Summary

Generering af stabile humane cellelinjer med tetracyklin-inducerbare (Tet-on) shRNA eller cDNA Expression

Published: March 05, 2013
doi:

Summary

En hurtig og enkel måde at generere humane cellelinier med inducerbare og reversibel cDNA overekspression eller shRNA-medieret knock-down af genet af interesse. Denne metode gør det muligt for forskerne at pålideligt og meget reproducerbart manipulere cellelinier, som er vanskeligt at ændre ved transient transfektion metoder eller konventionelle knockdown / knockout strategier.

Abstract

En vigtig metode inden for pattedyrcelle biologi er manipulering af ekspressionen af ​​gener af interesse i udvalgte cellelinier, med henblik på at afsløre en eller flere af genets funktion (er) under anvendelse af overspændinger / stabil overekspression eller knockdown af genet af interesse. Desværre for forskellige celle-biologiske undersøgelser denne fremgangsmåde er uegnet, når manipulationer af genekspression resulterer i cellevækst / proliferation defekter eller uønsket celledifferentiering. Derfor har forskere tilpasset tetracyclin repressorproteinet (Tetr), taget fra E. coli tetracyclinresistens-operonet 1, til at generere meget effektive og stramme regulerende systemer til at udtrykke cDNA'er i pattedyrceller 2,3. Kort sagt har Tetr blevet modificeret til enten (1) blok initiering af transkription ved binding til den Tet-operatoren (TO) i promotorregionen ved tilsætning af tetracyclin (betegnet Tet-off system) eller (2) binder til i tHan fravær af tetracyclin (betegnet Tet-on system) (fig. 1). I betragtning af den ulempe, at Tet-off system kræver en konstant tilstedeværelse af tetracyclin (som har en halveringstid på omkring 24 timer i væv celledyrkningsmedium) Tet-on er blevet mere ekstensivt optimeret, hvilket resulterer i udvikling af meget stramme og effektive vektorsystemer til cDNA-ekspression som anvendt her.

Kort efter indførelse af RNA-interferens (RNAi) for genet knockdown i pattedyrceller 4, vektorer, der udtrykker short-hairpin RNA (shRNAs) blev beskrevet som fungerer meget lig siRNAs 5-11. Disse shRNA-medierede knockdown metoder har den samme begrænsning som konventionelle knockout strategier, idet stabil depletering ikke er muligt, når genmål er afgørende for cellulær overlevelse. For at overvinde denne begrænsning, van de Wetering et al. 12 modificeret shRNA ekspressionsvektoren pSUPER 5 </sup> ved at indsætte en AT i promotorregionen, hvilket gjorde dem i stand til at generere stabile cellelinjer med tetracyklin-inducerbare udtømning af deres target-gener af interesse.

Her beskriver vi en fremgangsmåde til effektivt at generere stabile human Tet-på cellelinjer, som pålideligt driver enten inducerbar overekspression eller nedbrydning af genet af interesse. Med denne metode har vi med succes skabt Tet-on cellelinier, som væsentligt lettede analyse af MST / hMOB / NDR kaskade i centrosome 13,14 og apoptose signalering 15,16. I denne rapport beskriver vi vore vektorer af valg, ud over at beskrive de to på hinanden følgende manipulation trin, der er nødvendige for effektivt at generere human Tet-on cellelinier (figur 2). Desuden foruden skitserer en protokol til generering af humane Tet-on cellelinjer, vil vi diskutere kritiske aspekter vedrørende de tekniske procedurer og karakterisering af Tet-on celler.

Protocol

1. Kloning af pcDNA6_TetR_IRES_blast Som illustreret i figur 3, udføres en delvis fordøjelse af pcDNA6/TR plasmid (V1025-20, Invitrogen) med restriktionsenzymerne Xba I og Nco I til fjernelse af tetR-genet og promotoren for blasticidin resistens (BlastR) genet. Isoler 4,6 kb vektorfragment. At fjerne polyadenyleringssekvensen fra tetR-genet, indføres ved hjælp af PCR et Xhol-site umiddelbart efter stopkodonen i Tetr cDNA samtidig opretholde den Xba…

Representative Results

Et eksempel på den første karakterisering af RPE-1 cellelinjer stabilt udtrykker Tetr er vist i figur 4. Bemærk, at alle RPE-1-kloner udtrykker varierende niveauer af Tetr (sammenlign bane 2 og 5), mens den parentale cellelinie (der tjener som negativ kontrol) ikke udtrykker det eksogene Tetr protein (Figur 4, bane 1). Denne variation i Tetr ekspression blandt RPE-1 Tet-on cellekloner forventes, idet ekspressionen af ​​Tetr udtrykker plasmider er meget afhængig af plasmidet inte…

Discussion

Vi mener, at Tet-on systemer i høj grad lette analyse af genfunktion, især i cellesystemer, der er vanskelige at manipulere og / eller når den manipulerede gen er væsentlig for celleoverlevelse. Endvidere evnen til at kontrollere genekspression ved meget specifikke Tet-on systemer giver mulighed for at studere genfunktioner på forskellige stadier (f.eks under cellecyklusprogression eller veldefinerede differentieringsprocesser). Den metode præsenteres her, vil gøre det muligt for forskerne at generere den ønsked…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker alle medlemmer af vores laboratorium for personer diskussioner. Vi takker Joanna Lisztwan og Christina Gewinner for kritisk læsning af manuskriptet. Dette arbejde blev støttet af BBSRC tilskud BB/I021248/1 og Wellcome Trust tilskud 090090/Z/09/ZAH er et Wellcome Trust Research Career Development stipendiat ved UCL Cancer Institute.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
Fetal Bovine Serum(FBS) Invitrogen 16000-044 Tested Tet-free
Blasticidin Invivogen ant-bl-1
Zeocin Invivogen ant-zn-5
G418 PAA laboratories P31-011 100 mg/ml in media
anti-TET02 MoBiTec GmbH TET02 Use at 1/1000 to 1/2000 for WB
pcDNA6/TR Invitrogen V1025-20
pT-Rex DEST30 Invitrogen 12301-016
Tetracycline Sigma 87128 2 mg/ml in ethanol
Doxycycline Sigma D9891 2 mg/ml in water
Cloning cylinders Bellco Glass Inc. 2090-00808 re-useable

Referências

  1. Postle, K., Nguyen, T. T., Bertrand, K. P. Nucleotide sequence of the repressor gene of the TN10 tetracycline resistance determinant. Nucleic Acids Res. 12, 4849-4863 (1984).
  2. Gossen, M., Bujard, H. Tight control of gene expression in mammalian cells by tetracycline-responsive promoters. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 89, 5547-5551 (1992).
  3. Gossen, M., et al. Transcriptional activation by tetracyclines in mammalian cells. Science. 268, 1766-1769 (1995).
  4. Elbashir, S. M., et al. Duplexes of 21-nucleotide RNAs mediate RNA interference in cultured mammalian cells. Nature. 411, 494-498 (2001).
  5. Brummelkamp, T. R., Bernards, R., Agami, R. A system for stable expression of short interfering RNAs in mammalian cells. Science. 296, 550-553 (2002).
  6. McManus, M. T., Petersen, C. P., Haines, B. B., Chen, J., Sharp, P. A. Gene silencing using micro-RNA designed hairpins. RNA. 8, 842-850 (2002).
  7. Miyagishi, M., Taira, K. U6 promoter-driven siRNAs with four uridine 3′ overhangs efficiently suppress targeted gene expression in mammalian cells. Nat. Biotechnol. 20, 497-500 (2002).
  8. Paddison, P. J., Caudy, A. A., Bernstein, E., Hannon, G. J., Conklin, D. S. Short hairpin RNAs (shRNAs) induce sequence-specific silencing in mammalian cells. Genes Dev. 16, 948-958 (2002).
  9. Paul, C. P., Good, P. D., Winer, I., Engelke, D. R. Effective expression of small interfering RNA in human cells. Nat. Biotechnol. 20, 505-508 (2002).
  10. Sui, G., et al. A DNA vector-based RNAi technology to suppress gene expression in mammalian cells. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 99, 5515-5520 (2002).
  11. Yu, J. Y., DeRuiter, S. L., Turner, D. L. RNA interference by expression of short-interfering RNAs and hairpin RNAs in mammalian cells. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 99, 6047-6052 (2002).
  12. van de Wetering, M., et al. Specific inhibition of gene expression using a stably integrated, inducible small-interfering-RNA vector. EMBO Rep. 4, 609-615 (2003).
  13. Hergovich, A., et al. The MST1 and hMOB1 tumor suppressors control human centrosome duplication by regulating NDR kinase phosphorylation. Curr. Biol. 19, 1692-1702 (2009).
  14. Hergovich, A., Lamla, S., Nigg, E. A., Hemmings, B. A. Centrosome-associated NDR kinase regulates centrosome duplication. Mol. Cell. 25, 625-634 (2007).
  15. Kohler, R. S., Schmitz, D., Cornils, H., Hemmings, B. A., Hergovich, A. Differential NDR/LATS interactions with the human MOB family reveal a negative role for human MOB2 in the regulation of human NDR kinases. Mol. Cell Biol. 30, 4507-4520 (2010).
  16. Vichalkovski, A., et al. NDR kinase is activated by RASSF1A/MST1 in response to Fas receptor stimulation and promotes apoptosis. Curr. Biol. 18, 1889-1895 (2008).
  17. Pear, W. S., et al. Efficient and rapid induction of a chronic myelogenous leukemia-like myeloproliferative disease in mice receiving P210 bcr/abl-transduced bone marrow. Blood. 92, 3780-3792 (1998).
check_url/pt/50171?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Gomez-Martinez, M., Schmitz, D., Hergovich, A. Generation of Stable Human Cell Lines with Tetracycline-inducible (Tet-on) shRNA or cDNA Expression. J. Vis. Exp. (73), e50171, doi:10.3791/50171 (2013).

View Video