Descrevemos aqui um protocolo revisto para a cultura em grande escala de embrionário C. elegans células. Embryonic C. elegans células cultivadas in vitro utilizando este método, parece diferenciar e recapitular a expressão de genes de uma forma específica de célula. As técnicas que necessitem de acesso directo para as células ou o isolamento de tipos específicos de células a partir de outros tecidos podem ser aplicadas em C. elegans células cultivadas.
C. elegans é um poderoso sistema de modelo, em que as técnicas genéticas e moleculares são facilmente aplicáveis. Até há pouco tempo, porém, as técnicas que requerem o acesso directo às células e o isolamento de tipos de células específicos, não pôde ser aplicada em C. elegans. Esta limitação foi devido ao facto de que os tecidos estão confinados dentro de uma cutícula pressurizado que não é facilmente digerida por tratamento com enzimas e / ou detergentes. Baseado no trabalho pioneiro por Laird Bloom, Christensen e seus colegas desenvolveram um método robusto para a cultura C. elegans células embrionárias em larga escala. Os ovos são isolados a partir de adultos grávidas por tratamento com lixívia / NaOH e subsequentemente tratado com quitinase para remover as cascas. As células embrionárias são, em seguida, dissociados por pipetagem manual e plaqueadas sobre substrato de vidro coberto, em meio enriquecido com soro. Dentro de 24 horas de celas de isolamento começam a diferenciar alterando a morfologia e expressando marke específico de célulars. C. elegans células cultivadas usando este método para sobreviver até duas semanas in vitro, e foram utilizados para electrofisiológico, imunoquímicos e de imagem, bem como as análises terem sido escolhidas e utilizadas para microsséries de perfilamento.
Caenorhabditis elegans (C. elegans) é um poderoso organismo modelo para investigar as bases moleculares da função celular, diferenciação e comportamento. Embora o seu genoma, metabólica e vias biossintéticas são semelhantes aos vertebrados ', a sua tratabilidade genética e molecular são muito maiores 2. Entre as suas vantagens são o seu tamanho e a anatomia simples, o seu ciclo de vida rápida (3 dias a 25 ° C), tempo de vida curto (2 semanas) e um grande número de descendentes (> 200). Devido à sua natureza hermafrodita e ciclo de vida curto, manipulações moleculares e genéticos são simples em C. elegans, incluindo a geração de animais transgênicos 3,4 ea aplicação de técnicas genéticas knock-down, como interferência de RNA 5. C. elegans corpo e casca de ovo são transparentes. Portanto, as células podem ser facilmente visualizadas tanto no adulto e o embrião usando microscopia padrão. Nos últimos 40 anos, a C. elegans </em> comunidade criou recursos inestimáveis para C. pesquisa elegans incluindo uma grande coleção de mutantes, nocautes e transgênicos, uma descrição detalhada da anatomia e desenvolvimento 6,7, incluindo a reconstrução completa do sistema nervoso 8, e um genoma completamente seqüenciado, que é bem anotado e disponível para toda a comunidade ( www.wormbase.com ).
Apesar das inúmeras vantagens, algumas abordagens experimentais têm sido um desafio em C. elegans. Estes incluem os que exigem a acessibilidade à membrana plasmática das células e isolamento de tecidos ou tipos celulares. Na verdade C. tecidos elegans estão confinados dentro do seu esqueleto hidrostática pressurizado, o qual não é facilmente digerida por tratamento enzimático ou detergentes. No final da década de 1990 Miriam Goodman e Janet Richmond pioneira métodos para registros eletrofisiológicos de C. elegansneurônios e células musculares em situ 9,10. Embora estes métodos nos deu importantes insights sobre neuronal e na função muscular in vivo, eles são um desafio e baixo rendimento. Métodos alternativos para estudar a função das células in vivo foram desenvolvidos, principalmente nomeadamente imagiologia cálcio vivo utilizando sensores de cálcio geneticamente codificado como GCamP e cameleon 11-13. Estes métodos, porém, não permite a utilização de ferramentas farmacológicas, porque eles são aplicados em animais vivos intactos.
A primeira tentativa de cultivo C. elegans células in vitro em larga escala foi feita por Laird Bloom durante a preparação da sua tese de doutoramento 14. Infelizmente, as dificuldades encontradas com fraca adesão das células ao substrato, diferenciação celular pobres e sobrevivência impediu o estabelecimento deste protocolo no início como um método de cultura celular robusto. Em 1995, Edgar e colegas publicaram um procedimentopara investigar a divisão celular e morfogénese de isolamento e cultura de uma única C. elegans embriões 15. As células embrionárias obtidos por digestão das cascas de ovo com uma combinação de tratamento enzimático e dissociação manual, continuou a proliferar, produzindo-se ~ 500 células para 15. Posteriormente, Leung e colegas cultivaram um pequeno número de blastômeros para estudar a morfogênese intestinal. Eles mostraram que um em vitro isolado E blastômeros produziu células intestinais polarizadas que criaram uma estrutura análoga à do lúmen intestinal, interagindo uns com os outros através de aderentes apicais junções 16. Buechner e seus colegas também relataram um método semelhante para cultura C. elegans células embrionárias in vitro 17.
Com base neste trabalho precoce, Christensen e seus colegas desenvolveram um protocolo robusto para a cultura C embrionário. elegans células in vitro 1. Elesmostrou que isolado C. elegans células podem diferenciar-se em vários tipos de células e manter as características que possuem in vivo, incluindo a expressão de marcadores específicos de células. Várias técnicas que são um desafio in vivo, pode ser aplicado em isolado C. elegans células embrionárias. Estes incluem electrofisiológico 1,18 19, de imagem e de técnicas imunoquímicas 20,21, bem como o isolamento de tipos de células específicas de célula fluorescente-Activated (FACS) para a construção de células específicas de bibliotecas de cDNA 22,23. Gene knockdown técnicas, tais como interferência de RNA (RNAi) pode ser aplicado em cultura C. elegans células 1 e um método de marcação metabólica novo usando azido-açúcar como uma ferramenta para a descoberta de glicoproteína, foi recentemente desenvolvido para cultivados in vitro C. elegans células 24.
Em conclusão, o método de cultura de células se expande a matriz of técnicas que podem ser aplicadas para a C. modelo elegans num esforço para decifrar a função do gene no contexto de um organismo vivo. Descrevemos aqui o protocolo para o cultivo C. elegans células embrionárias in vitro, que é em grande parte baseado no protocolo descrito primeiramente por Christiansen e colegas 1.
C. elegans é um poderoso organismo modelo para decifrar os caminhos genéticos envolvidos no desenvolvimento, comportamento e envelhecimento. A sua conveniência provém principalmente da facilidade com que ele pode ser manipulado geneticamente e do seu ciclo de vida curto. Apesar da sua conveniência, C. elegans tem suas limitações. C. elegans células são pequenas e confinado dentro de uma cutícula pressurizado que limita a aplicação de métodos que requerem o acesso directo às célu…
REAGENTS | |||
Bacto Peptone | VWR International Inc. | 90000-382 | |
Difco Agar Granulated | VWR International Inc. | 90000-784 | |
Bacto Tryptone | VWR International Inc. | 90000-284 | |
Bacto Yeast Extract | VWR International Inc. | 90000-724 | |
Leibovitz’s L-15 Medium (1x) Liquid | Invitrogen | 11415-064 | |
Fetal Bovine Serum | Invitrogen | 16140-063 | |
Penicillin-streptomycin | Sigma | P4333-100ML | |
Chitinase from Streptomyces Griseus | Sigma | C6137-25UN | |
NA22 Escherichia coli | Caenorhabditis Genetics Center | ||
Peanut Lectin | Sigma | L0881-10MG | |
Sucrose | Sigma | 57903-1KG | |
D-(+)Glucose | Sigma | 67528-1KG | |
Ethylene glycol-bis (2-aminoethylether), N,N,N’,N’- tetraacidic acid (EGTA) | Sigma | E0396-25G | |
Hepes | Sigma | H3375-500G | |
Cholesterol | |||
NaCl | Sigma | 57653-1KG | |
KCl | Sigma | P9333-500G | |
CaCl2 | Sigma | C1016-500G | |
MgCl2 | Sigma | M8266-100G | |
MgSO4 | Sigma | M2643-500 g | |
K2HPO4 | Sigma | P2222-500G | |
KH2PO4 | Sigma | P9791-500G | |
NaOH | Sigma | S8045-500G | |
KOH | Sigma | P1767-500G | |
Ethanol | |||
Autoclaved distilled H2O | |||
Bleach | |||
EQUIPMENT | |||
101-1000 μl Blue Graduated Pipet Tips | USA Scentific | 1111-2821 | |
10 ml Sterilized Pipet Individually Wrapped | USA Scentific | 1071-0810 | |
Ergonomic Variable Volume (100-1000 μl) Pipettor with tip ejector | VWR International Inc. | 89079-974 | |
Portable Pipet Aid, Drummond | VWR International Inc. | 53498-103 | |
Transfer Plastic Pipet Sterile | VWR International Inc. | 14670-114 | |
15 ml Conical Tube | USA Scentific | 1475-1611 | |
50 ml Conical Tube | USA Scentific | 1500-1811 | |
Sterile 18 gauge Needles | Becton, Dickinson and Co. | 305196 | |
Sterile 10 ml Syringes | Becton, Dickinson and Co. | 305482 | |
Plastic Syringe Filters Corning 0,20 μm pore size | Corning | 431224 | |
Acrodic 25 mm Syringe filter w/5 μm versapor Membrane | VWR International Inc. | 28144-095 | |
60×15 mm Petri Dish Sterile | VWR International Inc. | 82050-548 | |
100×15 mm Petri Dish Sterile | VWR International Inc. | 82050-912 | |
12 mm Diameter Glass Coverslips | VWR International Inc. | 48300-560 | |
Clear Cell Culture Plates 24 Well Flat Bottom w/lid | Thomas scientific | 6902A09 | |
Dumont #5- Fine Forceps | Fine Science Tools | 11254-20 | |
Centrifuge 5702 | Eppendorf | 022629883 | |
Laminar Flow Hood | |||
Inverted Microscope with x10 objective | |||
Ambient air humidified Incubator |