Summary

Long Term cronica<em> Pseudomonas aeruginosa</em> Infezione delle vie aeree nei topi

Published: March 17, 2014
doi:

Summary

Descriviamo il metodo di agar-perle di stabilire persistente a lungo termine infezione delle vie respiratorie Pseudomonas aeruginosa cronica nel modello di topo.

Abstract

Un modello murino di infezione cronica delle vie aeree è un asset fondamentale nella fibrosi cistica (CF) di ricerca, anche se ci sono una serie di preoccupazioni per quanto riguarda il modello stesso. Prime fasi di infiammazione e infezione sono stati ampiamente studiati utilizzando il modello di agar-perle del mouse Pseudomonas aeruginosa, mentre solo pochi studi si sono concentrati sulla infezione cronica a lungo termine in vivo. La sfida principale per l'infezione cronica a lungo termine rimane la bassa carica batterica da P. aeruginosa e la bassa percentuale di infetti settimane topi dopo sfida, indicando che le cellule batteriche vengono progressivamente cancellati dall'host.

Questo articolo presenta un metodo per ottenere efficiente infezione cronica a lungo termine in topi. Questo metodo si basa sul radicamento del P. aeruginosa ceppi clinici nei agar-perle in vitro, seguita da instillazione nei topi C57Bl/6NCrl. Infezione polmonare bilaterale è associato SEVrali misurabili read-out, tra cui la perdita di peso, la mortalità, infezione cronica, e la risposta infiammatoria. Il P. aeruginosa RP73 ceppo clinico è stato preferito rispetto al ceppo di laboratorio di riferimento PAO1 quanto ha determinato una mortalità relativamente bassa, le lesioni più gravi, e l'infezione cronica più elevata. P. colonizzazione aeruginosa può persistere nel polmone per oltre tre mesi. Murini patologia polmonare assomiglia a quella di pazienti CF con malattia avanzata cronica polmonare.

Questo modello murino imita più da vicino il corso della malattia umana e può essere utilizzato sia per studi sulla patogenesi e per la valutazione di nuove terapie.

Introduction

La fibrosi cistica (CF) è una malattia genetica causata da mutazioni nel transmembrana della fibrosi cistica regolatore della conduttanza (CFTR). Questo gene codifica per un canale del cloro espressi sulla membrana della maggior parte delle cellule epiteliali. Bronchiectasia, muco tamponamento e parenchimale distruzione causata principalmente da infezioni da Pseudomonas aeruginosa progressivamente portare a grave malattia polmonare e la mortalità nella maggior parte dei pazienti CF 1. Capire patogenesi CF e l'ulteriore sviluppo di nuove terapie si basano su modello animale con le caratteristiche di CF. Diversi topi, geneticamente modificati per il gene CFTR, sono stati generati, ma limitazioni nella capacità di queste specie di ricapitolare malattia polmonare CF-simili e diverse altre anomalie di organi visto in pazienti CF sono stati ampiamente documentati 2.

Sviluppo di infezione è una delle principali sfide CF modello animale. I cl letteraturasuggerisce presto che una infezione cronica che dura più di un mese può essere raggiunto solo se i topi vengono inoculati con i batteri incorporati in un agente di immobilizzazione come agar, agarosio, o alghe alginato 3-5. Questi agenti immobilizzanti forniscono le condizioni microaerobica / anaerobiche che permettono ai batteri di crescere in forma di microcolonie, analogamente alla crescita nel muco dei pazienti FC 6. Questo modello di infezione cronica porta alla persistenza dei batteri nei polmoni causando infiammazione delle vie respiratorie e danni 7. Tuttavia, a seconda del metodo utilizzato, il ceppo batterico e la dose inoculato nei polmoni, la percentuale di topi infettati croniche e la carica batterica recuperato nei polmoni a differenti tempi possono differire considerevolmente. In particolare, la sfida principale per l'infezione cronica a lungo termine rimane la bassa carica batterica da P. aeruginosa e la bassa percentuale di infetti settimane topi dopo sfida, indicando that cellule batteriche vengono progressivamente cancellati dall'host. Selezionando il P. aeruginosa RP73 ceppo clinico da una raccolta di CF isolati 8 abbiamo ottenuto con successo una bassa mortalità, le lesioni più gravi, e l'alta percentuale di infezione cronica con una carica batterica stabile fino a un mese nei topi C57Bl/6NCrl.

Dettagli Questo documento metodologia per l'incorporamento P. aeruginosa nelle perle di agar, abbiamo infettato topi mediante instillazione, misurata la carica batterica e citochine nei polmoni, raccolta BAL ed eseguito un esame istologico. Nel complesso, questo protocollo sarà di aiuto ai ricercatori per affrontare questioni di fondamentale importanza sulla patogenesi 8,9 e testare nuove terapie contro il P. aeruginosa infezione cronica 10,11.

Protocol

1. Batteri Preparazione per l'infezione cronica (tre e due giorni prima del mouse Challenge) Selezionare l'appropriato P. ceppo aeruginosa da testare. Seminare un'ansata di P. aeruginosa da -80 ° C delle colture per un piatto Trypticase Soy Agar (TSA) e incubare a 37 ° C durante la notte. Scegli una singola colonia e inoculare in 5 ml Trypticase Soy Broth (TSB) in una provetta snap-capped 15 ml ed incubare a 37 ° C per una notte in un incubatore ag…

Representative Results

Quando il protocollo è fatto correttamente, il P. aeruginosa agar-perle misureranno tra 100-200 micron e può essere osservato con un microscopio ottico invertito pipettando un piccolo volume della sospensione di agar-perline su un vetrino. Singole cellule batteriche sono visibili nelle perline agar, come mostrato in dettaglio in figura 1. La scelta di P. ceppo aeruginosa usati nella preparazione agar-perline è critica. Figura 2 …

Discussion

Le fasi critiche del P. aeruginosa-perline preparazione e la sfida del mouse sono riportati di seguito.

Il ceppo P. aeruginosa utilizzato per i topi sfida è critica. Mortalità, infezione cronica o di liquidazione potrebbero differire significativamente a seconda del ceppo batterico utilizzato per la sfida. Il P. aeruginosa RP73 ceppo clinico è stato preferito rispetto al ceppo di laboratorio di riferimento PAO1 quanto ha determinato una mortalità relat…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

La ricerca nel laboratorio di Bragonzi è stato finanziato dalla Fondazione Italiana Fibrosi Cistica (CFaCore) e UE-F7-2009-223.670. Parte di questo lavoro è stato svolto in ALEMBIC, un laboratorio di microscopia avanzata, e il mouse istopatologia è stato eseguito presso l'Unità di Anatomia Patologica (Istituto Scientifico San Raffaele).

Materials

Bacto Tryptic Soy Broth Becton Dickinson 211823
Difco Agar, granulated Becton Dickinson 214510
Heavy mineral oil Sigma-Aldrich 330760-1L
S-(+)-Ketamine hydrochloride Sigma-Aldrich K1884
Xylazine hydrochloride Sigma-Aldrich X1251
1 ml syringe 25 G 5/8'' 0.5 x 16 mm PIC 3071250300350
Catheter 22GA 0.9 x 25 mm Becton Dickinson 381223
Graefe Forceps – 0.5 mm Tips Curved Fine Science Tools 11152-10
Scissors, Iris, 11 cm, straight World Precision Instruments 501758
Suture clips Fine Science Tools 12040-01
Suture thread Fine Science Tools 18020-40
RPMI 1640 Lonza BE12-167F
Complete protease inhibitor cocktail Roche 11836145001
Fast-Read 102 Burker disposable chamber Biosigma 390497
Tuerk solution Fluka 93770
RBC lysis buffer Biolegend 420301
Fetal bovine serum Lonza DE14-801F
EZ cytofunnel Thermo Scientific A78710021
Superfrost ultra plus microscope slides Thermo Scientific J3800AMNZ
Diff-Quik Romanowsky staining set Medion Diagnostics 130832
Hexadecyltrimethylammonium chloride Sigma-Aldrich 52366-10G
96-well EIA/RIA plate Costar 3590
3,3’,5,5’- tetramethylbenzidine Sigma-Aldrich T8665-1L
Sulfuric acid Sigma-Aldrich 320501-1L
10% neutral buffered formalin Bio-optica 05-01005Q
Harris haematoxylin non Papanicolau Bio-optica 05-M06004
Eosin plus alcoholic solution Bio-optica 05-M11007
[header]
Equipment
Shaking incubator Amerex Instruments Steady Shake 757
Water bath Grant SUB14
Homogenizer Ystral
Precision balance KERN 440-47N
Cytocentrifuge Thermo Scientific A78300003
Low Cost Heating Pad 2biol LCHP
Homogenization probe Ystral 2366931(great)
2366925(small)
Inverted optical microscope Zeiss Axioplan2
Camera (microscope) Zeiss Axiocam MRc5
Rotary microtome Leica RM2255

Referências

  1. Gibson, R., Burns, J. L., Ramsey, B. W. Pathophysiology and management of pulmonary infections in cystic fibrosis. Am. J. Respir. Crit. Care. 168, 918-951 (2003).
  2. Bragonzi, A. Murine models of acute and chronic lung infection with cystic fibrosis pathogens. IJMM. 300, 584-593 (2010).
  3. Cash, H. A., McCullough, B., Johanson, W. G., Bass, J. A. A rat model of chronic respiratory infection with Pseudomonas aeruginosa. Am. Rev. Respir. Dis. 119, 453-459 (1979).
  4. Starke, J. R., Langston, C., Baker, C. J. A mouse model of chronic pulmonary infection with Pseudomonas aeruginosa and Pseudomonas cepacia. Pediatr. Res. 22, 698-702 (1987).
  5. Pedersen, S. S., Hansen, B. L., Hansen, G. N. Induction of experimental chronic Pseudomonas aeruginosa lung infection with P. aeruginosa entrapped in alginate microspheres. APMIS. 98, 203-211 (1990).
  6. Bragonzi, A., et al. Nonmucoid Pseudomonas aeruginosa expresses alginate in the lungs of patients with cystic fibrosis and in a mouse model. J. Infect. Dis. 192, 410-419 (2005).
  7. van Heeckeren, A. M. Murine models of chronic Pseudomonas aeruginosa lung infection. Lab. Anim. 36, 291-312 (2002).
  8. Bragonzi, A., et al. Pseudomonas aeruginosa microevolution during cystic fibrosis lung infection establishes clones with adapted virulence AJRCCM. 180, 138-145 (2009).
  9. Kukavica-Ibrulj, I., Facchini, M., Cigana, C., Levesque, R. C., Bragonzi, A., Filloux, S., Ramos, J. L. Assessing Pseudomonas aeruginosa virulence and the host response using murine models of acute and chronic lung infection. Methods in Pseudomonas aeruginosa: Humana Press. , (2014).
  10. Moalli, F., et al. The Therapeutic Potential of the Humoral Pattern Recognition Molecule PTX3 in Chronic Lung Infection Caused by Pseudomonas aeruginosa. J. Immunol. 186, 5425-5534 .
  11. Paroni, M. Response of CFTR-deficient mice to long-term Pseudomonas aeruginosa chronic infection and PTX3 therapeutic treatment. J. Infect. Dis. In press, .
  12. Maxeiner, J., Karwot, R., Hausding, M., Sauer, K. A., Scholtes, P., Finotto, S. A method to enable the investigation of murine bronchial immune cells, their cytokines and mediators. Nat. Protoc. 2, 105-112 (2007).
  13. Bragonzi, A., et al. Pseudomonas aeruginosa microevolution during cystic fibrosis lung infection establishes clones with adapted virulence.. AJRCCM. In press, (2009).
  14. Pirone, L., et al. Burkholderia cenocepacia strains isolated from cystic fibrosis patients are apparently more invasive and more virulent than rhizosphere strains. Environ. Microbiol. 10, 2773-2784 (2008).
  15. Bragonzi, A., et al. Modelling co-infection of the cystic fibrosis lung by Pseudomonas aeruginosa and Burkholderia cenocepacia reveals influences on biofilm formation and host response. PLoS One. 7, .
  16. Bianconi, I., et al. Positive signature-tagged mutagenesis in Pseudomonas aeruginosa: tracking patho-adaptive mutations promoting long-term airways chronic infection. PLoS Pathog.. 7, (2011).
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Citar este artigo
Facchini, M., De Fino, I., Riva, C., Bragonzi, A. Long Term Chronic Pseudomonas aeruginosa Airway Infection in Mice. J. Vis. Exp. (85), e51019, doi:10.3791/51019 (2014).

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