 70% ethanol, og satte rene drop klude. Bær sterile handsker. Bedøve dyret med frisk fremstillet 1,2% A…

Representative Results

Denne protokol beskrives en metode til at følge erfaringer-afhængige molekylære ændringer i de enkelte corticale neuroner i levende dyr. En kronisk kraniale vindue først skabt over en kortikale region af interesse i en mus, der bærer en fluorescerende reporter for genekspression. To-foton mikroskopi kan derefter kobles med forskellige adfærdsmæssige paradigmer at observere behaviorally inducerede molekylære ændringer i individuelle neuroner og spore de ændringer i de samme sæt af neuroner over flere da…

Discussion

Den in vivo-billeddannelse her beskrevne fremgangsmåde muliggør gentagen undersøgelse af Arc genekspression ændringer i de samme sæt af neuroner over flere dage i det levende dyr. Det er en effektiv og alsidig metode til at indhente oplysninger om neurale plasticitet-relaterede molekylære dynamik i de enkelte neuroner som reaktion på forskellige adfærdsmæssige oplevelser. Standard histokemiske metoder, såsom in situ-hybridisering og immunfarvning kan opnå enkeltcelle-opløsning 3,

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne vil gerne takke L. Belluscio for kirurgi filme udstyr, D. Kwon til at filme assistance, K. Liu til videoredigering assistance, og K. MacLeod for al baggrundsmusik. KW anerkender den generøse støtte fra NIMH Division intramuralt forskningsprogrammer og generne, Erkendelse og Psykose Program. Dette arbejde blev støttet af NIMH Intramural Research Program (VC, YY, SMKW) og NIAAA Division Intramural kliniske og biologiske Research Program (VC, RMC, DML).

Materials

Name of the Equipment Company Catalogue number Comments (optional)
FV1000 multi-photon laser scanning microscope Olympus FV1000MPE Imaging
Dissection microscope Omano 555V107 Surgery
Stereotaxis surgery stage for mice Harvard Apparatus 726335 Surgery
20X or 25X water immersion objective Olympus XLPL25XWMP Imaging
Microscope stage with head-fixation frame Custom made N/A Imaging
Fine forceps Fine Science Tools 11251-20 Surgery
Dental drill burr Fine Science Tools 19007-05 Surgery
CCD camera QImaging QICAM 12-bit Imaging

Referências

  1. Leslie, J. H., Nedivi, E. Activity-regulated genes as mediators of neural circuit plasticity. Progress in neurobiology. 94 (3), 223-237 (2011).
  2. Flavell, S. W., Greenberg, M. E. Signaling mechanisms linking neuronal activity to gene expression and plasticity of the nervous system. Annual review of neuroscience. 31, 563-590 (2008).
  3. Guzowski, J. F., et al. Mapping behaviorally relevant neural circuits with immediate-early gene expression. Current opinion in neurobiology. 15 (5), 599-606 (2005).
  4. Barth, A. L. Visualizing circuits and systems using transgenic reporters of neural activity. Curr. Opin. Neurobiol. 17 (5), 567-5671 (2007).
  5. Lyford, G. L., et al. a growth factor and activity-regulated gene, encodes a novel cytoskeleton-associated protein that is enriched in neuronal dendrites. Neuron. 14 (2), 433-445 (1995).
  6. Link, W., et al. Somatodendritic expression of an immediate early gene is regulated by synaptic activity. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 92 (12), 5734-5738 (1995).
  7. Shepherd, J. D., Bear, M. F. New views of Arc, a master regulator of synaptic plasticity. Nature neuroscience. 14 (3), 279-284 (2011).
  8. Fu, M., Zuo, Y. Experience-dependent structural plasticity in the cortex. Trends in Neurosciences. 34 (4), 177-187 (2011).
  9. Holtmaat, A., et al. Long-term, high-resolution imaging in the mouse neocortex through a chronic cranial window. Nature. 4 (8), 1128-1144 (2009).
  10. Wang, K. H., et al. In vivo two-photon imaging reveals a role of arc in enhancing orientation specificity in visual cortex. Cell. 126 (2), 389-402 (2006).
  11. Mostany, R., Portera-Cailliau, C. A Craniotomy Surgery Procedure for Chronic Brain Imaging. J. Vis. Exp. (12), e680 (2008).
  12. Dombeck, D. A., et al. Imaging Large-Scale Neural Activity with Cellular Resolution in Awake. Mobile Mice. Neuron. 56 (1), 43-57 (2007).
  13. Zipfel, W. R. Live tissue intrinsic emission microscopy using multiphoton-excited native fluorescence and second harmonic generation. PNAS. 100 (12), 7075-7080 (2003).
  14. Eichhoff, G. In vivo calcium imaging of the aging and diseased brain. Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 35, 99-106 (2008).
  15. Klohs, J., Rudin, M. Unveiling molecular events in the brain by noninvasive imaging. The Neuroscientist: a review journal bringing neurobiology. neurology and psychiatry. 17 (5), 539-559 (2011).
  16. Chen, L. M., et al. A chamber and artificial dura method for long-term optical imaging in the monkey. Journal of neuroscience. 113 (1), 41-419 (2002).
  17. Kleinfeld, D., et al. Fluctuations and stimulus-induced changes in blood flow observed in individual capillaries in layers 2 through 4 of rat neocortex. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 95 (26), 15741-15746 (1998).
  18. Barretto, R. P., et al. Time-lapse imaging of disease progression in deep brain areas using fluorescence microendoscopy. Nature medicine. 17 (2), 223-228 (2011).
  19. Stosiek, C., et al. In vivo two-photon calcium imaging of neuronal networks. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 100 (12), 7319-7324 (2003).
  20. Tian, L., et al. Imaging neural activity in worms, flies and mice with improved GCaMP calcium indicators. Nat. Methods. 6 (12), 875-881 (2009).
check_url/pt/50148?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Cao, V. Y., Ye, Y., Mastwal, S. S., Lovinger, D. M., Costa, R. M., Wang, K. H. In Vivo Two-photon Imaging Of Experience-dependent Molecular Changes In Cortical Neurons. J. Vis. Exp. (71), e50148, doi:10.3791/50148 (2013).

View Video