Summary

Генерация сдвига адгезии карте с помощью SynVivo Синтетический микрососудистых сетей

Published: May 25, 2014
doi:

Summary

Flow chambers used in adhesion experiments typically consist of linear flow paths and require multiple experiments at different flow rates to generate a shear adhesion map. SynVivo-SMN enables the generation of shear adhesion map using a single experiment utilizing microliter volumes resulting in significant savings in time and consumables.

Abstract

Адгезии анализы Сотовый / частиц имеют решающее значение для понимания биохимических взаимодействий, участвующих в патофизиологии заболеваний и имеют важные приложения в стремлении к разработке новых терапевтических средств. Анализы, использующие статические условия не в состоянии захватить зависимость адгезии на сдвиг, что ограничивает их корреляцию с окружающей среды в естественных условиях. Параллельные камеры потока пластина, которая количественно адгезию при физиологической потока жидкости нужно несколько экспериментов для генерации сдвига адгезии карте. Кроме того, они не представляют естественных условиях масштаба в и морфологию и требуют больших объемов (~ мл) реагентов для экспериментов. В этом исследовании, мы демонстрируем поколение сдвига адгезии карте из одного эксперимента с использованием сети микрососудов микрожидкостных устройств, SynVivo-SMN основе. Это устройство воссоздает комплекс в естественных условиях сосудистой включая геометрической шкале, морфологических элементов, особенности течения и клеточных взаимодействий вФормат в пробирке, тем самым обеспечивая биологически реалистичное окружение для фундаментальных и прикладных исследований в клеточной поведения, доставки лекарств и лекарственных препаратов. Анализ показал, изучая взаимодействие мкм биотина покрытием частиц 2 с авидином покрытием поверхности микрочипа. Весь ассортимент сдвига, наблюдаемого в микрососудов получается в одном анализа позволяет адгезии против карте сдвига для частиц в физиологических условиях.

Introduction

Текущие анализы для изучения в клетка-клетка и частица-клеточных взаимодействий обычно включают статический формат луночный планшет, в котором частицы или клетки инкубируют в белковых матриц или адгезивных клеток. В конце указанного времени инкубации, количество прилипших частиц или клеток количественно с помощью микроскопии 1. Даже если эти анализы обеспечивают значительно углубить понимание биохимических процессов, стоящих за этими взаимодействиями, основным ограничением является отсутствие физиологического течения жидкости (типичный микроциркуляции) и его влияние на адгезию частиц.

Чтобы преодолеть это ограничение, в пробирке проточных камерах были разработаны в последние годы. Общим элементом этих проточных камерах представляет собой прозрачную устройство перфузии при небольших числах Рейнольдса, чтобы соответствовать скорости сдвига стены, наблюдаемые в кровеносных сосудах в естественных условиях 2. Стенке сосуда моделируется либо покрытие из биомолекул или роста клеток на одной поверхности потока сHamber 3. Частицы 4-7 или 8-16 клетки затем течет в в желаемом диапазоне расходов количественно количество придерживаясь частиц при различных скоростях сдвига.

Тем не менее, использование параллельных проточных камерах пластина для изучения и проверки биохимические явления довольно дорого и отнимает много времени. Это происходит главным образом из-за того, что несколько экспериментов должны быть проведены для генерирования карту жидкостного сдвига от количества частиц / клеток прилипшего. Кроме того, камеры потока пластина требуют больших объемов реагентов из-за их большого размера (высота> 250 мкм и шириной> 1 мм). Наконец, эти устройства не точно моделировать геометрические особенности (например, бифуркации) и условий обтекания (например, сходящиеся против расходящиеся потоки), которые присутствуют в естественных условиях.

Последние достижения в области литографии на основе микротехнологий 17-19 ускорили поле лаборатории-на-чипеустройства 20-21. Эти устройства играют важную роль в развитии миниатюрные версии камеры параллельного потока пластина с размерами в режиме микрометра. Снижение размерности также дает значительные преимущества с точки зрения объемов реагентов, клетки или частицы, необходимой для экспериментов. Тем не менее, ключевым ограничение имеющихся в настоящее время устройств является использование линейных каналов для моделирования микрососудов, которые не имитируют сложную микроциркуляторного русла наблюдается в естественных условиях.

Недавно мы разработали новый методику воссоздания микрососудистых сетей на одноразовых пластиковых подложках в результате чего синтетического представления естественных условиях обстановки в. Эти устройства называются SynVivo-Синтетические Микрососудистые сети (SMN) разрабатываются с использованием PDMS основе процесса плавного литографии. Устройства SynVivo-SMN может быть использован для получения сдвига адгезии карту адгезии 22 клеток / частиц, исследование целевой доставки лекарств 23 и чAve была подтверждена против естественных условиях данных в 24-25. В этой статье мы приводим протокол, который позволяет поколение сдвига адгезии карте из одного эксперимента объемов как малые, как 1-5 мкл тем самым приводит к значительной экономии ресурсов и времени.

Protocol

1. Грунтовка микрожидкостных устройств SynVivo-СМН Каждый порт (вход / выход) устройства состоит из двух параллельных портов – один для протекания в поверхностных покрытий фрагментов (молекулы адгезии, матрицы роста и др.) и / или клеток для посева, а другой для проведения анализа (р…

Representative Results

На фиг.1А схематически и светлое изображение области SynVivo-SMN устройства. Фиг.1В показывает SynVivo-SMN устройство монтируется на предметное стекло. Фиг.1С показывает устройство с трубкой следующее грунтовка с водой в вакуумном эксикаторе. Фиг.2А<…

Discussion

Параллельных камер потока пластина, обеспечивая при этом значительные понимание клетка-клетка и клетка-частичных взаимодействий, имеют несколько ограничений, таких как высокое потребление реагентов и необходимости нескольких опытов, чтобы генерировать сдвига адгезии карту. Использ…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Технология SynVivo был разработан в рамках гранта # 2R44HL076034 от NHLBI.

Materials

SynVivo-SMN CFD Research SMN-001 Exclusive at CFDRC
CFD-ACE+ ESI Inc. N/A
Avidin Invitrogen 43-4401 Any avidin source will work for this assay
Biotinylated Particles Polysciences 24173-1 Any source of biotinylated particles will work for the assay
Tygon Tubing VWR 63018-044 Size is typical for use with SynVivo-SMN
NIKON Elements NIKON Instruments N/A Any other imaging software can be used

Referências

  1. Weitz-Schmidt, G., Chreng, S. Cell adhesion assays. Methods Mol Biol. 757, 15-30 (2012).
  2. Parsons, S. A., Jurzinsky, C., Cuvelier, S. L., Patel, K. D. Studying leukocyte recruitment under flow conditions. Methods Mol Biol. 946, 285-300 (2013).
  3. Luscinskas, F. W., Gimbrone, M. A. Jr Endothelial-dependent mechanisms in chronic inflammatory leukocyte recruitment. Annu Rev Med. 47, 413-421 (1996).
  4. Adriani, G., et al. The preferential targeting of the diseased microvasculature by disk-like particles. Biomaterials. 33, 5504-5513 (2012).
  5. Decuzzi, P., et al. Flow chamber analysis of size effects in the adhesion of spherical particles. Int J Nanomedicine. 2, 689-696 (2007).
  6. Zou, X., et al. PSGL-1 derived from human neutrophils is a high-efficiency ligand for endothelium-expressed E-selectin under flow. Am J Physiol Cell Physiol. 289, 415-424 (2005).
  7. Sakhalkar, H. S., et al. Leukocyte-inspired biodegradable particles that selectively and avidly adhere to inflamed endothelium in vitro and in vivo. Proc Natl Acad Sci U S A. 100, 15895-15900 (2003).
  8. Van Kruchten, R., Cosemans, J. M., Heemskerk, J. W. Measurement of whole blood thrombus formation using parallel-plate flow chambers – a practical guide. Platelets. 23, 229-242 (2012).
  9. Ganguly, A., Zhang, H., Sharma, R., Parsons, S., Patel, K. D. Isolation of human umbilical vein endothelial cells and their use in the study of neutrophil transmigration under flow conditions. J Vis Exp. 66 (66), (2012).
  10. Shirure, V. S., Reynolds, N. M., Burdick, M. M. Mac-2 binding protein is a novel E-selectin ligand expressed by breast cancer cells. PLoS One. 7, (2012).
  11. Ploppa, A., Schmidt, V., Hientz, A., Reutershan, J., Haeberle, H. A., Nohé, B. Mechanisms of leukocyte distribution during sepsis: an experimental study on the interdependence of cell activation, shear stress and endothelial injury. Crit Care. 14, 201 (2010).
  12. Oh, H., Diamond, S. L. Ethanol enhances neutrophil membrane tether growth and slows rolling on P-selectin but reduces capture from flow and firm arrest on IL-1-treated endothelium. J Immunol. 181, 2472-2482 (2008).
  13. Resto, V. A., Burdick, M. M., Dagia, N. M., McCammon, S. D., Fennewald, S. M., Sackstein, R. L-selectin-mediated lymphocyte-cancer cell interactions under low fluid shear conditions. J Biol Chem. 283, 15816-15824 (2008).
  14. Enders, S., Bernhard, G., Zakrzewicz, A., Tauber, R. Inhibition of L-selectin binding by polyacrylamide-based conjugates under defined flow conditions. Biochim Biophys Acta. 1770, 1441-1449 (2007).
  15. Prabhakarpandian, B., Goetz, D. J., Swerlick, R. A., Chen, X., Kiani, M. F. Expression and functional significance of adhesion molecules on cultured endothelial cells in response to ionizing radiation. Microcirculation. 8, 355-364 (2001).
  16. Brown, D. C., Larson, R. S. Improvements to parallel plate flow chambers to reduce reagent and cellular requirements. BMC Immunology. 2, 9 (2001).
  17. Zheng, W., Zhang, W., Jiang, X. Precise control of cell adhesion by combination of surface chemistry and soft lithography. Adv Healthc Mater. 2, 95-108 (2013).
  18. Qian, T., Wang, Y. Micro/nano-fabrication technologies for cell biology. Med Biol Eng Comput. 48, 1023-1032 (2010).
  19. Biswas, A., Bayer, I. S., Biris, A. S., Wang, T., Dervishi, E., Faupel, F. Advances in top-down and bottom-up surface nanofabrication: techniques, applications & future prospects. Adv Colloid Interface Sci. 170, 2-27 (2012).
  20. Whitesides, G. M., Ostuni, E., Takayama, S., Jiang, X., Ingber, D. E. Soft lithography in biology and biochemistry. Annu Rev Biomed Eng. 3, 335-373 (2001).
  21. McDonald, J. C., et al. Fabrication of microfluidic systems in poly(dimethylsiloxane). Electrophoresis. 21, 27-40 (2000).
  22. Prabhakarpandian, B., et al. Synthetic microvascular networks for quantitative analysis of particle adhesion. Biomed Microdevices. 10, 585-595 (2008).
  23. Rosano, J. M., et al. A physiologically realistic in vitro model of microvascular networks. Biomed Microdevices. 11, 1051-1057 (2009).
  24. Tousi, N., Wang, B., Pant, K., Kiani, M. F., Prabhakarpandian, B. Preferential adhesion of leukocytes near bifurcations is endothelium independent. Microvasc Res. 80, 384-388 (2010).
  25. Prabhakarpandian, B., et al. Bifurcations: focal points of particle adhesion in microvascular networks. Microcirculation. 18, 380-389 (2011).

Play Video

Citar este artigo
Smith, A. M., Prabhakarpandian, B., Pant, K. Generation of Shear Adhesion Map Using SynVivo Synthetic Microvascular Networks. J. Vis. Exp. (87), e51025, doi:10.3791/51025 (2014).

View Video