Les ribosomes jouent un rôle central dans la synthèse des protéines. Polyribosome (polysome) fractionnement par gradient de saccharose de densité centrifugation permet la détermination directe de l'efficacité de la traduction des ARNm individuels à l'échelle du génome entier. En outre, cette méthode peut être utilisée pour l'analyse biochimique des ribosomes et des facteurs de polysomes associées telles que les chaperons et les molécules de signalisation.
traduction de l'ARNm joue un rôle central dans la régulation de l'expression génique et représente le processus de consommer de l'énergie dans les cellules de mammifères plus. En conséquence, la dérégulation de la traduction des ARNm est considéré à jouer un rôle majeur dans une variété d'états pathologiques dont le cancer. Ribosomes accueillent également les accompagnateurs, qui facilitent le pliage des polypeptides naissants, modulant ainsi la fonction et la stabilité des polypeptides nouvellement synthétisés. En outre, les données indiquent que les ribosomes émergents servent de plate-forme pour un répertoire de molécules de signalisation, qui sont impliqués dans une variété de modifications post-traductionnelles des polypeptides nouvellement synthétisés tels qu'ils ressortent de la ribosome, et / ou des composants de la machinerie de translation. Ici, un procédé bien établi de fractionnement ribosome utilisant la centrifugation en gradient de densité de sucrose est décrite. En collaboration avec les pays développés "Anota" algorithme interne cette méthode permet la détermination directe de différentiel de traduction des ARNm individuels à l'échelle du génome entier. De plus, ce protocole polyvalent peut être utilisé pour une variété d'études biochimiques visant à disséquer la fonction des complexes protéiques associés au ribosome, y compris celles qui jouent un rôle central dans le repliement et la dégradation des polypeptides nouvellement synthétisés.
Les réseaux de régulation qui contrôlent l'expression des gènes ont été étudiés dans les deux dernières décennies. La grande majorité de ces efforts de recherche axés sur la régulation transcriptionnelle, de sorte que des changements dans les niveaux d'ARNm à l'état stable à l'échelle du génome entier ont été utilisés pour déterminer les profils dits «expression génique». Des études récentes révèlent que les niveaux d'ARNm de l'état d'équilibre correspondent que faiblement à la composition du protéome 1,2, ce qui indique que les mécanismes post-transcriptionnels, y compris la traduction de l'ARNm, jouent un rôle majeur dans la régulation de l'expression génique 3,4. En effet, il a été estimé que ~ 50% des taux de protéines sont déterminés au niveau de la traduction de l'ARNm dans des fibroblastes de souris immortalisées 5.
traduction de l'ARNm est un processus hautement régulé au cours de laquelle les ARNm sont traduits en protéines par une action orchestrée des ribosomes, les ARN de transfert (ARNt) et les facteurs accessoires commonly dénommé facteurs de traduction (TFS) 6. La synthèse des protéines est un processus qui consomme le plus d'énergie dans les cellules de mammifères 7 et donc des taux de traduction de l'ARNm globales sont ajustés pour tenir compte de la disponibilité des nutriments et des taux de prolifération des cellules 8. En plus de modifications dans les taux globaux de la traduction de l'ARNm, divers stimuli extracellulaires (par exemple, les hormones et facteurs de croissance), des indices intracellulaires (par exemple les niveaux d'acides aminés) et différents types de stress (par exemple ER-stress) induire des changements sélectifs dans les piscines d'ARNm qui sont cours de traduction (translatome) 6. Selon le type de stimulus, l'activité de traduction de certains, mais pas tous les ARNm sont considérablement affectées, ce qui conduit à des changements dans le protéome qui sont nécessaires pour monter une réponse cellulaire rapide 6. Ces changements qualitatifs et quantitatifs dans le translatome sont pensés pour être médiée par l'interaction entre les facteurs agissant en trans (par exemple, </em> composants de machinerie traductionnelle, les facteurs auxiliaires ou miARN) et cis-éléments (éléments d'ARN ou caractéristiques) présents dans certains sous-ensembles d'ARNm 6,9. Par exemple, des changements dans les niveaux et / ou l'activité de limitation de vitesse initiation de la traduction eIF4E et facteurs eIF2 modulent sélectivement traduction des transcriptions sur la base des caractéristiques spécifiques 5'UTR 6. eIF4E et eIF2 sont nécessaires pour le recrutement de l'ARNm et l'ARNt initiateur au ribosome, respectivement 6. Une augmentation de l'activité de eIF4E renforce sélectivement la traduction des ARNm hébergeant 5'UTR longues et très structurées, y compris ceux codant pour la prolifération et la survie stimule les protéines, y compris les cyclines, c-myc et Bcl-XL 10. À son tour, l'inactivation de eIF2 conduit à la synthèse d'une protéine arrêt global, tout en régulant de manière sélective jusqu'à la traduction des ARNm contenant des inhibiteurs de courtes amont des cadres de lecture ouverts (uORFs) dans leurs 5'UTR, tels que ceux codant maître trégulateurs ranscriptional de la réponse de la protéine dépliée (par exemple ATF4). En réponse à divers stimuli, y compris les nutriments, les facteurs de croissance et les hormones, la cible mécaniste / mammalienne de la rapamycine (mTOR) voie stimule l'activité de eIF4E en inactivant la protéine 4E-liaison (4E-BP) de la famille des suppresseurs de la traduction, alors que la voie MAPK phosphorylé directement EIF4E 6,11. À leur tour, les kinases eIF2α (c.-à-PERK, PKR, HRI et GCN2) inhibent la phosphorylation de eIF2 par sa sous-unité régulatrice eIF2α en réponse à une carence en nutriments, ER-stress et infection par le virus 6,12. Les modifications de l'activité et / ou l'expression de facteurs de transcription, d'autres composants de la machinerie de translation et de facteurs de régulation, y compris miARN ont été observées dans divers états pathologiques y compris le cancer, les syndromes métaboliques, les troubles neurologiques et psychiatriques, et les maladies cardio-vasculaires et rénales 13-19. Collectivement, ces données indiquent que translationnelle moicanismes jouent un rôle essentiel dans le maintien de l'homéostasie de la cellule et que leur abrogation joue un rôle central dans l'étiologie de diverses maladies humaines.
Ici, un protocole pour le fractionnement des polysomes par centrifugation sur gradient de saccharose de densité dans des cellules de mammifère, qui est utilisé pour séparer les polysomes monosomes, à partir de sous-unités ribosomiques et messagers particules de ribonucléoprotéines (les mRNP) est décrite. Cela permet une discrimination entre traduit efficacement (associé à polysomes lourds) de mal traduits (associé à polysomes légers) ARNm. Dans ce dosage, les ribosomes sont immobilisés sur la traduction de l'ARNm en utilisant des inhibiteurs d'allongement tels que la cycloheximide 20 et des extraits cytosoliques sont séparés sur 5-50% de saccharose linéaire des gradients de densité par ultracentrifugation. Fractionnement ultérieur des gradients de saccharose permet l'isolement d'ARNm en fonction du nombre de ribosomes se lient à elles. ARN extrait à partir de chaque fraction peut être ensuite utilisée pour déterminerdes changements dans la distribution des ARNm à travers le gradient entre des conditions différentes, de sorte que l'efficacité de translation augmente à partir du haut vers le bas de la pente. Northern blot ou transcription inverse polymérase quantitative de la chaîne (qRT-PCR) sont utilisées pour déterminer les niveaux d'ARNm dans chaque fraction.
Alternativement, les fractions contenant polysomes lourds (généralement plus de 3 ribosomes) sont regroupées et les taux d'ARNm de polysomes associés génome entier sont déterminées à l'aide microarray ou séquençage profond. Il est de la plus haute importance de souligner que les niveaux d'ARNm de polysomes associés sont, en plus de la traduction, affecté par des mécanismes de transcription et de post-transcriptionnel qui influent sur les niveaux de ARNm cytosolique 21. Par conséquent, afin de déterminer les différences de translation à l'aide des données de l'ensemble du génome à partir d'ARNm de polysomes associée, il est nécessaire de corriger les effets des étapes de la voie de l'expression des gènes qui sont en amont de traduction 21. Pour permettre une telle correction, ARN cytosolique est préparé en parallèle avec l'ARN de polysome-associé de chaque échantillon et les taux d'ARNm de l'état d'équilibre du génome sont déterminés 21. Actuellement, soi-disant «traduction-efficacité" (TE) marque (c'est à dire le journal de rapport entre les données d'ARNm polysomes associés et les données d'ARNm cytosolique) sont souvent employés pour corriger les effets des changements dans les niveaux d'ARNm cytosolique sur la traduction efficacité d'un compte tenu de l'ARNm 22. Cependant, en utilisant les scores TE pour identifier traduction différentiel est associée à un nombre important de faux résultats positifs et faux négatifs en raison d'une propriété mathématique des scores TE communément appelés corrélation comme faux 27. En effet, une enquête sur les ensembles de données provenant de plusieurs laboratoires indiqué que ces fausses corrélations semblent inévitables lors de l'analyse des changements dans les translatomes 23. Cela a incité le développement de l '«analyse de tr différentiel anslation "(Anota) algorithme, ce qui ne présente pas les inconvénients précités 23. Pendant Anota-analyse d'un modèle de régression est utilisée pour dériver des mesures de l'activité de translation indépendants des niveaux d'ARN cytosoliques. Ces mesures sont ensuite comparées entre les conditions et une statistique est calculée. L'utilisateur a la possibilité d'application d'un procédé de retrait de la variance, ce qui permet d'améliorer la puissance statistique et réduit l'apparition de résultats faussement positifs dans les études avec quelques répétitions 24. De manière significative, il a été récemment démontré que des perturbations dans la translatome capturés par Anota, mais pas les partitions TE, en corrélation avec les changements dans le protéome 25. Par conséquent, il est fortement recommandé d'appliquer l'analyse de Anota pour l'identification des changements de traduction à l'échelle du génome entier. Alors que les fondements théoriques de l'algorithme de Anota ont été discutés en détail précédemment 21,23,26, ici l'accent est mis sur la façon de l'appliquer dans la pratique.
ve_content "> En plus de l'étude des changements dans l'activité de traduction de l'ARNm dans la cellule, ce protocole de fractionnement ribosome peut être utilisé pour isoler et biochimiquement et fonctionnellement caractériser-et ribosome complexes protéiques polysomes associés. Cette approche a bien été déployée dans le passé pour identifier complexes qui régissent la stabilité des polypeptides nouvellement synthétisés 27 et / ou sont impliquées dans la phosphorylation des composants de la machinerie traductionnelle. Cette application de la méthode de fractionnement polysome seront également brièvement discutées.Cet article décrit un protocole polysome fractionnement bien établie suivie par une méthode d'analyse développés en interne pour la capture des modifications qualitatives et quantitatives de l'activité de traduction à l'échelle du génome dans les cellules de mammifères. Pour la réussite de ce protocole une attention particulière devrait être accordée à 1) Cellule de confluence (comme les taux de prolifération et la disponibilité des éléments nutritifs en corrélation avec l'activité de traduction de l'ARNm et peuvent affecter la composition de la translatome, confluence cellulaire doit être homogène pour les répétitions et les conditions expérimentales), 2) la lyse cellulaire rapide (Malgré la présence de cycloheximide et les inhibiteurs de RNAse dans des tampons, lyse doit être rapide et extraits cellulaires doivent être superposées sur des gradients de saccharose, immédiatement après la lyse de prévenir la dégradation de l'ARN et la dissociation des polysomes), 3) la préparation de gradient (pour s'assurer grande reproductibilité des données, des gradients de saccharose doivent être préparés en utilisant la machine à gradient et spésoins sociale devrait être prise lors de leur manipulation).
En plus d'étudier les changements dans l'activité de traduction, ce protocole peut être utilisé pour isoler des complexes protéiques ribosomes associés et établir leurs fonctions physiologiques. A cet effet, les niveaux et l'état de phosphorylation de diverses protéines de ribosomes associés peuvent être déterminés par précipitation au TCA, suivis par transfert de Western, tandis que les complexes protéiques ribosomes associés peuvent être immunoprécipités à partir de fractions de gradient et analysées par Western blot ou spectrométrie de masse. Un inconvénient de cette technique est que la méthode de fraction de gradient lent pourrait entraîner la dissociation des protéines même étroitement liées dont la cinétique de liaison sont en rapide association / dissociation. Les facteurs associés à des polypeptides nouvellement synthétisés sont des exemples typiques. Des polypeptides nouvellement synthétisés émergents former les ribosomes peuvent être immobilisés sur des complexes protéiques associés à des ribosomes à l'aide des agents de reticulation chimiques tels que le 3, 3'-dithiobis [suifosuccinimidylpropionate] (DTSSP) 31. Cette approche a révélé que le récepteur pour C activée Kinase 1 (RACK1) / c-Jun N-terminal kinase (JNK) / facteur eucaryote d'élongation traduction 1A2 (eEF1A2) complexe régule la dégradation des polypeptides nouvellement synthétisés en réponse au stress 27. En outre, la méthodologie similaire a été utilisée dans des études montrant que la protéine kinase C BII (PKCbII) est recruté pour ribosomes par RACK1 32 et que l'activation du complexe mTOR 2 (mTORC2) se produit sur les ribosomes où elle phosphoryle polypeptides AKT nouvellement synthétisées et réglemente leur stabilité 33,34.
Les principales limites de la méthode polysomes de fractionnement, suivi par une analyse de Anota sont les suivants: 1) l'exigence d'un nombre relativement élevé de cellules (~ 15 x 10 6 cellules), 2) l'absence d'une information de position en ce qui concerne la localisation du ribosome sur une molécule d'ARNm donné, et 3 ) les questions liées à hétéro cellulaire et moléculairenéité de tissus normaux et tumoraux. Les questions liées au nombre de cellules nécessaires peuvent être résolus par l'alignement des pics des spectres d'absorbance correspondant à monosomes (80S) de cellules dont les montants sont de limiter à ceux obtenus à partir de cellules de haute abondance (par exemple des cellules HeLa) 35. Technique de profilage ribosome (voir ci-dessous) peut être utilisé pour déterminer la position exacte du ribosome sur une molécule d'ARNm donné, tandis que les questions liées aux effets de confusion de l'hétérogénéité des tissus sur l'interprétation des changements dans l'expression des gènes obtenus à partir de systèmes complexes tels que les tissus humains sont discutés en détail dans une publication de poireaux et Storey 36.
Récemment, une nouvelle technique de profilage ribosome a été développé, dans lequel des fragments de ribosome protégées (PRSA) sont générés par le traitement RNase I et analysés par séquençage profond 22. Cette technique permet de déterminer la position du ribosome à une résolution d'un seul nucléotide, fournissant ainsi jusqu'à UNPRidées ecedented en biologie ribosome. Par exemple, le profilage ribosome peut être utilisé pour la détermination de la densité du ribosome sur une molécule d'ARNm donné ou l'identification des éléments que les taux traduction de l'influence d'initiation tels que les sites d'initiation alternatifs, initiation aux codons non-AUG et des éléments de régulation tels que uORFs. Cependant, il existe plusieurs limites méthodologiques qui limitent la capacité de profilage ribosome d'estimer avec précision l'efficacité de traduction de l'ARNm. Il s'agit notamment des biais indépendants introduites par fragmentation aléatoire et RNAse je digestion, les biais introduits par les inhibiteurs de la traduction (par exemple des inhibiteurs allongement tels que l'émétine et cycloheximide sont susceptibles d'induire une accumulation ribosome à des sites d'initiation de la traduction), un grand nombre de faux résultats positifs et faux négatifs associés avec des scores TE ainsi que leur imprécision dans la prédiction du lit qui proviennent d'ARNm codant la protéine 37. Peut-être le plus important, alors queprofilage ribosome permet l'identification directe de la position du ribosome sur une molécule d'ARNm donné, le nombre de ribosomes qui est associé à un ARNm donné est estimée indirectement par la normalisation des fréquences de lit dans RPF (ARNm au ribosome-associé) au-dessus de celles observées dans les ARNm de façon aléatoire fragmentés (total ARNm). Par exemple, dans un cadre simple où quatre molécules d'ARNm «B» (Ba, Bb, Bc et Bd) sont occupés par quatre ribosomes dans les positions 1, 2, 3 et 4, une lacune inhérente à la technique de profilage de ribosome ne permettra pas une distinction entre un scénario où les 4 ribosomes associent uniquement avec un Ba ARNm dans les positions 1, 2, 3, et 4 et un scénario où Ba, Bb, Bc et Bd ARNm sont occupées chacune par un seul ribosome à la position 1, 2 , 3, et 4, respectivement. En revanche, au cours de polysomes fractionnement, polysomes intégrité est préservée, ce qui permet l'isolement de pools d'ARNm associées à un nombre défini de ribosomes (figure 1). Cette importationdistinction fourmi entre polysome fractionnement et le profilage ribosome suggère que tandis que la première méthode peut être utilisée pour comparer directement les ARNm dans mRNP, fractions légères et polysomes lourds, cette dernière méthode sera probablement pas à tenir compte des changements dans la translatome qui sont causées par des ARNm que la transition de s'allume pour polysomes lourds, tout en surestimant la contribution de ceux qui passer de la fraction mRNP à polysomes lourds. La signification biologique de ces différences entre les méthodes mentionnées ci-dessus est mise en évidence par une grande partie des données montrant que l'activation de la translation d'un sous-ensemble d'ARNm telles que celles qui sont eIF4E-sensible, de la transition du clair au polysomes lourds, tandis que d'autres, tels que ceux abritant éléments 5'TOP, sont recrutés pour polysomes lourds directement à partir de pools de libre ribosome-ARNm 6. Fait intéressant, la voie mTOR a été montré pour moduler de façon concomitante traduction pour "eIF4E sensible" et une 5'TOP ARNm1. Par conséquent, les différences méthodologiques qui sont discutés ci-dessus peuvent expliquer la discordance apparente de la conclusion d'une étude à l'aide de ribosome profilage 38,39 et polysome fractionnement 24 pour évaluer les effets de l'inhibition de mTOR sur la translatome.
En conclusion, les polysomes fractionnement et le profilage ribosome sont des méthodes complémentaires qui fournissent principalement des informations concernant le nombre de ribosomes associés à l'ARNm et de la position du ribosome sur l'ARNm, respectivement. Surtout, malgré les insuffisances et les avantages de ces méthodes, il demeure essentiel que les données de l'ensemble du génome obtenus par les deux procédures sont correctement analysés et fonctionnel et biochimique validés.
The authors have nothing to disclose.
Cette recherche a été financée par les Instituts de recherche en santé (subvention des IRSC RdP-115195) et FRQ-S à l'informatique, qui est également récipiendaire du Prix du jeune chercheur des IRSC; et le Conseil suédois de la recherche et de la Société suédoise du cancer pour OL
HEPES | Biobasic | HB0264 | |
MgCl 2 | Sigma | M8266 | |
KCl | VWR | CABDH4532 | |
Dithiothreitol (DTT) | Biobasic | DB0058 | |
Tris | Biobasic | TB0196 | |
Glycoblue | Ambion | AM9515 | RNA precipitation carrier |
Sodium Deoxycholate | Sigma | D6750 | |
Triton X-100 | Sigma | X100 | |
Cycloheximide | Sigma | C1988 | |
Protease inhibitor cocktail | Roche | 04693132001 | Tablets (EDTA-free) |
RNase inhibitor | Promega | N2515 | |
0.45 µm Filter System 150 ml | Corning | 431155 | |
Sucrose | Sigma | S0389 | |
RNeasy MinElute Cleanup kit | Qiagen | 74204 | RNA cleanup kit |
Thin wall polyallomer ultracentrifuge tubes | Beckman Coulter | 331372 | |
Equipments | |||
SW41Ti Rotor Package with accessories | Beckman Coulter | 331336 | |
Optima L100 XP ultra centrifuge | Beckman Coulter | DS-9340A | |
ISCO fraction collector | Brandel | FC-176-R1 | |
Type II Detector with Chart Recorder | Brandel | UA-6 | UV detector |
Tube Piercer w/Flow Cell and Syringe Pump | Brandel | BR-A86-5 | |
UA-6 Detector Cable | Brandel | 60-1020-211 | |
FC-176 Communication Cable | Brandel | FCC-176 | |
Gradient Master Base Unit | Biocomp | 108-1 | Gradient Maker |
Gradient Forming Attachments | Biocomp | 105-914A-1R | Gradient Maker attachment |
Measurement Computing 8-channel 50kHz Data Acquisition Device | MicroDAQ | USB-1208FS | Analysis software attachment |
Measurement Computing Data Acquisition Software | MicroDAQ | TracerDAQ Pro | Analysis software (Download only) |
Buffers | |||
10X buffer for sucrose gradients: | |||
200 mM HEPES (pH7.6) | |||
1 M KCl | |||
50 mM MgCl2 | |||
100 µg/ml cycloheximide | |||
1x protease inhibitor cocktail (EDTA-free) | |||
100 units/ml RNase inhibitor | |||
Lysis buffer | |||
5 mM Tris-HCl (pH7.5) | |||
2.5 mM MgCl2 | |||
1.5 mM KCl | |||
1x protease inhibitor cocktail (EDTA-free)] | |||
Then add cycloheximide (CHX), DTT, RNAse inhibitor, Triton and Sodium Deoxycholate as indicated in the main text |