Summary

En mikroplatta analys för att bedöma Kemiska Effekter på RBL-2H3 mastcelldegranulering: Effekter av Triclosan utan användning av ett organiskt lösningsmedel

Published: November 01, 2013
doi:

Summary

Mastcelldegranulering, frigivning av allergiska mediatorer, är viktig i allergi, astma, och parasit försvar. Här visar vi tekniker 1 för bedömning effekterna av droger och gifter om degranulering, metodik användes nyligen för att uppvisa den kraftfulla hämmande effekten av antibakteriellt medel triclosan 2.

Abstract

Mastceller spelar viktiga roller i allergisk sjukdom och immunförsvaret mot parasiter. När det är aktiverat (t.ex. av ett allergen), de Degranulate, en process som resulterar i exocytos av allergiska mediatorer. Modulering av mastcelldegranulering av droger och gifter kan ha positiva eller negativa effekter på människors hälsa. Mast cellfunktionen har dissekerats i detalj med användning av råtta basofila leukemiceller mast (RBL-2H3), en allmänt accepterad modell av humana mukosala mastceller 3-5. Mast cell granul komponent och den allergiska medlare β-hexosaminidas, som frisätts linjärt parallellt med histamin från mastceller 6, kan lätt och tillförlitligt mätas genom reaktion med ett fluorogent substrat, vilket ger mätbar fluorescensintensitet i en mikroplatta analys som är mottaglig för hög genomströmning studier 1. Ursprungligen publicerad av Naal et al. 1, har vi anpassat denna degranulation analys för screening of droger och gifter och tydligt visar dess användning här.

Triclosan är ett brett spektrum antibiotikum som finns i många konsumentprodukter och har visat sig vara ett terapeutiskt stöd i mänsklig allergisk hudsjukdom 7-11, även om mekanismen för denna effekt är okänd. Här visar vi en analys för effekten av triclosan på mastcelldegranulering. Vi visade nyligen att triclosan påverkar starkt mastcell funktion 2. I ett försök att undvika användningen av ett organiskt lösningsmedel, är triklosan upplöses direkt i vattenhaltig buffert med värme och omröring och resulterande koncentration bekräftas med användning av UV-Vis-spektrofotometri (med användning ε 280 = 4200 L / M / cm) 12. Detta protokoll har potential att kunna användas med en mängd olika kemikalier för att bestämma deras effekter på mastcelldegranulering, och mer allmänt, deras allergiska potential.

Introduction

Mastceller starkt granulerade immuneffektorceller som fungerar som viktiga mediatorer vid astma, allergier, parasit försvar och cancer 13-16. De bor i nästan varje vaskulariserad vävnad 15, där de säkert lagra allergiska och inflammatoriska mediatorer i cytoplasmiska granulat tills aktiverat för att Degranulate. Degranulering är exocytos av membranbundna granulat, vilket resulterar i frisättning av farmakologiskt aktiva mediatorer såsom histamin, tryptas, och leukotriener 15. Denna process resulterar i initiering av typ I överkänslighetsreaktioner som är kritiska för montering försvar mot parasiter samt initiera allergiska, astmatiska och cancerframkallande svar 15.

Mastceller och basofiler uttrycker FceRI receptorer, med hög affinitet receptorer för immunoglobulin E (IgE) 17. Exponering för ett allergen eller antigen orsakar aggregering av flera IgE-bundna FcsRI receptorer 17, och det är denna sektionO-kallas "tvärbindning" av IgE-bundna Fc-receptorer som initierar degranulering processen: en kaskad av tyrosinfosforylering händelser, aktivering av fosfolipas C, utflödet av kalcium från interna affärer, och inflöde av kalcium i cellen 18. Denna kalciuminflöde är nödvändig för degranulering, och vidare signalerar granul fusion med membranet innan orsaka granul exocytos 15. Experimentellt kan en kalciumjonofor användas till pendeltrafik kalcium direkt över cellmembranet 19, som i huvudsak kringgår alla signaltransduktion steg före kalciuminflöde steg 20, vilket möjliggör identifiering av en bana målet med ett gift som uppströms eller nedströms kalcium signalering 20.

Degranulering kan mätas snabbt och effektivt genom att övervaka frisättningen av β-hexosaminidas in cellsupernatant, som frisätts linjärt från granulerna vid sidan histamin 6, men jagär mycket lättare att upptäcka med hjälp av en enkel enzym-substrat reaktion och en mikroplattavläsare för analys av fluorescerande produkt. Denna mikroplatta analys såsom beskrivs i protokollet avsnittet, är baserad på en robust metod som ursprungligen utvecklades av Naal et al. 1, som kvantifierar klyvning av det fluorogena substratet 4-metylumbelliferyl-N-acetyl-β-D-glukosaminid med β- hexosaminidas. Vi har modifierat analys för att testa effekterna av droger och gifter, med triclosan lyfts fram här. Denna metod tillförlitligt kvantifierar degranulation, är ett billigt alternativ till, exempelvis flödescytometrisk-baserade detektionsmetoder 21, och har potential att ge sig fint till high-throughput screening av ett brett utbud av anti-allergi droger, liksom immunotoxiskt eller allergena kemikalier. Denna sista punkt är särskilt viktigt mot bakgrund av 2007 års National Research Council rapport "kemikalieprövning i 21: a århundradet: en vision och en StrataEGY "( http://www.nap.edu/openbook.php?record_id=11970 ), som förespråkar för utvecklingen av high-throughput toxikologitester som använder cellodling att minska kostsamma användningen av traditionella försöksdjur som möss. Den degranulering protokoll som utvecklats av Naal et al. Ett och modifieras av oss 2, utnyttjar RBL-2H3-cellinje, som är en väl-accepterad modell homolog med humana mukosala mastceller eller basofiler 3-5. (Metoder för odling av RBL-2H3 celler beskrivs i Hutchinson et al. 22). Denna analys skulle sannolikt anpassas till alla bifogade mast celltyp.

Triclosan (TCS) är ett brett spektrum antimikrobiella som har använts i mer än 30 år på sjukhus, hygienartiklar och konsumentvaror 23,24. Verkningsmekanismen för TCS antimikrobiella egenskaper är hämningen av fettsyror biosyntes, sannolikt genom att hämma enoyl-acylbärarprotein reduktas 25,26. Den finns över hela världen i ett brett spektrum av konsumentprodukter som dusch gel, handlotion, tandkräm, munvatten, och i hand tvål vid koncentrationer upp till 0,3% eller 10 mM 24. Utbredd användning av TCS har resulterat i detekterbara halter i människor 27-29 och i floder och vattendrag 30. En studie utförd av Allmyr et al. 27 visade att TCS och dess metaboliter finns i både plasma och mjölk från ammande mödrar. Viktigt är TCS lätt absorberas in i huden 31 till 37. Queckenberg et al. 37 hittade ~ 10% absorption av en ~ 70 mM TCS grädde i mänsklig hud inom 12 timmar, vilket betydande koncentration i huden, där mastceller bor.

TCS har visats kliniskt för att hantera mänsklig allergisk hudsjukdom 7-11, men den mekanism med vilken TCS lindrar allergiska hudsjukdomar har varit okänt 38. Använda fluorescerande detaile mikroplattan assayd i den här videon, visade vi nyligen att TCS, vid koncentrationer så låga som 2 iM, avsevärt dämpar mast cell funktion och degranulering, vilket ger en möjlig förklaring till dessa kliniska data 2. Förutom att ge en förklaring till dessa kliniska data, våra resultat i Palmer et al. 2 antyder att TCS riktar signalmolekyler nedströms av kalciuminflöde. På grund av vikten av kalcium signalering i många immunologiska och andra biologiska processer, kan TCS ha potentiellt negativa effekter på ett brett utbud av nödvändiga biologiska processer. I själva verket visade Udoji et al. 39 som TCS undertrycker mänskliga naturliga mördarceller lytisk aktivitet, en annan viktig medfödda immunförsvar.

Bortom dess potential som ett terapeutiskt stöd allergisk hudsjukdom (eller, omvänt, som immunotoxicant), kan TCS också vara hormonstörande 40-49. Således, ett tydligt förfarande för hur man förbereder denna kemikalie i lösning is av intresse för toxikologer. Eftersom TCS är en liten hydrofob molekyl, är organiska fordon används ofta för att göra den mer löslig i vatten. I de flesta toxicitetsstudier där TCS har testats, har beredningen involverad upplösning i vatten med hjälp av ett organiskt lösningsmedel, såsom etanol, aceton eller olja 2,50,51. Men ofta gånger dessa lösningsmedel är biologiskt aktiva själva, vilket komplicerar tolkningen av testet kemiska data 51. I själva verket, enligt Rufli et al. 52 och andra 53, rekommenderas att testa lösningar för akvatisk toxicitet experiment framställs med hjälp av fysikaliska metoder under kemiska metoder, på grund av risken för kemiska lösningsmedel för att skapa toxicitet artefakter. Vi har tidigare visat att TCS upplöst i 0,24% etanol / vatten (vol / vol) och sonikerades under 30 min dämpar RBL mastcelldegranulering 2. Etanol vid högre koncentrationer än 0,24% har visat sig dämpa mastcell nedbrytningnulation 54,55-exempel på potentiellt störande effekter av organiska lösningsmedel i toxicitetsstudier.

Inte bara är det viktigt att ta hänsyn till effekten av lösningsmedel på organismen eller celler som används för studien, men också att det är viktigt att övervaka effekterna av ett lösningsmedel på testkemikalien själv. Till exempel, Skaare et al. 51 tyckte att lösa TCS i polyetylenglykol (vanligt förekommande i tandkräm och munvatten) försvagades anti-bakteriella och anti-plack effekter i friska kvinnliga kvinnor medan upplösningen i olja orsakade en total förlust av funktion. Därför kan förmågan hos olika lösningsmedel modulera giftämne och läkemedel, inklusive TCS bör effekter behandlas i analysutformning. Användning av oljor eller tillsatser smak kan störa effekten av TV-kamerasystem i olika produkter 50,51.

I ett försök att eliminera behovet av att använda organiska lösningsmedel, förbättrade vi vid vår metod för att lösa TCS 2 genom att eliminera användningen av en organisk solventilera. I det nuvarande protokollet, upplösa vi TCS granulat direkt i vattenlösning buffert med värme (≤ 50 ° C), och sedan kontrollera koncentrationen av denna TCS lager med UV-Vis-spektrofotometri. Dessa förbättringar är möjliga eftersom TCS är löslig i vatten upp till 40 ^ M ( http://www.epa.gov/oppsrrd1/REDs/2340red.pdf ) och har visats att motstå nedbrytning vid uppvärmning till 50 ° C ( http:/ / oehha.ca.gov/prop65/public_meetings/052909coms/triclosan/ciba3.pdf ) 56,57. Vi har också den ytterligare fördelen med UV-VIS-spektrofotometri, som TCS även känt att starkt absorberar vid 280 nm 58 med en molär extinktionskoefficient av 4200 L / mol / cm 12.

Detta protokoll ger en enkel men effektivt sätt att lösa TCS granulat i en buffert utan hjälp av ett organiskt lösningsmedel, inklusive låg kostnad och snabb verifieringav koncentration, beskriver och en kraftfull fluorescerande microplate analys för övervakning av kemiska effekter på mastcelldegranulering.

Protocol

Observera att alla buffert recept ingår i en tabell i slutet av protokollet text. DAG 1: Ett. Beredning av celler Planera ut 96-väl systemet plattan setup, centrering prover på layouten för att undvika kanteffekter. Allokera tre replikat för varje TCS koncentration testad (± degranulation stimulerande av antigen eller jonofor), samt tre exemplar för spontan frisättning (ingen degranulation stimulerande), maximal frisättning (0,2% T…

Representative Results

Vid uppvärmning till 50 ° C under 90 min, producerar UV-Vis absorbans spektrum för TCS en stark, mjuk kurva mellan ~ 260 och 300 nm, med en topp vid 280 nm, såsom visas i figur 1. UV-Vis-spektrofotometri är därför ett viktigt verktyg som kan användas för att beräkna koncentrationen, eftersom publicerade molära absorptionskoefficienten vid 280 nm är 4,200 L / mol / cm 12. Vi har funnit att TCS inte faller ut ur lösningen under tidsramen för hela degranulering experimentet, efter 50 ° C uppvärmning …

Discussion

Under 2004 utvecklade Naal et al. 1 en mast cell biosensor för hög genomströmning testning av degranulering. Det är en robust analys som vi har anpassat för våra TCS studier och som beskrivs i den här videon. Före Naal et al., 1-analysen hade mastcelldegranulering har rutinmässigt bedömts via β-hexosaminidas 59-61, men dessa tidiga metoder utnyttjade fluorometrar i vilka ett prov lästes i taget. Viktigt Naal et al. upprättas direkt överensstämmelse mellan deras mer h…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

LMV och RHK stöds av UMaine Graduate School of Biomedical Science and Engineering (GSBSE), RHK stöddes också av den Maine Agricultural & Forest Experiment Station. Ytterligare finansiering lämnades av National Institute of General Medical Sciences (NIH P20-GM103423), Maine Agricultural & Forest Experiment Station (licensnummer ME08004-10, JAG), University of Maine ADVANCE Rising Tide Center (NSF Grant # 1.008.498) , och en forskning Starter Grant i farmakologi / toxikologi från PhRMA stiftelsen (JAG). Vi tackar Dr. David Holowka och Barbara Baird för antigenet och cellerna. Vi är tacksamma för att Hina Hashmi, Alejandro Velez, och Andrew Abovian för hjälp med utrustning och beställningar. Detta är Maine Agricultural & Forest Experiment Station publikation nummer 3311.

Materials

RBL-2H3 Cells

ATCC

CRL-2256

The cells we used were a gift, but they are also available from ATCC

Triclosan/Irgasan

Sigma

72779

CAS# 3380-34-5

Should be stored in a low humidity environment

Trypsin

Gibco

25300-054

CAS# 3380-34-5

EMEM

Lonza

12-611F

Fetal Bovine Serum

Atlanta Biologicals

S11150

Gentamycin Sulfate

Lonza Biological Sciences

17-518

Albumin, Bovine Serum

Calbiochem

12659

CAS# 9048-46-8

Surfact-Amps X-100 (Triton X-100; 10% solution)

Pierce

28314

CAS# 9002-93-1

HEPES

J.T Baker

4153-01

CAS# 75277-39-3

Magnesium Chloride

VWR

BDH0244-500G

CAS# 7791-18-6

D-(+)-Glucose

Biomedicals

152527

CAS# 50-99-7

Potassium Chloride Crystal

J.T Baker

3046-01

CAS# 7447-40-7

Calcium chloride dihyrdate

Acros Organics

207780010

CAS# 10035-04-8

Glycine

Sigma

G8898

CAS# 56-40-6

4-Methylumbelliferyl-N-acetyl-β-D-glucosaminide (4-MU)

EMD Biosciences

474502-250MG

CAS # 37067-30-4

Wrap in foil – is light-sensitive

Anti-DNP Mouse IgE

Sigma

D8406

Reagent has concentration of 1 mg/ml. Aliquot 25 µl of reagent into separate microcentrifuge tubes and Parafilm. Store aliquots at -20 °C that are not being used and store aliquot that is being used at 2-8 °C for no longer than 1 month.

DNP-BSA

Gift from Dr. David Holowka and Dr. Barbara Baird, Cornell University

Suggest: life technologies DNP-BSA catalog# A23018

Calcium Ionophore A23187

Sigma

C75-22-1mg

Ionophore was made from a powder by adding 400 µl of fresh 100% DMSO into the ionophore vial and is kept at -20 °C

Note: we have used the ionophore past its 3 month expiration date successfully

DMSO

Sigma

D2650

CAS# 67-68-5

Acetic Acid

VWR

BDH3094-2

CAS# 64-19-7

Anhydrous Sodium Carbonate

Sigma

222321

CAS# 497-19-8

Sodium Chloride

Sigma

71376

CAS# 7647-14-5

Hydrochloric Acid

VWR

BDH3026

CAS# 7647-01-0

Reference Buffer, pH 7

VWR

BDH5046

Reference Buffer, pH 10

VWR

BDH5072

Reference Buffer, pH 4

VWR

BDH5018

pH electrode storage solution

VWR

14002-828

Equipment:

Material Name

Company

Catalogue Number

Comments (optional)

DU 7500 Spectrophotometer

Beckmann

No longer sold

Synergy 2 plate reader

Uses Gen5 Microplate Data Collection and Analysis Software

BioTek

Module S

Hematocytometer

Hausser Scientific

3110

7 x 7 CER HOT/STIR 120 V

Combination hot plate/magnetic stir plate

VWR

97042-634

Centrifuge

Eppendorf

5430

Tissue culture water bath

VWR

Model# 89032-206

Tissue Culture biological safety cabinet

SafeGARD (TC hood)

The Baker Company

Model# SG403A-HE

Tissue culture incubator

ThermoScientific

Model# 3598

Pipetman

VWR

Range: P2-P1000

Balance

Mettler Toledo

Model# AG204

pH meter

Symphony/VWR

Model# SB70P

Pipet-Aid

Drummond Scientific

4-000-100

Combitip dispenser

Eppendorf

4981 000.019

Recipes:

Name

Recipe

Notes

Acetate Buffer, pH 4.4

  • Make 0.12 M acetic acid and titrate to pH 4.4 with 10 N NaOH.
  • This is 5.3 ml glacial acetic acid into 1 L of MilliQ water:

(1 L)*(0.12 mol/L)*(60 g/mol)*(ml/1.37 g) = 5.3 ml because density of glacial is 1.37 g/ml

Sterile Filter into autoclaved glass bottle

Substrate (4-MU)

  • Sigma M-2133, 250 mg, C18H21NO8, FW 379.4 CAS (37067-30-4)
  • Store in -20°C
  • Stock: 0.12 M in DMSO (46 mg in 1 ml DMSO), warm to 37 °C, vortex, sonicate 10 min. in water-bath sonicator with warm water, vortex again

For each experiment, make fresh solution of substrate in acetate buffer (100x dilution), for final concentration of 1.2 mM in acetate buffer

Glycine Carbonate Buffer, pH 10

  • 26.7 g glycine
  • 47.1 g anhydrous sodium carbonate
  • Add deionized water for 1 L, and adjust pH to 10

Sterile filter into autoclaved glass bottle

Tyrodes (2 L), pH 7.4

  • 135 mM NaCl: 15.78 g (or 270 ml of 1 M)
  • 5 mM KCl: 10 ml of 1 M stock
  • 1.8 mM CaCl2: 7.20 ml of 0.5 M stock
  • 1 mM MgCl2: 4.00 ml of 0.5 M stock
  • 5.6 mM glucose: 2.02 g (11.2 ml of 1 M)
  • 20 mM HEPES: 40 ml of 1 M stock
  • Using concentrated HCl pH from ~9.7-7.4

Sterile filter into autoclaved glass bottle

RBL Cell Media

  • Thaw fetal bovine serum (FBS, stored at -20 °C) for about 4 hours in 37 °C water bath
  • Follow standard sterile technique
  • Get out 1 L minimum essential medium (MEM) with L-glutamine (with Earle’s salts)
  • Pour off some MEM to have 800 ml MEM, add 200 mL warm FBS
  • Add 1 ml gentamicin sulfate antibiotic to 1 L of media with sterile pipette
  • Only use media bottles that have been autoclaved and marked for cell culture use only.

Sterile filter (0.2 mm) into autoclaved glass bottle

Plastic material used:

Material Name

Company

Catalogue Number

Type of Plastic

200 µl Disposable sterile pipet tips with graduations in 96 rack

VWR

53509-009

polypropylene

1,000 µl Sterile aerosol pipet tips with HighRecovery

VWR

89003-420

polyethylene

10 µl micro tip low binding sterile

VWR

14217-704

polypropylene

Disposable/conical Microcentrifuge tubes for high G-force

VWR

20170-038

polypropylene

Disposable/graduated/conical/sterile 50 ml centrifuge tubes with screw caps

VWR

21008-178

polypropylene

Disposable/graduated/conical/sterile 15 ml centrifuge tubes with screw caps

VWR

21008-103

polypropylene

CELLSTAR Tissue Culture Treated T-25 Flask w/ Filter Cap

Greiner Bio One

690175

polystyrene

CELLSTAR Tissue Culture Treated T-75 Flask w/ Filter Cap

Greiner Bio One

658175

polystyrene

CELLSTAR 10 ml Paper/Plastic Wrapped Serological Pipette

Greiner Bio One

607180

polystyrene

CELLSTAR 2 ml Paper/Plastic Wrapped Serological Pipette

Greiner Bio One

710180

polystyrene

CELLSTAR 5 ml Paper/Plastic Wrapped Serological Pipette

Greiner Bio One

606180

polystyrene

CELLSTAR 25 ml Paper /Plastic Wrapped Serological Pipette

Greiner Bio One

760180

polystyrene

1 cm cuvettes

N/A

N/A

polystyrene

CELLSTAR, 96W Microplate, Tissue-Culture Treated, Black, with Lid

96-well Plate

Greiner Bio One

655086

polystyrene

Combitips

Eppendorf

022266501

Polypropylene/

polyethylene

Referências

  1. Naal, R., Tabb, J., Holowka, D., Baird, B. In situ measurement of degranulation as a biosensor based on RBL-2H3 mast cells. Biosens. Bioelectron. 20, 791-796 (2004).
  2. Palmer, R. K., et al. Antibacterial agent triclosan suppresses RBL-2H3 mast cell function. Toxicol. Appl. Pharmacol. 258, 99-108 (2012).
  3. Fewtrell, C., Kessler, A., Metzger, H. Comparative aspects of secretion from tumor and normal mast cells. Adv. Inflam. Res. 1, 205-221 (1979).
  4. Metzger, H., et al. The receptor with high-affinity for immunoglobulin-E. Annu. Rev. Immunol. 4, 419-470 (1986).
  5. Seldin, D. C., et al. Homology of the rat basophilic leukemia-cell and the rat mucosal mast-cell. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 82, 3871-3875 (1985).
  6. Schwartz, L. B., Austen, K. F., Wasserman, S. I. Immunological release of beta-hexosaminidase and beta-glucuronidase from purified rat serosal mast-cells. J. Immunol. 123, 1445-1450 (1979).
  7. Kjaerheim, V., Barkvoll, P., Waaler, S. M., Rolla, G. Triclosan inhibits histamine-induced inflammation in human skin. J. Clin. Periodontol. 22, 423-426 (1995).
  8. Barkvoll, P., Rolla, G. Triclosan reduces the clinical symptoms of the allergic patch test reaction (APR) elicited with 1-percent nickel sulfate in sensitized patients. J. Clin. Periodontol. 22, 485-487 (1995).
  9. Tan, W. P., Suresh, S., Tey, H. L., Chiam, L. Y., Goon, A. T. A randomized double-blind controlled trial to compare a triclosan-containing emollient with vehicle for the treatment of atopic dermatitis. Clin. Exp. Dermatol. 35, e109-e112 (2010).
  10. Sporik, R., Kemp, A. S. Topical triclosan treatment of atopic dermatitis. J. Allergy Clin. Immunol. 99, 861 (1997).
  11. Wohlrab, J., Jost, G., Abeck, D. Antiseptic efficacy of a low-dosed topical triclosan/chlorhexidine combination therapy in atopic dermatitis. Skin Pharmacol. Physiol. 20, 71-76 (2007).
  12. Wong-Wah-Chung, P., Rafqah, S., Voyard, G., Sarakha, M. Photochemical behaviour of triclosan in aqueous solutions: Kinetic and analytical studies. J. Photochem. Photobiol. A Chem. 191, 201-208 (2007).
  13. Blank, U., Essig, M., Scandiuzzi, L., Benhamou, M., Kanamaru, Y. Mast cells and inflammatory kidney disease. Immunol. Rev. 217, 79-95 (2007).
  14. Gri, G., et al. Mast cell: an emerging partner in immune interaction. Frontiers in Immunology. 3, (2012).
  15. Kuby, J. . Immunology. , (1997).
  16. Farrell, D. J., et al. Intrahepatic mast-cells in chronic liver-diseases. Hepatology. 22, 1175-1181 (1995).
  17. Cookson, W. The alliance of genes and environment in asthma and allergy. Nature. 402, 5-11 (1999).
  18. Ferris, C. D., Huganir, R. L., Supattapone, S., Snyder, S. H. Purified inositol 1,4,5-triphosphate receptor mediates calcium flux in reconstituted lipid vesicles. Nature. 342, 87-89 (1989).
  19. Foreman, J. C., Mongar, J. L., Gomperts, B. D. Calcium ionospheres and movement of calcium ions following physiological stimulus to a secretory process. Nature. 245, 249-251 (1973).
  20. Siraganian, R. P., Kulczycki, A., Mendoza, G., Metzger, H. Ionophore A-23187 induced histamine-release from mast-cells and rat basiphil leukemia (RBL-1) cells. J. Immunol. 115, 1599-1602 (1975).
  21. Demo, S. D., et al. Quantitative measurement of mast cell degranulation using a novel flow cytometric annexin-V binding assay. Cytometry. 36, 340-348 (1999).
  22. Hutchinson, L. M., et al. Inorganic arsenite inhibits IgE receptor-mediated degranulation of mast cells. J. Appl. Toxicol. 31, 231-241 (2011).
  23. Dann, A. B., Hontela, A. Triclosan: environmental exposure, toxicity and mechanisms of action. J. Appl. Toxicol. 31, 285-311 (2011).
  24. Jones, R. D., Jampani, H. B., Newman, J. L., Lee, A. S. Triclosan: A review of effectiveness and safety in health care settings. Am. J. Infect. Control. 28, 184-196 (2000).
  25. Levy, C. W., et al. Molecular basis of triclosan activity. Nature. 398, 383-384 (1999).
  26. McMurry, L. M., Oethinger, M., Levy, S. B. Triclosan targets lipid synthesis. Nature. 394, 531-532 (1998).
  27. Allmyr, M., Adolfsson-Erici, M., McLachlan, M. S., Sandborgh-Englund, G. Triclosan in plasma and milk from Swedish nursing mothers and their exposure via personal care products. Sci. Total Environ. 372, 87-93 (2006).
  28. Allmyr, M., et al. The influence of age and gender on triclosan concentrations in Australian human blood serum. Sci. Total Environ. 393, 162-167 (2008).
  29. Geens, T., Neels, H., Covaci, A. Distribution of bisphenol-A, triclosan and n-nonylphenol in human adipose tissue, liver and brain. Chemosphere. 87, 796-802 (2012).
  30. Kolpin, D. W., et al. Pharmaceuticals, hormones, and other organic wastewater contaminants in US streams, 1999-2000: A national reconnaissance. Environ. Sci. Technol. 36, 1202-1211 (2002).
  31. Black, J. G., Howes, D. Percutaneous absorption of triclosan from toilet preparations. J. Soc. Cosmet. Chem. 26, 205-215 (1975).
  32. Black, J. G., Howes, D., Rutherford, T. Percutaneous absorption and metabolism of Irgasan DP300. Toxicology. 3, 33-47 (1975).
  33. Kanetoshi, A., et al. Acute toxicity, percutaneous-absorption and effects on hepatic mixed-function oxidase activities of 2,4,4′-trichloro-2′-hydroxydiphenyl ether (Irgasan(R) DP300) and its chlorinated derivatives. Arch. Environ. Contam. Toxicol. 23, 91-98 (1992).
  34. Sandborgh-Englund, G., Adolfsson-Eric, M., Odham, G., Ekstrand, J. Pharmacokinetics of Triclosan in man. J. Dental Res. 81, 0937 (2002).
  35. Sandborgh-Englund, G., Adolfsson-Erici, M., Odham, G., Ekstrand, J. Pharmacokinetics of triclosan following oral ingestion in humans. J. Toxicol. Environ. Health A. 69, 1861-1873 (2006).
  36. Lin, Y. J. Buccal absorption of triclosan following topical mouthrinse application. Am. J. Dent. 13, 215-217 (2000).
  37. Queckenberg, C., et al. Safety of Triclosan after Dermal Administration. Antimicrob. Agents Chemother. 54, 570-572 (2010).
  38. Breneman, D. L., Hanifin, J. M., Berge, C. A., Keswick, B. H., Neumann, P. B. The effect of antibacterial soap with 1.5% triclocarban on Staphylococcus aureus in patients with atopic dermatitis. Cutis. 66, 296-300 (2000).
  39. Udoji, F., Martin, T., Etherton, R., Whalen, M. M. Immunosuppressive effects of triclosan, nonylphenol, and DDT on human natural killer cells in vitro. J. Immunotoxicol. 7, 205-212 (2010).
  40. Ahn, K. C., et al. In vitro biologic activities of the antimicrobials triclocarban, its analogs, and triclosan in bioassay screens: Receptor-based bioassay screens. Environ. Health Perspect. 116, 1203-1210 (2008).
  41. Foran, C. M., Bennett, E. R., Benson, W. H. Developmental evaluation of a potential nonsteroidal estrogen: triclosan. Mar. Environ. Res. 50, 153-156 (2000).
  42. Gee, R. H., Charles, A., Taylor, N., Darbre, P. D. Oestrogenic and androgenic activity of triclosan in breast cancer cells. J. Appl. Toxicol. 28, 78-91 (2008).
  43. Helbing, C. C., van Aggelen, G., Veldhoen, N. Triclosan Affects Thyroid Hormone-Dependent Metamorphosis in Anurans. Toxicol. Sci. 119, 417-418 (2011).
  44. Ishibashi, H., et al. Effects of triclosan on the early life stages and reproduction of medaka Oryzias latipes and induction of hepatic vitellogenin. Aquat. Toxicol. 67, 167-179 (2004).
  45. Kumar, V., Chakraborty, A., Kural, M. R., Roy, P. Alteration of testicular steroidogenesis and histopathology of reproductive system in male rats treated with triclosan. Reprod. Toxicol. 27, 177-185 (2009).
  46. Matsumura, N., et al. Effects of nonylphenol and triclosan on production of plasma vitellogenin and testosterone in male South African clawed frogs (Xenopus laevis. Biol. Pharm. Bull. 28, 1748-1751 (2005).
  47. Veldhoen, N., et al. The bactericidal agent triclosan modulates thyroid hormone-associated gene expression and disrupts postembryonic anuran development. Aquat. Toxicol. 80, 217-227 (2006).
  48. Raut, S. A., Angus, R. A. Triclosan has endocrine-disrupting effects in male western mosquitofish, Gamusia affins. Environ. Toxicol. Chem. 29, 1287-1291 (2010).
  49. Park, H. G., Yeo, M. K. The toxicity of triclosan, bisphenol A, bisphenol A diglycidyl ether to the regeneration of cnidarian, Hydra magnipapillata. Mol. Cell. Toxicol. 8, 209-216 (2012).
  50. Vandhanaa, S., Deepa, P. R., Aparna, G., Jayanthi, U., Krishnakumar, S. Evaluation of suitable solvents for testing the anti-proliferative activity of triclosan – a hydrophobic drug in cell culture. Indian J. Biochem. Biophys. 47, 166-171 (2010).
  51. Skaare, A. B., Kjaerheim, V., Barkvoll, P., Rolla, G. Does the nature of the solvent affect the anti-inflammatory capacity of triclosan? An experimental study. J. Clin. Periodontol. 24, 124-128 (1997).
  52. Rufli, H. Introduction of moribund category to OECD fish acute test and its effect on suffering and LC50 values. Environ. Toxicol. Chem. 31, 1107-1112 (2012).
  53. Hutchinson, T. H., Shillabeer, N., Winter, M. J., Pickford, D. B. Acute and chronic effects of carrier solvents in aquatic organisms: A critical review. Aquat. Toxicol. 76, 69-92 (2006).
  54. Toivari, M., Maki, T., Suutarla, S., Eklund, K. K. Ethanol inhibits IgE-induced degranulation and cytokine production in cultured mouse and human mast cells. Life Sci. 67 (00), 2795-2806 (2000).
  55. Kennedy, R. H., Pelletier, J. H., Tupper, E. J., Hutchinson, L. M., Gosse, J. A. Estrogen mimetic 4-tert-octylphenol enhances IgE-mediated degranulation of RBL-2H3 mast cells. J. Toxicol. Environ. Health A. 75, 1451-1455 (2012).
  56. Fort, D. J., et al. Triclosan and Thyroid-Mediated Metamorphosis in Anurans: Differentiating Growth Effects from Thyroid-Driven Metamorphosis in Xenopus laevis. Toxicol. Sci. 121, 292-302 (2011).
  57. Fiori, J., Pinto, J. C., et al. Macromolecular Symposia. in Brazilian Polymer Congress. 299-300, 26-33 (2011).
  58. Mezcua, M., et al. Evidence of 2,7/2,8-dibenzodichloro-p-dioxin as a photodegradation product of triclosan in water and wastewater samples. Anal. Chim. Acta. 524, 241-247 (2004).
  59. Soto, E. O., Pecht, I. A monoclonal-antibody that inhibits secretion from rat basophilic leukemia-cells and binds to a novel membrane component. Journal of Immunology. 141, 4324-4332 (1988).
  60. Pierini, L., Harris, N. T., Holowka, D., Baird, B. Evidence supporting a role for microfilaments in regulating the coupling between poorly dissociable IgE-Fc epsilon RI aggregates and downstream signaling pathways. Bioquímica. 36, 7447-7456 (1997).
  61. Aketani, S., Teshima, R., Umezawa, Y., Sawada, J. Correlation between cytosolic calcium concentration and degranulation in RBL-2H3 cells in the presence of various concentrations of antigen-specific IgEs. Immunol. Lett. 75, 185-189 (2001).
  62. Koo, N., Kim, K. M. Distinct effects on M-2-type pyruvate kinase are involved in the dimethylsulfoxide-induced modulation of cellular proliferation and degranulation of mast cells. Arch. Pharmacal Res. 32, 1637-1642 (2009).
  63. Senyshyn, J., Baumgartner, R. A., Beaven, M. A. Quercetin sensitizes RBL-2H3 cells to polybasic mast cell secretagogues through increased expression of Gi GTP-binding proteins linked to a phospholipase C signaling pathway. J. Immunol. 160, 5136-5144 (1998).
  64. Yang, C. Z., Yaniger, S. I., Jordan, V. C., Klein, D. J., Bittner, G. D. Most Plastic Products Release Estrogenic Chemicals: A Potential Health Problem that Can Be Solved. Environ. Health Perspect. 119, 989-996 (2011).
check_url/pt/50671?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Weatherly, L. M., Kennedy, R. H., Shim, J., Gosse, J. A. A Microplate Assay to Assess Chemical Effects on RBL-2H3 Mast Cell Degranulation: Effects of Triclosan without Use of an Organic Solvent. J. Vis. Exp. (81), e50671, doi:10.3791/50671 (2013).

View Video