Summary

Fjern Magnetic Aktivering av micrometric prober for<em> In situ</em> 3D Kartlegging av biofilm fysiske egenskaper

Published: May 02, 2014
doi:

Summary

Dette dokumentet viser en original metode basert på det fjernaktivering av magnetiske partikler sådd i en bakterie biofilm og utvikling av dedikerte magnetiske pinsett for å måle in situ de lokale mekaniske egenskapene til det komplekse levende materiale bygget av mikroorganismer på grenseflater.

Abstract

Bakteriell adhesjon og vekst av grenseflater føre til dannelse av tredimensjonale heterogene strukturer såkalte biofilm. Cellene bor i disse strukturene er holdt sammen av fysiske interaksjoner mediert av et nettverk av ekstracellulære polymere stoffer. Bakterielle biofilmer påvirke mange menneskelige aktiviteter og forståelsen av deres egenskaper er avgjørende for en bedre kontroll over sin utvikling – vedlikehold eller utrydding – avhengig av deres negative eller gunstig utfall. Dette dokumentet beskriver en ny metode tar sikte på å måle in situ de lokale fysiske egenskapene til biofilm som hadde vært til nå undersøkt bare fra et makroskopisk og homogent materiale perspektiv. Eksperimentet som er beskrevet her involverer innføring av magnetiske partikler i en voksende biofilm til frø lokale sonder som kan fjern aktuerte uten å forstyrre de strukturelle egenskaper av biofilm. Dedikerte magnetiske pinsett var utvikloped å utøve en bestemt kraft på hver partikkel innebygd i biofilmen. Oppsettet er montert på det stadium av et mikroskop for å muliggjøre opptak av time-lapse bilder av partikkel-trekking periode. De partikkel-baner blir så trukket ut fra trekke-sekvensen og de lokale viskoelastiske parametre blir utledet fra hver partikkel fortrengningskurve, for derved å gi den 3D-romlige fordelingen av parametrene. Å få innsikt i biofilm mekanisk profilen er viktig fra en ingeniørs synspunkt for biofilm styring, men også fra et grunnleggende perspektiv for å avklare forholdet mellom de arkitektoniske egenskaper og den spesifikke biologi av disse strukturene.

Introduction

Bakterielle biofilmer er samfunn av bakterier assosiert med biologiske eller kunstige overflater 1-3. De danner med en adhesjons-vekstmekanisme kombinert med produksjon av polysakkarid-rik ekstracellulær matriks som beskytter og stabiliserer byggverk 4,5. Disse biofilm er ikke bare passive sammensetninger av celler stakk til overflater, men organisert og dynamiske komplekse biologiske systemer. Når bakterier bytte fra planktoniske til biofilm livsstil, endringer i genuttrykk og cellefysiologi observert samt økt motstand mot antimikrobielle stoffer og vertens immunforsvar blir på opprinnelsen til mange vedvarende og kroniske infeksjoner seks. Men den kontrollert utvikling av disse levende strukturer tilbyr også muligheter for industri-og miljøapplikasjoner, for eksempel bioremediering av farlig avfall steder, bio-filtrering av industrielle vann eller dannelse av bio-barrierer for å beskytte jord og grunnvann fra contaminasjon.

Mens molekylære funksjoner som er spesifikke for biofilm livsstil blir stadig beskrevet, mekanismer som driver utvikling av lokalsamfunn og utholdenhet fortsatt uklare. Ved hjelp av den siste utviklingen på mikroskala målinger ved hjelp av scanning elektrokjemisk eller fluorescens mikroskopi, har disse levende organisasjoner vist seg å utvise betydelig strukturelle, kjemisk og biologisk heterogenitet 7. Likevel, inntil nå, biofilm mekanikere har i hovedsak vært undersøkt makroskopisk. For eksempel, observasjon av biofilm streamere deformasjon på grunn av variasjoner i fluidstrømningshastigheter 8,9, uniaksial kompresjon av biofilmstykker løftes fra agar medium eller dyrket på dekslet skyves 10,11, skjær av biofilm oppsamlet fra omgivelsene og deretter overført til en parallell plate reometer 12,13, atom kraft spektroskopi ved hjelp av en glassperle og belagt med en bakteriell biofilm festet til en AFM cantilever 14 eller en dedikert microcantilever metode for måling av strekkfasthet av frittliggende biofilm fragmenter 15,16 har blitt gjennomført i løpet av de ti siste årene, noe som gir nyttig informasjon om viskoelastisk natur av materialet 17. Imidlertid virker det sannsynlig at informasjon om in situ biofilm mekaniske egenskaper går tapt når materialet er fjernet fra sitt opprinnelige miljø, som ofte var tilfellet i disse tilnærmingene. Videre behandling av biofilmen som et homogent materiale som bommer på informasjon om den mulige heterogeniteten av de fysikalske egenskaper i samfunnet. Derfor kan de eksakte virkningene av struktur mekanikken i biofilmdannelse og biologiske egenskaper som genuttrykk mønster eller kjemiske gradienter neppe bli gjenkjent. For å gå videre mot en mikro beskrivelse av biofilm fysiske egenskaper, er pålagt nye dedikerte verktøy.

Denne artikkelen detaljer en original tilnærming unnfanget for å oppnåmåling av lokale mekaniske parametre i situ, uten å forstyrre den biofilm og muliggjøre uttak av den romlige fordelingen av mikromaterialegenskapene og deretter den mekaniske heterogenitet. Prinsippet om forsøket hviler på doping av en voksende biofilm med magnetiske mikropartikler etterfulgt av sin fjern lasting ved hjelp av magnetiske pinsett i den modne biofilm. Partikkel forskyvning under kontrollerte magnetisk kraft søknad fotografert under mikroskopet muliggjør lokale viskoelastisk parameter derivasjon, hver partikkel rapporterer sin egen lokale miljø. Fra disse dataene, kan 3D mekanisk profil av biofilm bli trukket, avslører romlige og miljømessige tilstand avhengigheter. Hele forsøket vil bli vist her på en E. coli biofilm laget av en genetisk konstruert stamme som bærer en derepressed F-lignende plasmid. Resultatene er beskrevet i en nyere artikkel 18 gir en unik visjon av det indre av intakte biofilm mekanikk.

Protocol

En. Bakterier Kultur og fjæring Forberedelse Pick et ferskt dyrket koloni fra en Lysogeny Broth (LB) agar plate, inokulere det i 5 ml flytende LB-medium inneholdende 100 μ g / ml ampicillin og 7,5 μ g / ml tetracyklin, og inkubere det i 5 til 6 timer ved 37 ° C på en risting plattform. Deretter tilsettes 100 μ l av bakteriekulturen i 5 ml minimal medium (M63B1) supplert med 0,4% glukose og de ​​samme antibiotiske konsentrasjoner. Inkuber denne ferske utvannet kul…

Representative Results

En typisk analyse vil gi den romlige fordelingen av de viskoelastiske parametre på micron skala på en levende biofilm uten å forstyrre den opprinnelige ordningen. Typiske resultater er vist i figur 7, hvor verdiene av J 0 – det elastiske compliance – er gitt som en funksjon av z-aksen langs dybden og på y-aksen langs en ​​lateral dimensjon av biofilm. Hvert punkt tilsvarer en perle som krype kurve analyse har gitt en J 0 verdi. Dataene viste at lokal samsvar varieres langs …

Discussion

Denne magnetiske partikler seeding og trekke eksperiment aktivert i situ 3D kartlegging av de viskoelastiske parametre for en voksende biofilm i sin opprinnelige tilstand. Denne fremgangsmåten viste den mekaniske heterogenitet av E. coli biofilm vokst her og ga ledetråder til å påpeke de biofilm komponenter som støtter de biofilm fysiske egenskaper, sterkt tyder på en grunnleggende implikasjon av den ekstracellulære matrise og mer presist dens grad av kryssbinding.

E…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet var delvis støttet med tilskudd fra Agence Nationale pour la Recherche, PIRIbio program Dynabiofilm og fra CNRS Tverrfaglig Risk programmet. Vi takker Philippe Thomen for hans kritisk lesing av manuskriptet og Christophe Beloin for å gi E. coli-stamme som brukes i dette arbeidet.

Materials

Table 1: Reagents and cells
Magnetic particles Life technologies 14307D Micrometric magnetic particle, 2.8 µm diameter
Ampicillin (Antibiotic) Sigma-Aldrich A9518
Tetracycline (Antibiotic) Sigma-Aldrich 87128
Bacterial strain MG1655gfpF UGB, Institut Pasteur, France produces F pili at its surface, resistant to Ampicilllin and tetracycline
Table 2:  Capillaries and tubing
Filters for pediatric perfusion Prodimed-Plastimed 6932002
Hollow Square Capillaries Composite Metal Scientific 8280-100 Manufactured in Borosilicate glass. Square 0.8mm x0.8mm
Tubing silicone peroxyde VWR international 228-0512 Diameter 1mm
Tubing silicone peroxyde VWR international 228-0700 Diameter 3mm
Table 3: Biofilm growth
Lysogeny Broth (LB) solution Amresco-VWR J106-10PK standard medium used to grow bacteria
M63B1 solution Home-made Standard minimum  medium used to grow bacteria
Glucose Sigma-Aldrich G8270 Used to make M63B1 medium with 0.4% glucose
Table 4: Electronics
Camera EMCCD   Hamamatsu C9100-02
Heater controller World precision instruments 300354
Function generator Agilent technologies 33210A
Power amplifier Home-made It gives a current signal with amplitudes up to 4 A.
Syringe pumps Kd Scientific KDS-220
Shutter Vincent Associates Uniblitz T132
Magnetic tweezers Home-made Two electromagnetic poles, each made of a copper coil with 2,120 turns of 0.56 mm in diameter copper wire and soft magnetic alloy cores (Supra50-Arcelor Mittal, France) square shaped according to the blueprint shown in Fig. 10. The two cores are mounted north pole facing south pole, in order to generate a magnetic force in one direction along the length of the capillary. See coil wiring details in Figure 11.
Table 5: Optics
Inverted microscope  Nikon TE-300
S Fluor x40 Objective (NA 0.9, WD0.3) Nikon This a long working distance ojective enabling observation of the biofilm in the depth
Epifluorescence filters: 1) for green fluorescence: Exc 480/20 nm; DM 495; Em 510/20  2) for Red fluorescence: Exc 540/25 nm; DM 565; Em 605/55 Chroma 1)#49020 2)#31002 Particle displacement upon force application is recorded using the red fluoresecnce filter block.
Table 6: Image analysis
ImageJ NIH – particle tracker plugin

Referências

  1. Hall-Stoodley, L., Costerton, J. W., Stoodley, P. Bacterial biofilms: from the natural environment to infectious diseases. Nat Rev Microbiol. 2, 95-108 (2004).
  2. Donlan, R. M. Biofilms: microbial life on surfaces. Emerg Infect Dis. 8, 881-890 (2002).
  3. Costerton, J. W., Stewart, P. S. Battling biofilms. Scientific American. 285, 74-81 (2001).
  4. Branda, S. S., Vik, S., Friedman, L., Kolter, R. Biofilms: the matrix revisited. Trends Microbiol. 13, 20-26 (2005).
  5. Flemming, H. C., Wingender, J. The biofilm matrix. Nat Rev Microbiol. 8, 623-633 (2010).
  6. Costerton, J. W., Stewart, P. S., Greenberg, E. P. Bacterial biofilms: a common cause of persistent infections. Science. 284, 1318-1322 (1999).
  7. Stewart, P. S., Franklin, M. J. Physiological heterogeneity in biofilms. Nat Rev Microbiol. 6, 199-210 (2008).
  8. Stoodley, P., Lewandowski, Z., Boyle, J. D., Lappin-Scott, H. M. Structural deformation of bacterial biofilms caused by short-term fluctuations in fluid shear: an in situ investigation of biofilm rheology. Biotechnology and bioengineering. 65, 83-92 (1999).
  9. Klapper, I., Rupp, C. J., Cargo, R., Purvedorj, B., Stoodley, P. Viscoelastic fluid description of bacterial biofilm material properties. Biotechnol Bioeng. 80, 289-296 (2002).
  10. Korstgens, V., Flemming, H. C., Wingender, J., Borchard, W. Uniaxial compression measurement device for investigation of the mechanical stability of biofilms. Journal of microbiological. 46, 9-17 (2001).
  11. Cense, A. W., et al. Mechanical properties and failure of Streptococcus mutans biofilms, studied using a microindentation device. Journal of microbiological methods. 67, 463-472 (2006).
  12. Shaw, T., Winston, M., Rupp, C. J., Klapper, I., Stoodley, P. Commonality of elastic relaxation times in biofilms. Physical Review Letters. 93, (2004).
  13. Towler, B. W., Rupp, C. J., Cunningham, A. B., Stoodley, P. Viscoelastic properties of a mixed culture biofilm from rheometer creep analysis. Biofouling. 19, 279-285 (2003).
  14. Lau, P. C., Dutcher, J. R., Beveridge, T. J., Lam, J. S. Absolute quantitation of bacterial biofilm adhesion and viscoelasticity by microbead force spectroscopy. Biophysical journal. 96, 2935-2948 (2009).
  15. Poppele, E. H., Hozalski, R. M. Micro-cantilever method for measuring the tensile strength of biofilms and microbial flocs. Journal of microbiological methods. 55, 607-615 (2003).
  16. Aggarwal, S., Poppele, E. H., Hozalski, R. M. Development and testing of a novel microcantilever technique for measuring the cohesive strength of intact biofilms. Biotechnology and bioengineering. 105, 924-934 (2010).
  17. Guélon, T., Mathias, J. -. D., Stoodley, P. Biofilm Highlights. Series on Biofilms (eds Hans-Curt Flemming, Jost Wingender, & Ulrich Szewzyk). 5, (2011).
  18. Galy, O., et al. Mapping of Bacterial Biofilm Local Mechanics by Magnetic Microparticle Actuation. Biophysical journal. 103, 1-9 (2012).
  19. Schnurr, B., Gittes, F., MacKintosh, F. C., Schmidt, C. F. Determining Microscopic Viscoelasticity in Flexible and Semiflexible Polymer Networks from Thermal Fluctuations. Macromolecules. 30, 7781-7792 (1997).
  20. Aggarwal, S., Hozalski, R. M. Effect of Strain Rate on the Mechanical Properties of Staphylococcus epidermidis Biofilms. Langmuir. 28, 2812-2816 (2012).
  21. Towler, B. W., Cunningham, A., Stoodley, P., McKittrick, L. A model of fluid-biofilm interaction using a Burger material law. Biotechnol Bioeng. 96, 259-271 (2007).
  22. Jones, W. L., Sutton, M. P., McKittrick, L., Stewart, P. S. Chemical and antimicrobial treatments change the viscoelastic properties of bacterial biofilms. Biofouling. 27, 207-215 (2011).
  23. Apgar, J., et al. Multiple-particle tracking measurements of heterogeneities in solutions of actin filaments and actin bundles. Biophysical journal. 79, 1095-1106 (2000).
check_url/pt/50857?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Galy, O., Zrelli, K., Latour-Lambert, P., Kirwan, L., Henry, N. Remote Magnetic Actuation of Micrometric Probes for in situ 3D Mapping of Bacterial Biofilm Physical Properties. J. Vis. Exp. (87), e50857, doi:10.3791/50857 (2014).

View Video