Summary

L'échographie diagnostique de souris membrane Fonction

Published: April 21, 2014
doi:

Summary

L'imagerie par ultrasons de diagnostic s'est avéré être efficace dans le diagnostic de diverses maladies respiratoires chez les sujets humains et animaux. Nous démontrons un protocole d'échographie complet utilisé par le laboratoire du Dr Zuo pour analyser la cinétique de diaphragme spécifiquement dans les modèles de souris. C'est aussi une technique de recherche non-invasive qui peut fournir des informations quantitatives sur la fonction des muscles respiratoires de la souris.

Abstract

Analyse fonctionnelle des muscles squelettiques respiratoires rongeurs, en particulier le diaphragme, est généralement réalisée en isolant des bandes de muscles en utilisant des procédures chirurgicales invasives. Bien que ce soit une méthode efficace pour évaluer l'activité in vitro de la membrane, il s'agit d'une chirurgie non-survie. L'application de l'imagerie par ultrasons non invasif comme une procédure in vivo est bénéfique, car elle réduit non seulement le nombre d'animaux sacrifiés, mais est également approprié pour la surveillance de la progression de la maladie chez des souris vivantes. Ainsi, notre procédé d'imagerie par ultrasons peut vraisemblablement contribuer à la mise au point de nouvelles thérapies qui atténuent blessure musculaire induite par diverses maladies respiratoires. En particulier, dans le diagnostic clinique de maladies pulmonaires obstructives, l'imagerie par ultrasons a le potentiel pour être utilisé en conjonction avec d'autres tests standards pour détecter l'apparition précoce de la fatigue musculaire diaphragme. Dans le protocole actuel, nous décrivons comment évaluer précisément diaphragme contractilité dans un modèle de souris en utilisant une technique d'imagerie par ultrasons de diagnostic.

Introduction

Récemment, des techniques d'imagerie de diagnostic à ultrasons ont été appliqués à des modèles murins de l'hypertension rénovasculaire et 1,2 de cancer pancréatique. Cependant, ces techniques n'ont pas été largement utilisés dans respiratoire dosage de la fonction musculaire de rongeur. Par conséquent, nous avons développé une méthode d'imagerie par ultrasons de diagnostic comme un outil précieux pour l'évaluation in vivo longitudinales de la mobilité de la membrane chez la souris.

Il existe plusieurs avantages à l'imagerie par ultrasons de diagnostic. Par exemple, il est non invasive, sûre, portable, et permet des mesures en temps réel à un coût relativement faible 3. En particulier, certains dispositifs à ultrasons basse fréquence étaient capables de détecter le piégeage de l'air, une caractéristique clinique de la maladie pulmonaire obstructive chronique (MPOC) d'intensité légère à grave limitation du débit 4. Ainsi, l'imagerie par ultrasons de diagnostic peut servir de méthode de dépistage facilement accessible et reproductible pour surveiller en temps réel des troubles respiratoires.

Les techniques d'imagerie par ultrasons de diagnostic sont souvent appliqués à de plus grands animaux ou des sujets humains. Cependant, il ya eu un nombre limité d'études d'imagerie par ultrasons sur des modèles de souris, ce qui est probablement dû aux difficultés de l'exécution des ultrasons sur des sujets de petite taille. Le protocole décrit une procédure de courant selon l'invention pour la mesure de la fonction de la membrane dans la souris. En outre, même si il ya eu plusieurs études sur les rongeurs sur la fonction de la membrane, la plupart des résultats ont été générés par l'isolement des bandes de muscle directement à partir de l'animal euthanasié 5-7. En revanche, en utilisant une méthode de diagnostic d'imagerie à ultrasons in vivo d'analyse de l'activité du diaphragme diminuerait le nombre d'animaux sacrifiés pour l'expérimentation. En outre, les traitements à long terme axées sur le renforcement de la contractilité diaphragme peuvent être évalués avec précision par ultrasons dans des modèles de rongeurs sans sacrifier les animaux.

ntent "> Dans notre laboratoire, nous avons développé une méthode efficace pour la visualisation ainsi que l'analyse de l'activité de la membrane de la souris en utilisant une machine à ultrasons, ce qui permet la compréhension de la fonction de la membrane in vivo, évite méthodes invasives pour les animaux, et des aides dans le développement de thérapeutiques traitements de la dysfonction respiratoire.

Protocol

Toutes les procédures impliquant des sujets animaux ont été approuvés et achevés conformément et la conformité avec le soin et l'utilisation des animaux institutionnel Comité Ohio State University (IACUC) les règlements et les lignes directrices. 1. Souris anesthésie Mettre en place un tableau de la procédure de nettoyage avec un tampon isotherme chauffée enveloppée dans une serviette chirurgicale. Le coussinet chauffant doit être maintenue entre 30 ° C et 34 °…

Representative Results

Une image ultrasonore typique d'un diaphragme de souris est représentée sur la Figure 1A. Le diaphragme de la souris déplacement vertical maximal a été enregistré. Cette distance a été calculée en mesurant avec précision la profondeur du mouvement de la membrane de relaxation de la contraction à l'aide des étriers électroniques qui font partie du logiciel d'ultrasons. Tableau 1 affiche ces indications de mesures de distance des contractions du diaphragme à part…

Discussion

Le protocole expérimental actuel au point des techniques d'imagerie par ultrasons de diagnostic propres à l'activité de la membrane dans un modèle de souris par le biais d'une approche non invasive, in vivo. Les réglages de l'appareil d'anesthésie sont des valeurs approchées, qui peuvent être légèrement ajustés pour chaque animal puisque les souris individu peut réagir différemment à l'anesthésie. Pour éviter l'administration de l'anesthésie inappropriée, il est…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail est soutenu par des subventions du Fonds général et du Fonds OU G110 d'excellence en recherche de l'OSU-HRS Fonds 013000 la recherche biomédicale et. Les auteurs tiennent à remercier Lauren Chen pour son aide dans la préparation de ce manuscrit.

Materials

Veterinary digital ultrasonic diagnostic imaging system Edan DUS 3 VET Ultrasound parameters include: frequency of 6.5 MHz, Depth of 29 mm. Note: An equivalent ultrasound machine may be used for this protocol
Micro-convex array transducer Edan C611 Or equivalent
GE Logiq i hand-carried unit (HCU)  GE Healthcare GE Logiq i hand-carried unit (HCU)  Or equivalent
GE 12 MHz linear array probe GE Healthcare 12L-RS Or equivalent
Veterinary anesthetic vaporizer Webster Veterinary Serial #: W422021 Isoflurane was exclusively used with this vaporizer (or equivalent). A custom made induction chamber for anesthesia was assembled for initial anesthesia. Maintenance anesthesia was performed using a nose cone
Isothesia (Isoflurane, USP) Butler Schein 29405 250ML PVL Or equivalent
Enviro-pure anesthesia absorbing canister Surgivet Smiths Medical PM, Inc. Part #: 32373B10 Or equivalent
Ultrasound transmission gel HM Sonic N/A Or equivalent 
Puralube vet ointment Puralube  NDC 17033-211-38 Or equivalent
Deltaphase isothermal pad Braintree Scientific Inc. 39DP Or equivalent
Hair remover Nair N/A Or equivalent
Electric razor Remington HC-5015 Or equivalent
Surgical tape 3M Micropore 1530-1 Or equivalent
Gauze sponges Dynarex 3262 Or equivalent

Referências

  1. Snyder, C. S., et al. Complementarity of ultrasound and fluorescence imaging in an orthotopic mouse model of pancreatic cancer. BMC Cancer. 9, 106 (2009).
  2. Franchi, F., et al. Non-invasive assessment of cardiac function in a mouse model of renovascular hypertension. Hypertension Research: Official Journal of the Japanese Society of Hypertension. , (2013).
  3. Coatney, R. W. Ultrasound imaging: principles and applications in rodent research. ILAR Journal / National Research Council, Institute of Laboratory Animal Resources. 42, 233-247 (2001).
  4. Morenz, K., et al. Detection of air trapping in chronic obstructive pulmonary disease by low frequency ultrasound. BMC Pulmonary Medicine. 12, 8 (2012).
  5. Gilliam, L. A., Moylan, J. S., Ann Callahan, L., Sumandea, M. P., Reid, M. B. Doxorubicin causes diaphragm weakness in murine models of cancer chemotherapy. Muscle & Nerve. 43, 94-102 (2011).
  6. Ferreira, L. F., Campbell, K. S., Reid, M. B. Effectiveness of sulfur-containing antioxidants in delaying skeletal muscle fatigue. Medicine and Science in Sports and Exercise. 43, 1025-1031 (2011).
  7. Zuo, L., Clanton, T. L. Reactive oxygen species formation in the transition to hypoxia in skeletal muscle. American Journal of Physiology. Cell Physiology. 289, 207-216 (2005).
  8. Helms, M. N., Torres-Gonzalez, E., Goodson, P., Rojas, M. Direct tracheal instillation of solutes into mouse lung. J. Vis. Exp. , (2010).
  9. Hedrick, W. R., Hykes, D. L., Starchman, D. E. . Ultrasound Physics and Instrumentation. , 445 (2005).
  10. von Sarnowski, B., Khaw, A. V., Kessler, C., Schminke, U. Evaluation of a microconvex array transducer for the ultrasonographic examination of the intrathoracic segments of the supraaortic arteries. Journal of Neuroimaging: Official Journal of the American Society of Neuroimaging. 20, 246-250 (2010).
  11. Stocksley, M. . Abdominal Ultrasound. , 7-8 (2001).
  12. Kremkau, F. W., Taylor, K. J. Artifacts in ultrasound imaging. Journal of Ultrasound in Medicine: Official Journal of the American Institute of Ultrasound in Medicine. 5, 227-237 (1986).
  13. Kremkau, F. W. Diagnostic Ultrasound: Principles and Instruments. Saunders Elsevier. , 521 (2006).
  14. Laing, F. C., Kurtz, A. B. The importance of ultrasonic side-lobe artifacts. Radiology. 145, 763-768 (1982).
  15. Abu-Zidan, F. M., Hefny, A. F., Corr, P. Clinical ultrasound physics. Journal of Emergencies, Trauma, and Shock. 4, 501-503 (2011).
  16. Gargani, L. Lung ultrasound: a new tool for the cardiologist. Cardiovascular Ultrasound. 9, 6 (2011).
  17. Sanders, R. C., Winter, T. . Clinical Sonography A Practical Guide. , 632 (2007).
check_url/pt/51290?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Zuo, L., Roberts, W. J., Evans, K. D. Diagnostic Ultrasound Imaging of Mouse Diaphragm Function. J. Vis. Exp. (86), e51290, doi:10.3791/51290 (2014).

View Video