Nós apresentamos uma técnica para etiquetar neurônios no sistema nervoso central (SNC) de Drosophila Embriões, o que permite a análise da morfologia neuronal ou por luz transmitida ou microscopia confocal.
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Artigo de método
Nós apresentamos uma técnica para etiquetar neurônios no sistema nervoso central (SNC) de Drosophila Embriões, o que permite a análise da morfologia neuronal ou por luz transmitida ou microscopia confocal.
Neste artigo vamos descrever como individualmente rotular neurônios no sistema nervoso central embrionário de Drosophila melanogaster por injecção juxtacellular do DiI marcador fluorescente membrana lipofílica. Este método permite a visualização da morfologia das células neuronais em grande detalhe. É possível marcar qualquer célula no sistema nervoso central: os corpos celulares dos neurónios-alvo são visualizadas sob óptica DIC ou por expressão de um marcador fluorescente tal como GFP genética. Após a marcação, o DiI pode ser transformado em um castanho mancha permanente por fotoconversão para permitir a visualização da morfologia das células, com luz transmitida e óptica DIC. Alternativamente, as células marcadas com DiI pode ser observada directamente em microscopia confocal, permitindo geneticamente introduzidos proteínas repórter fluorescentes a ser colocalised. A técnica pode ser usada em qualquer animal, independentemente do genótipo, tornando possível a análise fenótipos mutantes a resolução de células simples.
O conhecimento da morfologia neuronal ao nível das células individuais é um requisito chave para a compreensão da conectividade neuronal e função do SNC. Assim, desde os primeiros dias da neurociência, os pesquisadores têm procurado desenvolver técnicas única célula de rotulagem (ver 7 para um tratamento histórico da questão). Os métodos clássicos, tais como a coloração de Golgi proporcionar excelente resolução da morfologia neuronal, mas não são adequados, se se procura identificar um tipo específico de neurónios de uma forma dirigida, tal como a coloração ocorre de uma forma aleatória. O desenvolvimento de métodos para a coloração de células isoladas atr....
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Temos utilizado duas variantes ligeiramente diferentes do método único neurônio rotulagem em nossos laboratórios. As diferenças referem-se à colheita de embriões, dechorionisation, devitellinisation e passos de filetagem de embriões. Figura 1 apresenta uma visão geral das etapas comuns e divergentes das variantes.
1. Preparação de micro-agulhas de dissecção Embrião e Micropipetas para injeção Dye
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A Figura 4 ilustra os resultados típicos da técnica, é descrita aqui. Figura 4A mostra um exemplo de um interneurônio DiI cheio único que foi limpa photoconverted. Ele demonstra muito bem a quantidade de detalhes estas oferecem preparações. Quando visto sob óptica DIC contexto espacial da célula marcada no interior do tecido não-rotulada envolvente se torna visível, por exemplo, a posição do corpo da célula dentro do córtex e da projecção de fibras dentro do neurópilo.
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Uma grande vantagem da Drosophila como sistema modelo é que ele permite a análise do desenvolvimento e função do nível de células únicas. Isto é especialmente útil em relação ao sistema nervoso, onde a diversidade de tipos de células é excepcionalmente elevada e a função e morfologia de células vizinhas pode ser totalmente diferente.
O método que apresentamos aqui permite a marcação de neurónios individuais, com um corante que pode ser transformada em uma mancha permanente ou examin.......
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Os autores declaram que não têm interesses conflitantes financeiros.
Este trabalho foi financiado por uma doação do DFG GMT
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| Nome | Empresa | Número de catálogo | Comentários |
|---|---|---|---|
| Nome do reagente / Material | Companhia | Número de Catálogo | Comentários |
| REAGENTES | |||
| DAB | Sigma-Aldrich | D-5905 | 2-3 mg / ml em 100 mM Tris-HCl, pH 7,4 |
| DiI | Sondas Invitrogen / Molecular | D-282 | 1 mg / ml em etanol |
| Formaldeído | Merck Millipore | 7,4% em PBS | |
| Glicerina | Roth | 3783 | 70% em PBS |
| Heptano Cola | Beiersdorf AG | Cello 31-39-30 * | diluir ca. 1 a 1 com n-heptano |
| PBS | 1x | ||
| TRIS | Roth | 4855 | |
| Vectashield | Vector Laboratories | H1000 | |
| EQUIPAMENTOS | |||
| Microscópio confocal | Leica | TCS SP2 | para visualizar e documentar bulas de fluorescência |
| DC - ummplifier | Dragan Corporação | Cornerstone ION-100 | para executar as bulas |
| Lamelas | Menzel | BB018018A1 | 18 x 18 mm |
| Lamelas | Menzel | BB024060A1 | 24 x 60 mm |
| Dissecando microscópio | Leica | MZ8 | para preparar e disect embriões |
| Plana Capilares | Hilgenberg | diâmetro exterior 1 mm; glas espessura 0,1 milímetros | |
| Injeção Capilares | Produtos ciência | 100 GB TF 8P | |
| R micromanipulador | Leica | para executar as bulas | |
| Modelo P-97 | Sutter Instruments | para puxar capilares | |
| Slides objeto | Marienfeld Superior | 1000000 | |
| Microscópio científica | Zeiss | Axioskop 2 mot | para ver bulas após fotoconversão |
| Microscópio científica | Olimpo | BX50 | para executar as bulas |
| Câmera de vídeo Sony MC3255 | Sony / AVT Chifre | Sony MC3255 | para gravar rotulamentos após fotoconversão |
Tabela 1.
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