Summary

Bedöma Sekretorisk Kapacitet på bukspottskörteln acinarceller

Published: August 28, 2014
doi:

Summary

Isolerade pankreas acini behåller sin in vivo morfologi och aktivitet och erbjuder kraftfulla sätt för att övervaka och manipulera utsöndring. Detta arbete visar hur acini kan isoleras från mus bukspottkörteln, och hur deras sekretoriska kapacitet kan bedömas.

Abstract

Bukspottkörtel acinarceller producerar och utsöndrar matsmältningsenzymer. Dessa celler är organiserade som ett kluster som bildar och delar en gemensam lumen. Detta arbete visar hur den sekretoriska kapaciteten av dessa celler kan bedömas genom odling av isolerade acini. Installationen är fördelaktigt eftersom isolerat acini, som behåller många egenskaper intakta exokrin pankreas kan manipuleras och övervakas lättare än i hela djuret. Korrekt isolering av pankreasacini är ett nyckelkrav, så att ex vivo kultur kommer att representera vilken typ av acini in vivo. Protokollet visar hur du isolera intakt acini från musen bukspottkörteln. Därefter två kompletterande metoder för att utvärdera pankreassekre presenteras. Den amylas sekre analysen fungerar som en global åtgärd, medan direkt avbildning av pankreassekre möjliggör karakterisering av sekre vid en sub-cellulär upplösning. Kollektivt ger de tekniker presented här möjliggör ett brett spektrum av experiment för att studera exokrin sekretion.

Introduction

Den exokrina bukspottkörteln utgör det mesta av massan av däggdjurs pankreas och är dedikerad till produktion och utsöndring av matsmältningsenzymer 1. Den funktionella enhet av exokrin pankreas, den acinus är ett kluster av epitelceller som bildar och delar en gemensam lumen. Vid hormonell eller neuronal stimulering är blåsor fyllda med enzymer transporteras till apikala cellytan, säkring med den och utvisa innehållet i lumen 1-3. De utsöndrade enzymer sedan rinna av en sammanslagnings uppsättning ledningar till tunntarmen, där de katalyserar nedbrytningen av maten till näringsämnen.

Denna video visar hur intakt acini isoleras från hela bukspottkörteln och hur deras sekretoriska kapacitet kan bedömas. Med hjälp av denna inställning är pankreassekre kvantifieras genom att mäta den relativa mängden av amylas som släpptes efter stimulering. Alternativt kan sekre avbildas levande med hjälp av olikasensorer och färgämnen.

Den ex vivo installationen av bukspottskörteln acini är fördelaktigt eftersom isolerat acini, som behåller många egenskaper intakta bukspottkörteln, kan manipuleras och övervakas lättare än i hela djuret 4-6. Denna inställning utvecklades ursprungligen i slutet av 1970-talet och var sedan förlängdes för att studera flera exokrina vävnader såsom spott och bröstkörtlar 3-7. Särskilt tillåter studiet av sekre med minimal störning av de komplexa cellulära organisationerna i dessa polariserade epitel.

Protocol

OBS: Rutiner som involverar djurförsök har godkänts av Institutional Animal Care och användning kommittén (IACUC) vid Weizmann Institute of Science. 1 Provberedning Isolering av pankreasacini Bered 300 ml färsk Krebs-Ringer bikarbonat HEPES (KRBH) medium innan du startar. Blanda 140 mM NaCl, 4,7 mM KCl, 1,16 mM MgCl2, 1 mM CaCl2, 11 mM glukos, 10 mM HEPES. Lägg bovint serumalbumin (BSA) och 0,1 mg / ml sojaböntrypsininhibitor (STI) (resuspens…

Representative Results

Bukspottkörtel acini som var isolerade korrekt visa ett stereotypt morfologi när den betraktas i genomlysning. Deras basolaterala domäner ska visas runt och saknar blebs. Den apikala domänen är omgiven av hundratals sekretoriska vesiklar och verkar mörkare i färgen (figur 2A, B). Kärnorna ligger basal till vesikulär området. Cell skräp och komponenter i bukspottskörteln duktal systemet och i det endokrina bukspottkörteln, som kan detekteras vid tidiga stadier av acini isolering (Fig…

Discussion

Förutom den ex vivo kultur, alternativa uppställningar för studiet av exokrin sekretion inkluderar intravital mikroskopi och mätning av fluider från den pankreatiska gången. Intravital mikroskopi visade sig fungera väl i musen spottkörtlarna 10. Denna metod kan spela utsöndring i realtid i det intakta djuret, men är begränsad i dess upplösning och genom anordningen för att manipulera den exokrina vävnaden. Bedöma utsöndring genom att samla vätskor från bukspottkörtelgången uppnåd…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete har finansierats genom ett bidrag från USA och Israel BSF till BS och EDSBS är ett kyrkoherde i Hilda och Cecil Lewis professur i molekylär genetik.

Materials

ICR mice Harlan Any strain will do
HBSS Sigma Aldrich H8264 Can substitude for KRB
BSA Sigma Aldrich A7906 Fraction V
Trypsin inhibitor Sigma Aldrich T9003
Collagenase XI  Sigma Aldrich C0130
Nylon mesh BD Falcon 352360 70-100µm
Amylase infinity reagent  Thermo TR25421
CCK Sigma Aldrich C2175
FM4-64 Lifetechnologies F34653 Diluted to 16µM
20mL scintillation vial Sigma Aldrich Z190527
DeltaVision system  Applied Precision Consisting of an inverted microscope IX71 equipped with 60x/1.4 or 100x/1.3 objectives (Olympus)
Zeiss 510 or 710 confocal microscope Zeiss 60x/1.4 or 100x/1.4 objectives 
Ultra Microplate reader BioTek ELx808

Referências

  1. Williams, J. A. Regulation of pancreatic acinar cell function. Current Opinion in Gastroenterology. 22, 498-504 (2006).
  2. Schnekenburger, J., et al. The role of kinesin, dynein and microtubules in pancreatic secretion. Cellular and Molecular Life Sciences : CMLS. 66, 2525-2537 (2009).
  3. Geron, E., Schejter, E. D., Shilo, B. Z. Directing exocrine secretory vesicles to the apical membrane by actin cables generated by the formin mDia1. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110, 10652-10657 (2013).
  4. Amsterdam, A., Jamieson, J. D. Structural and functional characterization of isolated pancreatic exocrine cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 69, 3028-3032 (1972).
  5. Williams, J. A., Korc, M., Dormer, R. L. Action of secretagogues on a new preparation of functionally intact, isolated pancreatic acini. The American journal of physiology. 235, 517-524 (1978).
  6. Jerdeva, G. V., et al. Actin and non-muscle myosin II facilitate apical exocytosis of tear proteins in rabbit lacrimal acinar epithelial cells. Journal of Cell Science. 118, 4797-4812 (2005).
  7. Menozzi, D., Jensen, R. T., Gardner, J. D. Dispersed pancreatic acinar cells and pancreatic acini. Methods in Enzymology. , 192-271 (1990).
  8. Bi, Y., Williams, J. A. A role for Rho and Rac in secretagogue-induced amylase release by pancreatic acini. Am J Physiol Cell Physiol. 289, C22-C32 (2005).
  9. Palade, G. Intracellular aspects of the process of protein synthesis. Science. 189, 867 (1975).
  10. Masedunskas, A., et al. Role for the actomyosin complex in regulated exocytosis revealed by intravital microscopy. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108, 13552-13557 (2011).
  11. Petersen, H., Grossman, M. I. Pancreatic exocrine secretion in anesthetized and conscious rats. The American Journal of Physiology. 233, E530-E536 (1977).
  12. Riedl, J., et al. Lifeact: a versatile marker to visualize F-actin. Nat Methods. 5, 605-607 (2008).
  13. Porat-Shliom, N., Milberg, O., Masedunskas, A., Weigert, R. Multiple roles for the actin cytoskeleton during regulated exocytosis. Cellular and Molecular Life Sciences : CMLS. 70, 2099-2121 (2013).
check_url/pt/51799?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Geron, E., Schejter, E. D., Shilo, B. Assessing the Secretory Capacity of Pancreatic Acinar Cells. J. Vis. Exp. (90), e51799, doi:10.3791/51799 (2014).

View Video