Summary

Dissektion och immunfärgning av imaginal skivor från<em> Drosophila melanogaster</em

Published: September 20, 2014
doi:

Summary

The adult structures of Drosophila are derived from sac-like structures called imaginal discs. Analysis of these discs provides insight into many developmental processes including tissue determination, compartment boundary establishment, cell proliferation, cell fate specification, and planar cell polarity. This protocol is used to prepare imaginal discs for light/fluorescent microscopy.

Abstract

En betydande del av post-embryonal utveckling i bananflugan, Drosophila melanogaster, sker inom en uppsättning av säck-något liknande strukturer som kallas imaginal skivor. Dessa skivor ger upphov till en hög procentuell andel av vuxna strukturer som finns inom den vuxna flugan. Här beskriver vi ett protokoll som har optimerats för att återvinna dessa skivor och förbereda dem för analys med antikroppar, transkriptions reportrar och protein fällor. Detta förfarande är bäst lämpad för tunna vävnader såsom imaginal skivor, men kan lätt modifieras för användning med tjockare vävnader såsom larv hjärnan och vuxen äggstock. Den skriftliga protokoll och tillhörande video guidar läsaren / tittaren genom dissektion av tredje stadiet larver, fixering av vävnad, och behandling av imaginal skivor med antikroppar. Protokollet kan användas för att dissekera imaginal skivor från yngre första och andra instar larver samt. Fördelen med detta protokoll är att det är relativt kort och det har att varasv optimerad för höga bevara den dissekerade vävnaden kvaliteten. En annan fördel är att fixeringen förfarande som används fungerar bra med det överväldigande antalet antikroppar som känner igen Drosophila proteiner. Enligt vår erfarenhet finns det ett mycket litet antal känsliga antikroppar som inte fungerar bra med den här proceduren. I dessa situationer tycks botemedlet vara att använda en alternativ fixerings cocktail samtidigt fortsätta att följa de riktlinjer som vi har satt fram för dissektion steg och inkubationer antikroppar.

Introduction

I mer än ett århundrade bananflugan, Drosophila melanogaster, har varit ett ledande system för att studera utvecklingen, beteende och fysiologi. Utvecklingen i gylfen kan delas in i två faser: embryonala och post embryonala med mycket av den senare äger rum inom monolager epitel kallas imaginal skivor 1-3. Teckningar av imaginal skivor publicerades först i 1864 av August Weismann som en del av hans breda monografi om insekts utveckling 1. Dessa skivor börjar sin utveckling under fosterutvecklingen, är mönstrade under larvstadierna, överleva den massiva histolysis av de tidiga PUPP stadierna, och i slutändan leda till en hög andel av vuxna strukturer som finns inom vuxen flyga 1-14. Under larvutveckling varje skiva gör flera kritiska beslut om ödet, form och storlek. Inom de första och andra larv instars, är skivorna uppgift att anta en primär öde, establisHing områdesgränser, anta rätt form och generera det erforderliga antalet celler 15-16. Under tredje larv stadiet och tidig pre-puppstadium, de imaginal skivor fortsätter att dela sig och är mönstrade som celler antar deras kopplings öden 16.

Under tidiga historia Drosophila utvecklingsbiologi, har imaginal skivor studerade nästan uteslutande i samband med normal utveckling och i de begränsade fall där en förlust eller vinst-of-function mutant var lönsamt. Användningen av röntgenstrålar för att inducera mitotisk rekombination tillåts för dödliga mutationer som ska analyseras i cellkloner inom larver och vuxna vävnader. Detta förfarande har förbättrats genom införande av transgena metoder för att analysera förlusten och få-av-funktionsmutationer i båda larv och vuxna vävnader. Antalet antikroppar, transkriptions reportrar och protein fällor för att beskriva den molekylära landskap av vildtyp och mutant vävnader är också constoch art växer. Med hjälp av dessa molekylära markörer för att analysera förlusten och få-av-funktionen mutant cellkloner har gjort det allt möjligt för att få en realtids förståelse för hur muterade celler avviker från sina vilda kusiner typ under utveckling. För att korrekt dra nytta av dessa verktyg och reagens är det viktigt att ha höga beredningar av imaginal skivor som kan visas, fotograferade och analyserade kvalitet. Målet med detta manuskript är att ge ett optimerat protokoll för isolering och beredning av ögon antennal skivkomplex (Figur 1A). Den kan också med framgång användas för att isolera ett brett utbud av ytterligare skivor inklusive sådana som ger upphov till de vingar, halteres, T1-T3 ben och könsorganen (Figur 1B-E). Detta förfarande, med smärre modifikationer, använts för att isolera imaginal skivor från Drosophila för nästan åttio år.

Som beskrivits ovan, eftersom de flesta gener uttrycks under multiple stadier av utveckling och i en mångfald av vävnader, är det ofta omöjligt att studera effekterna att null mutanter har på hela ögat som djuret dör väl innan den tredje instar larvstadiet. Fyra metoder har gjort studier av mer utvecklade vävnader såsom näthinnan betydligt mer lätthanterlig. Den första är den Flippase (FLP) / Flippase Rekombination Target (FRT) metod för att generera muterade cellkloner i en annars vildtyp vävnad 17-19. I detta fall är den mutanta vävnad identifieras genom frånvaron av en visuell markör såsom grönt fluorescerande protein (GFP) och kan jämföras med den omgivande vildtyp vävnad i vilken GFP är närvarande (figur 2D). Den andra är metoden "FLP-ut", i vilken en transgenen uttrycks i en population av celler 20. I detta fall är de cellkloner identifierades genom närvaron av GFP och jämfört med den omgivande vildtyp vävnad som saknar GFP reporter (Figur2E). Den tredje är den Mosaik analys med en undertryck Cell Marker (MARCM) teknik, som kombinerar element av FLP / FRT mutant klon och FLP-out expressionssystem 21. Med den här metoden en transgen kan uttryckas inom en population av celler som samtidigt mutant för en enskild genetiskt lokus. Liksom FLP-ut kloner, är marcm kloner identifierades genom närvaron av GFP och jämfört med den omgivande vildtyp vävnad som saknar den GFP-markör (Figur 2F). Och slutligen, kan de gener och RNAi konstruktioner uttryckas inom imaginal vävnad under kontroll av specifika promotor-GAL4 konstruktioner. Dessa fyra metoder har ökat intresset för att studera imaginal skivor sedan muterade eller överuttryck kloner eller mönster kan direkt jämföras med intilliggande vild vävnadstyp. Metoden som beskrivs i detta förfarande har utvecklats för att forskare som studerar den post-embryonal utveckling av vuxna vävnader i Drosophila,särskilt sådana som framställts från ögat-antennal skiva, kommer att kunna erhålla hög kvalitet vävnad för analys. Även om enskilda forskare har gjort smärre ändringar har kärnan i detta förfarande (som vi beskriver här) i stort sett oförändrad. Eftersom få högkvalitativ vävnad är avgörande för studiet av imaginal skivor vi hoppas denna skriftliga protokoll och tillhörande video kommer att fungera som en värdefull undervisningsresurs.

Protocol

1. Framställning av Larver Fyll en 35 mm petriskål med dissektion buffert. Placera larver i petriskål och tillåta dem att simma runt i några minuter (självrengörande steg). Överför larver till en pool av dissektion buffert på ett silikonbaserat dissektion plattan. Denna pool bör vara vid en kant av plattan. Den dissekering plattan består av en silikonlösning som har hällts och härdas i en glaspetriskål. Med hjälp av en pasteur-pipett, placera en större pool av d…

Representative Results

Den metod som beskrivs ovan tillförlitligt producerar högkvalitativt material för analys med in situ-prober, transkription reportrar, protein fällor och antikroppar. I figur 1 visar vi eye-antenn, genitala, vinge, haltere och ben skivor som rutin återvinns med denna metod. Dessa skivor har behandlats med en phalloidin-konjugerad fluorofor, som binder till F-aktin och därför beskriver varje cell. Om vävnaden har fastställts på rätt sätt då den morfogenetiska fåra i ögat skiva kant…

Discussion

Även om detta förfarande har till stor del fokuserat på isolering och efterföljande behandling av ögon antennal skivor är det mottagligt för att användas för att isolera och analysera vingen, haltere, ben och genitala skivor (Figur 4). Det enda som krävs ändring av protokollet för att isolera dessa skivor (i motsats till den ögon antennal skiva) är metoden för grova dissektion (§ 2 i protokollet). Den första bröstbenet (T1) paret hittas vid den främre av larven och kan återvinnas gen…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vill tacka Donald Ready och Kevin Moses för undervisning JPK original imaginal skivan dissektion förfarande. Vi tackar också Bonnie Weasner för genitala skivan i figur 1B och ögat skivan i figur 2A, Brandon Weasner för figur 3, den Bloomington Drosophila Stock Centrum för flyga fläckar och Utvecklingsstudier Hybridoma banken för antikroppar. CMS har fått stöd av ett stipendium från National Institutes of Health (NIH) GCMS Training Grant (T32-GM007757), Frank W. Putnam Research Fellowship, och Robert Briggs Research Fellowship. JPK stöds av ett bidrag från National Eye Institute (R01 EY014863)

Materials

Name of Material/Equipment Company Catalog Number Comments
Sylgard 184 Silicone Elastomer Kit Dow Corning 184 SIL ELAST KIT 0.5KG Used to create base for dissection plate
Pryex Glass Petri Dish 150x20mm Dow Corning 3160-152CO Use the cover for dissection plate
#5 Dissecting Forceps Ted Pella 525 Forceps must be kept very sharp
9 well watch glass Vairous Vendors N/A Used for fixation of imaginal disc complexes
50ml Erlenmeyer Flask Various Vendors N/A
Small Stir Bar Various Vendors N/A Small enough to fit into Erlenmeyer Flask
50ml Conical Tubes Various Vendors N/A
1.5ml Microfuge Tubes Various Vendors N/A Clear or Dark depending upon application
Microfuge Rack Various Vendors N/A
Benchtop Rotator Various Vendors N/A 100ul volume should not splatter at low setting
Paraformaldehyde Macron Chemicals 2-26555-1 Serves as fixative
Sodium Phosphate Monobasic Sigma Chemical Co S-3139 Used to make dissection and wash buffers
Sodium Phosphate Dibasic Sigma Chemical Co 71636 Used to make dissection and wash buffers
Lysine Acros Organics 125221000 Used in the fixative solution
Sodium Periodate Sigma Chemical Co S-1878 Used in the fixative solution
Triton X-100 EMD Chemicals MTX1568-1 Used to perforate imaginal discs
Sodium Hydroxide EM Science SX0593-3 Used to dissolve paraformaldehyde
100% Normal Goat Serum` Jackson Laboratories 005-000-121 Serves as a blocking solution
Primary Antibodies Various Vendors N/A Dilute in 10% goat serum as directed by manufacturer
Seondary Antibodies Various Vendors N/A Dilute in 10% goat serum as directed by manufacturer
Vectashield Molecular Probes H-1000 Prevents bleaching of samples
Microscope Slides Fischer Scientific 48312-003
Glass Cover Slips 18x18mm Fischer Scientific 12-542A
Kimwipe Tissue Various Vendors NA Prevents Glass slides from adhering to silicone base
Panit Brush 000 Various Vendors NA Use to gently lower coverslip on to samples

Referências

  1. Weismann, A. Die nachembryonale entwicklung der Musciden nach beobachtungen an Musca vomitoria und Sarcophaga carnaria. Zeit. Wiss. Zool. 14, 187-336 .
  2. Cohen, S. M. . Imaginal disc development. , 747-841 (1993).
  3. Held, L. I. Imaginal Discs: The Genetic and Cellular Logic of Pattern Formation. Developmental and Cell Biology Series. 39, 460 (2002).
  4. Miall, L. C., Hammond, A. R. The development of the head of the imago of Chironomus. Trans. Linn. Soc. Zool. 5, 265-279 .
  5. Kellog, V. L. The development and homologies of the mouth parts of insects. Am. Nat. 36, 683-706 (1902).
  6. Eassa, Y. E. E. The development of imaginal buds in the head of Pieris brassicae Linn. (Lepidoptera). Trans. R. Entomol. Soc. Lond. 104, 39-51 (1953).
  7. Bryant, P. J., Schneiderman, H. A. Cell lineage, growth, and determination in the imaginal leg discs of Drosophila melanogaster. Dev Biol. 20, 263-290 (1969).
  8. Postlethwait, J. H., Schneiderman, H. A. A clonal analysis of development in Drosophila melanogaster: morphogenesis, determination and growth in the wild type antenna. Dev. Biol. 24, 477-519 (1971).
  9. Anderson, D. T., Counce, S., Waddington, C. H. The development of hemimetabolous insects. Developmental Systems. , 165-242 (1972).
  10. Anderson, D. T., Counce, S., Waddington, C. H. The development of hemimetabolous insects. Developmental Systems. , 96-163 (1972).
  11. Crick, F. H. C., Lawrence, P. A. Compartments and polyclones in insect development. Science. 189, 340-347 (1975).
  12. Wieschaus, E., Gehring, W. Clonal analysis of primordial disc cells in the early embryo of Drosophila melanogaster. Dev Biol. 50 (2), 249-263 (1976).
  13. Lawrence, P. A., Morata, G. The early development of mesothoracic compartments in Drosophila. An analysis of cell lineage and fate mapping and an assessment of methods. Dev Biol. 56 (1), 40-51 (1977).
  14. Madhaven, M. M., Schneiderman, H. A. Histological analysis of the dynamics of growth of imaginal discs and histoblast nests during the larval development of Drosophila melanogaster. Wilhelm Roux Archive. 183, 269-305 (1977).
  15. Kumar, J. P. Retinal determination the beginning of eye development. Curr Top Dev Biol. 93, 1-28 (2010).
  16. Kumar, J. P. My what big eyes you have: how the Drosophila retina grows. Dev Neurobiol. 71 (12), 1133-1152 (2011).
  17. Golic, K. G., Lindquist, S. The FLP recombinase of yeast catalyzes site-specific recombination in the Drosophila genome. Cell. 59, 499-509 (1989).
  18. Xu, T., Rubin, G. M. Analysis of genetic mosaics in developing and adult Drosophila tissues. Development. 117 (4), 1223-1237 (1993).
  19. Duffy, J. B., Harrison, D. A., Perrimon, N. Identifying loci required for follicular patterning using directed mosaics. Development. 125 (12), 2263-2271 (1998).
  20. Ito, K., et al. The Drosophila mushroom body is a quadruple structure of clonal units each of which contains a virtually identical set of neurones and glial cells. Development. 124 (4), 761-771 (1997).
  21. Lee, T., Luo, L. Mosaic analysis with a repressible cell marker (MARCM) for Drosophila neural development. Trends Neurosci. 24, 251-254 (2001).
  22. Ready, D. F., Hanson, T. E., Benzer, S. Development of the Drosophila retina, a neurocrystalline lattice. Dev. Biol. 53, 217-240 (1976).
  23. Wolff, T., Ready, D. F. The beginning of pattern formation in the Drosophila compound eye: the morphogenetic furrow and the second mitotic wave. Development. 113, 841-850 (1991).
  24. Heberlein, U., Wolff, T., Rubin, G. M. The TGF beta homolog dpp and the segment polarity gene hedgehog are required for propagation of a morphogenetic wave in the Drosophila retina. Cell. 75, 913-926 (1993).
  25. Ma, C., et al. The segment polarity gene hedgehog is required for progression of the morphogenetic furrow in the developing Drosophila eye. Cell. 75, 927-938 (1993).
  26. Heberlein, U., et al. Growth and differentiation in the Drosophila eye coordinated by hedgehog. Nature. 373, 709-711 (1995).
  27. Dominguez, M., Hafen, E. Hedgehog directly controls initiation and propagation of retinal differentiation in the Drosophila eye. Genes Dev. 11, 3254-3264 (1997).
  28. Pignoni, F., Zipursky, S. L. Induction of Drosophila eye development by Decapentaplegic. Development. 124, 271-278 (1997).
  29. Borod, E. R., Heberlein, U. Mutual regulation of decapentaplegic and hedgehog during the initiation of differentiation in the Drosophila retina. Dev. Biol. 197, 187-197 (1998).
  30. Masucci, J. D., Miltenberger, R. J., Hoffmann, F. M. Pattern-specific expression of the Drosophila decapentaplegic gene in imaginal disks is regulated by 3′ cis-regulatory elements. Genes Dev. 4, 2011-2023 (1990).
  31. Blackman, R. K., et al. An extensive 3′ cis-regulatory region directs the imaginal disk expression of decapentaplegic, a member of the TGF-b family in Drosophila. Development. 111, 657-665 (1991).
  32. Campos, A. R., et al. Molecular analysis of the locus elav in Drosophila melanogaster: a gene whose embryonic expression is neural specific. Embo J. 6 (2), 425-431 (1987).
  33. Robinow, S., White, K. The locus elav of Drosophila melanogaster is expressed in neurons at all developmental stages. Dev Biol. 126 (2), 294-303 (1988).
  34. Kumar, J. P. Building an ommatidium one cell at a time. Dev Dyn. 241 (1), 136-149 (2012).
  35. Kimmel, B. E., Heberlein, U., Rubin, G. M. The homeo domain protein rough is expressed in a subset of cells in the developing Drosophila eye where it can specify photoreceptor cell subtype. Genes Dev. 4 (5), 712-727 (1990).
  36. Dokucu, M. E., Zipursky, S. L., Cagan, R. L. Atonal, rough and the resolution of proneural clusters in the developing Drosophila retina. Development. 122 (12), 4139-4147 (1996).
  37. Kumar, J. P., Moses, K. M. EGF Receptor and Notch signaling act upstream of Eyeless/Pax6 to control eye specification. Cell. 104, 687-697 (2001).
check_url/pt/51792?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Spratford, C. M., Kumar, J. P. Dissection and Immunostaining of Imaginal Discs from Drosophila melanogaster. J. Vis. Exp. (91), e51792, doi:10.3791/51792 (2014).

View Video