Farelerde Endotrakeal Entübasyon<em> Via</emBir Otoskop Kullanma> Doğrudan Larengoskopi
Summary
Biz 2.0 mm spekulum ile bir otoskop kullanarak direkt laringoskopi yoluyla farelerde entübasyon için, basit, güvenilir ve nispeten ucuz bir yöntem geliştirdik. Bu teknik, atravmatik ve kronik deneylerde tekrarlanan ölçümler için de kullanılabilir. Biz üstün trakeostomi veya daha önce cerrahi dışı teknikler bildirdi bulabilirsiniz.
Abstract
Fareler, vahşi tipli ve transjenik hem şu anda, biyomedikal araştırmalarda asıl memeli modeli vardır. Entübasyon ve mekanik ventilasyon derin anestezi veya akciğer fonksiyon ölçümleri altında ameliyat gerektiren bütün hayvan deneyleri için gereklidir. Trakeostomi mekanik havalandırma sağlamak için bu farelerde entübasyon için standart olmuştur. Orotrakeal entübasyon nedeniyle önemli teknik zorluk veya çok özel ve pahalı ekipman için bir gereklilik rapor edilmiştir ancak başarılı birçok çalışmada kullanılmıştır olmamıştır. Burada bir 2.0 mm spekulum ile donatılmış bir otoskop kullanarak ve bir endotrakeal tüp olarak 20 G intravenöz kateter kullanarak doğrudan laringoskopi bir teknik rapor. Biz entübe ve farelerde akciğer fonksiyonunun doğru değerlendirmeler yapmak için yaygın ve güvenilir bu tekniği kullandık. Bu teknik, deneyimli ellerde aslında hiçbir hayvan kaybı ile güvenli kanıtlamıştır. Ayrıca, bu teknik,Kronik bir model farelerin tekrarlanan çalışmalar için de kullanılabilir.
Introduction
Laboratuvar faresi biyoloji ve patobiyolojisinde başlıca memeli model olarak hemen hemen tüm türlerin yerini almıştır. Laboratuvar faresi açıkça ve yoğun insan hastalığının bir model olarak değer olduğu gösterilmiştir ve insan biyolojisi ve hastalık anlayışımızın gelişmeler paha biçilmez kanıtlamıştır küçük memeli türüdür. Kısa gebelik süresi ve önemli ölçüde daha düşük maliyetli bir biyomedikal araştırmalarda yaygın araç olarak boş ve transjenik farelerin geliştirme ve çalışma sağladı. Ancak, ortalama laboratuvar faresi (20-25 g) büyüklüğü dolayısıyla, bazı araştırmacılar, daha büyük memeli türler olan, fizyolojik ya da cerrahi araştırmalarda kendi çalışma sınırlı gelmiştir. Bu çalışmalarda fareler kullanarak bir engel derin anestezi altında fizyolojik ölçümler veya geniş cerrahi prosedürler sağlayacak entübasyon teknikleri ile karşılaşılan zorluk olduğunu. Trakeostomi 1, standart te olarak kullanılmaktadırçünkü gerekli bu tekniği ve mütevazı beceri yerine daha kolay yerine entübasyon NİK. Ancak, trakeostomi kronik veya kurtarma cerrahi çalışmalar için elverişli değildir; bu nedenle, akut deneyler ile sınırlıdır. Trakeostomi de iltihap veya hassas fizyolojik refleksleri önemli olduğu araştırma karıştırıcı bir değişken olabilir.
Bizim laboratuvar diğer araştırmacılar tarafından açıklanan tekniklerin çoğunu denedim ve çeşitli nedenlerle için onları yetersiz buldu. Trakeostomi çok travmatik ve kanama ve hava yolu iltihabı neden olur. Çok daha sorunlu bunun fizibil tekrar edilemez olmasıdır. Ekipman mütevazı bir yatırım gerektiren birçok nispeten non-invaziv teknikler yeterince güvenilir değildir. Diğer teknikler ekipman belirli bir uygulamada çalışacak olmadığını bilmeden haklı zordur pahalı ekipman gerektirir. Böylece, biz artık t gerekli bir nontravmatik tekniğini geliştirmek için çalıştıhan özel bir ekipman mütevazı bir yatırım, hızlı bir şekilde gerçekleştirilebilir olabilir ve güvenilir bir şekilde, kronik modellerinde tekrar olabilir ve hayvanların çok sayıda kullanılabilir. İşte biz böyle bir teknik rapor.
Protocol
Representative Results
Discussion
Bu yazıda travmatik olmayan ve aynı hayvanda tekrar tekrar kullanılabilir fareler entübe için basit, güvenilir bir tekniği açıklar. Bu teknik bir mütevazı toplamı için satın alınabilir basit laboratuar ya da tıbbi ekipman ile gerçekleştirilebilir. Ilk Hastings ve arkadaşları tarafından rapor edilen 4 doğrudan laringoskopide tekniği, çeşitli amaçlar için de kullanılabilir, ama esas olarak doğru bir alt solunum sistemine test maddesi sunmak için. Biz nedeniyle tekrarlanan ölçüml…
Declarações
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Veteran İşleri Bölümü'nden bir Liyakat Grant ve Sağlık Ulusal Enstitüleri enstitünün bir T32-HL098062 hibe bu çalışmaları destekledi. Biz minnetle Randolph H. Hasting, MD, Ph.D. tavsiyesi teşekkür etmek istiyoruz ve tavsiye ve VA San Diego Sağlık Sistemi Veteriner Tıp Birimi desteği.
Materials
| Operating Otoscope Head | Welch Allyn | 21700 | $188.98 |
| Otoscope Handle | Welch Allyn | 71000 | $112.20 |
| Reuseable Speculum | Welch Allyn | 22002 | $ 3.98 |
| Fine Forceps | Miltex | 18-779 | $107.18 |
| Small clamp stand to hold otoscope | |||
| Optional Equipment | |||
| Isoflurane Vaporizer (multiple circuit with vacuum waste gas handling) | Summit Medical | $3,000 | |
| Flexivent (Animal Ventilator) | SCIREQ | $35,000 | |
| Supplies | |||
| Intravenous catheter (20 ga x 1 inch) | BD | 381233 | $ 9.62 |
| Polyethylene tubing (PE10) (0.011 inch I.D., 0.024 inch O.D.) 100 ft | Intramedic, Clay-Adams | 427401 | $115.70 |
| Ketamine 100 mg/ml (10 ml bottle) | Butler | 23061 | $10.00 |
| Xylazine (100 ml bottle) | Vedco | 24105 | $20.00 |
| Isoflurane (250 ml bottle) | $15.00 | ||
| vecuronium bromide 10 mg/10 ml | Pfizer | NDC 0069-0094-01 | $15.00 |
Referências
- Rockman, H. A., et al. Segregation of atrial-specific and inducible expression of an atrial natriuretic factor transgene in an in vivo murine model of cardiac hypertrophy. Proc. natl. Acad. Sci. U.S.A. 88, 8277-8281 (1991).
- Watanabe, A., Hashimoto, Y., Ochiai, E., Sato, A., Kamei, K. A simple method for confirming correct endotracheal intubation in mice. Lab. Anim. 43, 399-401 (2009).
- Orebaugh, S. L. Succinylcholine: adverse effects and alternatives in emergency medicine. Am. J. Emerg. Med. 17, 715-721 (1999).
- Hastings, R. H., Summers-Torres, D. Direct Laryngoscopy in Mice. Contemp. Lab. Anim. Sci. 38, 33-35 (1999).
- Berul, C. I., Aronovitz, M. J., Wang, P. J., Mendelsohn, M. E. In vivo cardiac electrophysiology studies in the mouse. Circulation. 94, 2641-2648 (1996).
- Ewart, S. L., Gavett, S. H., Margolick, J., Wills-Karp, M. Cyclosporin A attenuates genetic airway hyperresponsiveness in mice but not through inhibition of CD4+ or CD8+ T cells. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 14, 627-634 (1996).
- Ewart, S. L., Mitzner, W., DiSilvestre, D. A., Meyers, D. A., Levitt, R. C. Airway hyperresponsiveness to acetylcholine: segregation analysis and evidence for linkage to murine chromosome 6. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 14, 487-495 (1996).
- Spoelstra, E. N., et al. A novel and simple method for endotracheal intubation of mice. Lab. 41, 128-135 (2007).
- Boll, H., et al. High-speed single-breath-hold micro-computed tomography of thoracic and abdominal structures in mice using a simplified method for intubation. J. Comput. Assist. Tomogr. 34, 783-790 (2010).
- Brown, R. H., Walters, D. M., Greenberg, R. S., Mitzner, W. A method of endotracheal intubation and pulmonary functional assessment for repeated studies in mice. J. Appl. Physiol. 87, 2362-2365 (1999).
- Vergari, A., Polito, A., Musumeci, M., Palazzesi, S., Marano, G. Video-assisted orotracheal intubation in mice. Lab. Anim. 37, 204-206 (2003).
- Vergari, A., et al. A new method of orotracheal intubation in mice. Eur. Rev. Med. Pharmacol. Sci. 8, 103-106 (2004).
- Hamacher, J., et al. Microscopic wire guide-based orotracheal mouse intubation: description, evaluation and comparison with transillumination. Lab. Anim. 42, 222-230 (2008).
- Rivera, B., Miller, S., Brown, E., Price, R. A novel method for endotracheal intubation of mice and rats used in imaging studies. Cont. Top. Lab. Anim. Sci. 44, 52-55 (2005).
- MacDonald, K. D., Chang, H. Y., Mitzner, W. An improved simple method of mouse lung intubation. J. Appl. Physiol. 106, 984-987 (2009).
- De Vleeschauwer, S. p. I., et al. Repeated invasive lung function measurements in intubated mice: an approach for longitudinal lung research. Lab. Anim. 45, 81-89 (2011).
- Zhao, X., et al. A technique for retrograde intubation in mice. Lab. Anim. 35, 39-42 (2006).
- Singer, T., et al. Left-sided mouse intubation: description and evaluation. Exp. Lung Res. 36, 25-30 (2010).
