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Artigo de método

Um Guia para In vivo Gravação única unidade de Optogenetically Identificado Cortical Inibitória Interneurônios

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DOI:

10.3791/51757

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7 de novembro de 2014

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Neste artigo

Resumo

Aqui descrevemos nossa estratégia para obter gravações de unidade única estáveis e bem isoladas de interneurônios inibitórios identificados no córtex de camundongo anestesiado. Os neurônios que expressam ChR2 são identificados por sua resposta à luz azul. O método usa equipamento de gravação extracelular padrão e serve como uma alternativa barata à imagem de cálcio ou patch guiado visualmente.

Resumo

Um grande desafio em neurofisiologia tem sido a de caracterizar as propriedades de resposta e função dos inúmeros tipos de células inibitória no córtex cerebral. Nós aqui partilhar a nossa estratégia para a obtenção estáveis, bem isoladas gravações de uma única unidade de interneurônios inibitórios identificadas no córtex anestesiado mouse usando um método desenvolvido por Lima e colaboradores um. As gravações são realizadas em ratinhos que expressam channelrodopsina-2 (ChR2) em subpopulações neuronais específicas. Os membros da população são identificados pela sua resposta a um breve flash de luz azul. Esta técnica - chamada de "PINP", ou Identificação fotoestimulação-assistida de Populações Neuronais - pode ser implementado com equipamento de gravação extracelular padrão. Ela pode servir como uma alternativa barata e acessível a imagiologia de cálcio ou patching visualmente-guiado, com o objectivo de direccionamento gravações extracelulares de células identificadas geneticamente. Here nós fornecemos um conjunto de diretrizes para a otimização do método na prática diária. Nós refinado nossa estratégia especificamente para alvejar as células parvalbumina-positivo (PV +), mas descobriram que ele funciona para outros tipos interneuron, bem como, tais como (CR +) interneurons expressando Calretinin-somatostatina expressando (SOM +) e.

Introdução

Caracterizar a miríade de tipos de células que compõem o cérebro dos mamíferos tem sido um objetivo central, mas há muito indescritível, da neurofisiologia. Por exemplo, as propriedades e funções de diferentes tipos de células inibitórias no córtex cerebral são tópicos de grande interesse, mas ainda são relativamente desconhecidos. Isso ocorre em parte porque as técnicas convencionais de gravação in vivo cegas são limitadas em sua capacidade de distinguir entre diferentes tipos de células. A largura do pico extracelular pode ser usada para separar neurônios inibitórios positivos para parvalbumina de células piramidais excitatórias, mas esse método está sujeit....

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Protocolo

NOTA: O seguinte protocolo está de acordo com os Institutos Nacionais de Saúde como diretrizes aprovados pela Universidade de Oregon Animal Care e do Comitê Use.

1. Cirurgia aguda

  1. Anestesiar o animal com um cocktail de cetamina-medetomidina, via intraperitoneal (ip) (Tabela 1).
    NOTA: Os ratos usados ​​nestas experiências são gerados pelo cruzamento de um ChR2-EYFP line10 transgénico dependente de cre a Interneuron linhas de driver (Pvalb-iCre11, PV +; Sst-iCre12, SOM +; Cr-iCre12, CR +). Entrega Viral de ChR2 ou opsinas relacionados devem funcionar igualmente bem, assumindo níveis de expressão semelhante....

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Resultados

Nós aqui partilhar a nossa estratégia para a obtenção de gravações de uma única unidade de interneurônios inibitórios geneticamente classificados no córtex anestesiado rato, utilizando um método optogenetic desenvolvido por Lima et al. A Tabela 1 detalha o cocktail anestésico sugerido, quetamina-medetomidina-acepromazina (1 ". KMA "). A Figura 1 representa um microeléctrodo de tungsténio, preparado para a gravação. A figura 2 contém um diagrama de ci.......

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Discussão

Embora PINP é conceitualmente simples, ele pode ser um desafio na prática. Um dos principais determinantes do sucesso é a escolha do eletrodo. O raio de audição eléctrica é o parâmetro crítico. Ele deve ser suficientemente grande para detectar picos de luz evocado quando a ponta é ainda a certa distância a partir de uma célula ChR2 +, de modo que se pode ajustar a velocidade de avanço em conformidade. Ao mesmo tempo, deve ser restringido o suficiente para permitir um bom isolamento única unidade. Ou seja, o eletrodo não.......

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Divulgações

Os autores não têm interesses financeiros concorrentes.

Agradecimentos

Este trabalho foi financiado pela Whitehall Foundation e pelo NIH. Agradecemos a Clifford Dax (Administração de Suporte Técnico da Universidade de Oregon) por sua ajuda e experiência no projeto de um circuito para entrega de luz.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Linha ChR2-EYFPColônias Jackson12569
Linha Pvalb-iCre (PV) ColôniasJackson8069
Linha Sst-iCre (SOM) ColôniasJackson13044
Linha Cr-iCre (CR)Colônias Jackson10774
AgaroseSigma-AldrichA9793Tipo III-A, Alto EEO
Micro Point (dural gancho)FST10066-15
Tesoura CirúrgicaFST14084-09
BisturiFST10003-12 (alça), 10011-00 (lâminas)
Pomada Oftálmica PuralubeFoster & Manta9N-76855
Aparelho Harvard507220F
Tungsten MicroelectrodesA-M Systems57720012 MΩ Resistência AC, 127 μ m de diâmetro, 12° ponta cônica, Tubo de Vidro Capilar Revestido com Epóxi
Warner InstrumentsG150TF-3
Tubo Termo RetrátilDigiKeyA332B-4-ND
Acelerador ZapitDVASKU ZA/ZAAUse com Super Cola padrão. 
Amplificador AC de Microeletrodo 1800AM Systems700000
MP-285 Micromanipulador MotorizadoSutterMP-285
Osciloscópios Digitais de 4 canaisAlto-falantes Alimentadospor TDS2000C
Modelo Harman JBL  Manipulador Manual Duet
ScientificaLBM-7
800 µ m Cabo de remendo de fibra ópticaThorLabsFC/PC BFL37-800
Medidor de potênciaThorLabsPM100D (medidor de energia), S121C (sensor de potência padrão)
475 nm Cree XLamp XP-EDigiKeyXPEBLU-L1-R250-00Y01DKR-NDA potência e a eficiência do LED estão aumentando continuamente, por isso recomendamos verificar os produtos mais recentes (www.cree.com).
Arduino UNODigiKey1050-1024-ND
Homeotérmica Smith Tektronix

Referências

  1. Lima, S. Q., Hromadka, T., Znamenskiy, P., Zador, A. M. PINP: a new method of tagging neuronal populations for identification during in vivo electrophysiological recording. PLoS One. 4, (2009).
  2. Moore, A. K., Wehr, M.

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Reimpressões e permissões

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