Мы разработали простой, надежный и относительно недорогой метод для интубации трахеи у мышей через прямой ларингоскопии с использованием отоскоп с 2,0 мм зеркалах. Этот метод атравматичность и могут быть использованы для повторных измерений в хронических экспериментах. Мы находим его превосходит трахеостомии или ранее сообщалось нехирургических методов.
Мыши, как дикого типа и трансгенные, являются основной модели млекопитающих в биомедицинских исследованиях себе. Интубации и механической вентиляции необходимы для целых экспериментах на животных, которые требуют хирургического вмешательства под глубокими анестезии или измерений функции легких. Трахеостомия был стандартный для интубации дыхательных путей у этих мышей, чтобы искусственной вентиляции легких. Оротрахеальная интубация сообщалось, но не был успешно используется во многих исследованиях из-за существенного технической сложности или требования для узкоспециализированной и дорогостоящего оборудования. Здесь мы сообщаем методику прямой ларингоскопии с использованием отоскоп оснащенный 2,0 мм зеркалах и с помощью 20 G внутривенный катетер как эндотрахеальной трубки. Мы использовали эту технику широко и надежно интубировать и провести точные оценки функции легких у мышей. Этот метод доказал сейф, практически без потери животных в опытных руках. Более того, этот методмогут быть использованы для повторных исследований мышам в хронических моделей.
Лаборатория мыши вытеснил практически все виды, как основной модели млекопитающих биологии и патобиологии. Лаборатория мыши самый маленький вид млекопитающих, который был четко и подробно показаны свою ценность в качестве модели заболеваний человека и оказывается очень полезной в достижений нашего понимания человеческой биологии и болезней. Короткое время беременности и существенно более низкая стоимость позволило разработать и изучение нулевых и трансгенных мышей в качестве банального инструмента в биомедицинских исследованиях. Тем не менее, размер средней лабораторных мышей (20-25 г) ограничивает их исследование в исследованиях физиологически или хирургическим основе и, следовательно, некоторые исследователи изучают крупных видов млекопитающих. Препятствием для использования мышей в этих исследованиях является трудность с методами интубации, которые позволили бы физиологические измерения или обширные хирургические процедуры под глубоким наркозом. Трахеостомия 1 был использован в качестве стандартной тэchnique вместо интубации из-за большей простоты выполнения этой техники и скромный мастерство требуется. Тем не менее, трахеостомия не способствует хронических или восстановления исследований хирургии; Таким образом, оно ограничено острых опытах. Трахеостомия также может быть смешанным переменной в исследовании, в котором воспаление или чувствительные физиологические рефлексы важны.
Наша лаборатория попробовали большинство из методов, описанных другими исследователями и нашли их недостаточными для целого ряда причин. Трахеостомия слишком травматично и индуцирует кровотечение и воспаление дыхательных путей. Гораздо более проблематичным в том, что она не может быть реально повторяется. Многие относительно неинвазивные методы, которые требуют скромный инвестиций в оборудование, не являются достаточно надежными. Другие методы требуют дорогого оборудования, которое трудно оправдать, не зная, если оборудование будет работать в конкретном приложении. Таким образом, мы стремились разработать нетравматического технику, которая не требуется не больше тHan скромные инвестиции в специализированном оборудовании, может быть достигнуто быстро и надежно, может быть повторен при хронических моделей, и может быть использован в большом количестве животных. Здесь мы сообщаем такую технику.
В этом докладе мы опишем простой, надежный способ, чтобы интубировать мышей, что является нетравматическое и могут быть использованы повторно в том же животного. Эта техника может быть достигнуто с простой лаборатории или медицинского оборудования, которые можно приобрести за скромну…
The authors have nothing to disclose.
Заслуги Грант из Департамента по делам ветеранов и T32-HL098062 грант от NHLBI из Национальных Институтов Здоровья поддержала эту работу. Мы хотим благодарят за консультацией Рэндольф H. Hasting, MD, Ph.D. и советы и поддержку ветеринарной медицинской части В.А. Сан-Диего системы здравоохранения.
Operating Otoscope Head | Welch Allyn | 21700 | $188.98 |
Otoscope Handle | Welch Allyn | 71000 | $112.20 |
Reuseable Speculum | Welch Allyn | 22002 | $ 3.98 |
Fine Forceps | Miltex | 18-779 | $107.18 |
Small clamp stand to hold otoscope | |||
Optional Equipment | |||
Isoflurane Vaporizer (multiple circuit with vacuum waste gas handling) | Summit Medical | $3,000 | |
Flexivent (Animal Ventilator) | SCIREQ | $35,000 | |
Supplies | |||
Intravenous catheter (20 ga x 1 inch) | BD | 381233 | $ 9.62 |
Polyethylene tubing (PE10) (0.011 inch I.D., 0.024 inch O.D.) 100 ft | Intramedic, Clay-Adams | 427401 | $115.70 |
Ketamine 100 mg/ml (10 ml bottle) | Butler | 23061 | $10.00 |
Xylazine (100 ml bottle) | Vedco | 24105 | $20.00 |
Isoflurane (250 ml bottle) | $15.00 | ||
vecuronium bromide 10 mg/10 ml | Pfizer | NDC 0069-0094-01 | $15.00 |