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Os celulossomos são complexos multienzimáticos discretos usados por um subconjunto de bactérias anaeróbicas e fungos para digerir substratos lignocelulósicos. A montagem das enzimas na proteína de andaime não catalítica é dirigida por interações entre uma família de pares receptor-ligante relacionados compreendendo módulos de coesina e dockerina em interação. A ligação extremamente forte entre os módulos coesina e dockerina resulta em constantes de dissociação na faixa de picomolar a nanomolar baixo, o que pode dificultar medições precisas fora da taxa com métodos convencionais em massa. A espectroscopia de força de molécula única (SMFS) com o microscópio de força atômica mede a resposta de biomoléculas individuais à força e, em contraste com outros métodos de manipulação de molécula única (ou seja, pinças ópticas), é ideal para estudar interações receptor-ligante de alta afinidade devido à sua capacidade de sondar o regime de alta força (>120 pN). Aqui apresentamos nosso protocolo completo para estudar montagens de proteínas celulossômicas no nível de molécula única. Usando uma topologia de proteína derivada do celulossomo nativo, trabalhamos com proteínas de fusão enzimática-dockerina e módulo de ligação a carboidratos-coesina (CBM-coesina), cada uma com um grupo tiol livre acessível em um resíduo de cisteína projetado. Apresentamos nosso protocolo de imobilização de superfície específico do local, juntamente com nosso procedimento de medição e análise de dados para obter parâmetros de ligação detalhados para o complexo de alta afinidade. Demonstramos como quantificar as forças de desdobramento de subdomínio único, forças de ruptura complexas, taxas de desligamento cinéticas e larguras potenciais do poço de ligação. A aplicação bem-sucedida desses métodos na caracterização da interação coesina-dourina responsável pela montagem de complexos celulolíticos multidomínio é descrita mais adiante.