Summary

Bladder Smooth Muscle Strip Kontraktilitet som en metod för att utvärdera Lower Urinary Tract farmakologi

Published: August 18, 2014
doi:

Summary

Detta manuskript presenteras en enkel men kraftfull, in vitro-metod för utvärdering av glatt muskulatur kontraktilitet som svar på farmakologiska medel eller nervstimulering. Huvudsakliga användningsområden är drogscreening och förståelse vävnads fysiologi, farmakologi och patologi.

Abstract

Vi beskriver en in vitro-metod för att mäta blåsans glatta muskulatur kontraktilitet, och dess användning för att undersöka fysiologiska och farmakologiska egenskaperna hos den glatta muskulaturen samt förändringar inducerade av patologi. Denna metod ger viktig information för att förstå blåsfunktion samtidigt undvika större metodologiska svårigheterna med in vivo-experiment, såsom kirurgiska och farmakologiska manipulationer som påverkar stabiliteten och överlevnaden av preparaten, användning av mänsklig vävnad, och / eller användningen av dyra kemikalier. Det ger också ett sätt att undersöka egenskaperna för varje blåskomponent (dvs. glatt muskulatur, slemhinna, nerver) hos friska och patologiska tillstånd.

Den urinblåsan avlägsnas från en sövd djur, placerades i Krebs lösning och skars i remsor. Remsorna placeras i en kammare fylld med varm Krebs lösning. Den ena änden är fäst till en isometrisk tensidn omvandlare för att mäta sammandragning kraft, är den andra änden fäst till en fast stång. Tissue stimuleras genom att direkt lägga föreningar till badet eller från elektriska fält stimuleringselektroder som aktiverar nerver, liknande utlösande blåskontraktioner in vivo. Vi visar att användningen av denna metod för att utvärdera spontan glatt muskulatur kontraktilitet under utveckling och efter en experimentell ryggmärgsskada, vilken typ av neurotransmission (sändare och receptorer inblandade), faktorer som modulering av glatt muskulatur aktivitet, vilken roll enskilda blåskomponenter, och arter och skillnader organ som svar på farmakologiska medel. Dessutom kan den användas för att undersöka intracellulära signalvägar involverade i kontraktion och / eller avslappning av den glatta muskulaturen, drog struktur-aktivitetssamband och utvärdering av transmittorfrisättning.

Den in vitro-glatt muskel kontraktilitet metod har använts i stor omfattning for över 50 år och har lämnat uppgifter som kraftigt bidragit till vår förståelse av blåsfunktion samt läkemedelsutveckling av föreningar som för närvarande används kliniskt för blåsledningen.

Introduction

Blåsan glatta muskulaturen slappnar tillåta urin lagring och kontrakt för att framkalla eliminering urin. Avkoppling förmedlas av inneboende glatta muskelegenskaper och tonic frisättning av noradrenalin (NE) från de sympatiska nerver som aktiverar beta-adrenerga receptorer (β 3 pa i människa) i detrusor. Tömning sker genom att hämma sympatiska ingång och aktivera parasympatiska nerver som frigör ACh / ATP att ingå avtal blåsan glatt muskulatur 1. Många sjukdomstillstånd, inklusive hjärna och / eller ryggmärgsskada, neurodegenerativa sjukdomar, diabetes, urinblåsan utlopp obstruktion eller interstitiell cystit, kan i grunden förändra blåsfunktion, med allvarliga konsekvenser för patientens livskvalitet 2. Dessa förhållanden ändrar kontraktilitet i glatt muskulatur genom att påverka en eller flera komponenter i urinblåsan: den glatta muskulaturen, afferenta eller efferenta nerver och / ellerslemhinnan.

Flera in vivo och in vitro-metoder för att studera blåsfunktionen har utvecklats. In vivo är cystometri den primära mätningen av blåsfunktionen. Även om detta är en intakt beredning som möjliggör insamling av information enligt nära fysiologiska förhållanden, det finns ett antal omständigheter där användningen av glatt muskulatur remsor är att föredra. Dessa innefattar situationer då kirurgisk och / eller farmakologiska manipulationer skulle påverka överlevnad och preparatets stabilitet in vivo, eller när studierna kräver användning av mänskliga vävnader eller dyra kemikalier. Metoden underlättar också en undersökning av effekterna av droger, ålder och patologi på varje komponent i blåsan, dvs glatt muskulatur, slemhinna, afferenta och efferenta nerver.

Bladder remsor har använts under årens lopp av många grupper för att besvara ett antal vetenskapliga frågor. De användes för att evaluate förändringar i myogenic spontan aktivitet inducerad av patologi. Denna aktivitet tros bidra till ärendets brådskande karaktär och frekvens symtom på överaktiv blåsa (OAB), och är därför ett mål för läkemedel som utvecklas för OAB 3-9. Bladder remsor användes också för att undersöka myogena och neuronala faktorer som modulerar slät muskeltonus i syfte att upptäcka jonkanaler och / eller receptorer och / eller intracellulära signalvägar som kan riktade för att inducera antingen avkoppling eller sammandragning av glatt muskulatur 3,10- 13. Andra studier har fokuserat på den typ av neurotransmission, inklusive sändare och receptorer är inblandade och förändringar inducerade av patologi 14,15. Dessutom har metoden använts för jämförelser mellan vävnader från olika arter 16- 18, mellan organ 19-21 och utvärdering av läkemedels struktur-aktivitetssamband 22-24. En utvidgning av denna metod har använts för att MEASURe effekten av droger på transmittorfrisättning från efferenta nerver 25. Dessutom en mängd olika vävnader (urinblåsa, urinrör, mag-tarmkanalen, GI) skördas från djur eller människor (från operationer eller organdonatorvävnad godkända för forskning) och från en mängd olika djurmodeller, inklusive ryggmärgsskada (SCI), urinblåsan utlopp obstruktion (BOO) eller interstitiell cystit (IC) kan undersökas med hjälp av denna teknik.

I denna uppsats belyser vi användning av denna metod tillsammans med nödvändiga experimentella protokoll, ta upp flera vetenskapliga frågor som nämns ovan.

Protocol

Alla förfaranden som beskrivs här är godkända av IACUC kommittén vid University of Pittsburgh. 1. Lösningar Bered Krebs lösning enligt receptet. Sammansättning i mM: NaCl 118, KCl 4,7, CaCl2 1,9, MgSO 4 1.2, NaHCO 3 24,9, KH 2 PO 4 1.2, dextros 11.7. Lufta Krebs med 95% O2, 5% CO2 och placera den i ett 37 ° C vattenbad för att användas under hela experimentet. Placera undan ~ 200 ml l…

Representative Results

Spontan Myogenic Aktivitet Spontan myogena aktivitet är en viktig glatt muskulatur egenskap som genomgår förändringar med postnatal utveckling 6-9 och patologi (t.ex. SCI, BOO) 3-5. Eftersom denna verksamhet anses bidra till symtom på överaktiv blåsa (OAB) 2, är av stort intresse för att utveckla effektiva behandlingar för OAB och andra glatta muskel dysfunktioner en utvärdering av receptorer, intracellulära signalvägar …

Discussion

I denna uppsats beskrev vi en enkel in vitro glatt muskulatur kontraktilitet metod som kan användas för att ta itu med ett antal viktiga vetenskapliga frågor som rör urinblåsan fysiologi och patologi, samt medhjälp upptäckten av nya läkemedel för behandling av urinblåsan dysfunktioner. Vi har illustrerat att använda denna metod för att bedöma utvecklings, patologiska och farmakologiska egenskaper blåsan glatt muskulatur kontraktilitet (figurer 2-4), neurotransmission modulation <s…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denna studie stöddes av NIH R37 DK54824 och R01 DK57284 bidrag till LB.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Equipment
Tissue Bath System with Reservoir Radnoti, LLC 159920 isolated tissue baths
Warm water recirculator pump Kent Scientific Corporation  TPZ-749 to keep tissue baths to 37 C
Computer
Data Acquisiton System DataQ Instruments DI-710-UH To view, record and analyze data
Transbridge Transducer Amplifier World Precision Instruments SYS-TBM4M Transducer amplifier
Grass stimulator Grass Technologies Model S88 Stimulator
Anesthesia System Kent Scientific Corporation  ACV-1205S To anesthetesize the animal
Anesthetizing Box Harvard Apparatus 500116 To anesthetesize the animal
Anesthesia Masks Kent Scientific Corporation  AC-09508 To anesthetesize the animal
Materials and surgical instruments
sylgard Dow Corning Corp 184 SIL ELAST KIT To pin, dissect & cut tissue
Petri Dish Corning 3160-152 To dissect/cut tissue
Insect Pins ENTOMORAVIA Austerlitz Insect Pins Size 5 To pin tissue
Bench Pad VWR International 56617-014 Absorbent bench underpads
Rat surgical Kit Kent Scientific Corporation  INSRATKIT To remove and dissect tissue
2 Dumont #3 Forceps Kent Scientific Corporation  INS500064 To remove and dissect tissue
Tissue Forceps Kent Scientific Corporation  INS500092 To remove and dissect tissue
Scalpel Kent Scientific Corporation  INS500236 To remove and dissect tissue
Scalpel blade Kent Scientific Corporation  INS500239 To remove and dissect tissue
Professional Clipper  Braintree Scientific, Inc. CLP-223 45 To remove fur
Suture Thread Fine Science Tools 18020-50 Tie tissue
Tissue Clips Radnoti, LLC 158802 Attach tissue to rod/transducer
1g weight  Mettler Toledo 11119525 For transducer calibration
Chemicals
Krebs Solution:                             Sodium Chloride
Potassium Chloride
Monobasic Potassium Phosphate
Magnesium Sulfate
Dextrose
Sodium Bicarbonate
Calcium Chloride
Magnesium Chloride
Sigma                                   
Fisher
Fisher
Fisher
Fisher
Sigma
EMD
Baker
                                S7653
P217-500
P285-3
M65-500
D16-500
S5761
CX0130-2
2444
To prepare Krebs solution
Isoflurane Henry Schein 029405 To anesthetesize the animal
 Oxygen tank Matheson Tri Gas ox251 To use with anesthesia system
Carbogen Tank (95% Oxygen; 5% Carbon Dioxide)  Matheson Tri Gas Moxn00hn36D To aerate Krebs solutions

Referências

  1. Fowler, C. J., Griffiths, D., de Groat, W. C. The neural control of micturition. Nat Rev Neurosci. 9, 453-466 (2008).
  2. Andersson, K. E. Detrusor myocyte activity and afferent signaling. Neurourol Urodyn. 29, 97-106 (2010).
  3. Artim, D. E., et al. Developmental and spinal cord injury-induced changes in nitric oxide-mediated inhibition in rat urinary bladder. Neurourology and urodynamics. 30, 1666-1674 (2011).
  4. Kita, M., et al. Effects of bladder outlet obstruction on properties of Ca2+-activated K+ channels in rat bladder. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 298, 1310-1319 (2010).
  5. Barendrecht, M. M., et al. The effect of bladder outlet obstruction on alpha1- and beta-adrenoceptor expression and function. Neurourol Urodyn. 28, 349-355 (2009).
  6. Maggi, C. A., Santicioli, P., Meli, A. Postnatal development of myogenic contractile activity and excitatory innervation of rat urinary bladder. The American journal of physiology. 247, 972-978 (1984).
  7. Ng, Y. K., de Groat, W. C., Wu, H. Y. Smooth muscle and neural mechanisms contributing to the downregulation of neonatal rat spontaneous bladder contractions during postnatal development. American journal of physiology. Regulatory, integrative and comparative physiology. 292, 2100-2112 (2007).
  8. Szell, E. A., Somogyi, G. T., de Groat, W. C., Szigeti, G. P. Developmental changes in spontaneous smooth muscle activity in the neonatal rat urinary bladder. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 285, 809-816 (2003).
  9. Szigeti, G. P., Somogyi, G. T., Csernoch, L., Szell, E. A. Age-dependence of the spontaneous activity of the rat urinary bladder. J Muscle Res Cell Motil. 26, 23-29 (2005).
  10. Frazier, E. P., Braverman, A. S., Peters, S. L., Michel, M. C., Ruggieri, M. R. Does phospholipase C mediate muscarinic receptor-induced rat urinary bladder contraction. The Journal of pharmacology and experimental therapeutics. 322, 998-1002 (2007).
  11. Xin, W., Soder, R. P., Cheng, Q., Rovner, E. S., Petkov, G. V. Selective inhibition of phosphodiesterase 1 relaxes urinary bladder smooth muscle: role for ryanodine receptor-mediated BK channel activation. American journal of physiology. Cell physiology. 303, 1079-1089 (2012).
  12. Frazier, E. P., Peters, S. L., Braverman, A. S., Ruggieri, M. R., Michel, M. C. Signal transduction underlying the control of urinary bladder smooth muscle tone by muscarinic receptors and beta-adrenoceptors. Naunyn-Schmiedeberg’s archives of pharmacology. 377, 449-462 (2008).
  13. Svalo, J., et al. The novel beta3-adrenoceptor agonist mirabegron reduces carbachol-induced contractile activity in detrusor tissue from patients with bladder outflow obstruction with or without detrusor overactivity. European journal of pharmacology. 699, 101-105 (2013).
  14. Yokota, T., Yamaguchi, O. Changes in cholinergic and purinergic neurotransmission in pathologic bladder of chronic spinal rabbit. J Urol. 156, 1862-1866 (1996).
  15. Bayliss, M., Wu, C., Newgreen, D., Mundy, A. R., Fry, C. H. A quantitative study of atropine-resistant contractile responses in human detrusor smooth muscle, from stable, unstable and obstructed bladders. J Urol. 162, 1833-1839 (1999).
  16. Kullmann, F. A., McKenna, D., Wells, G. I., Thor, K. B. Functional bombesin receptors in urinary tract of rats and human but not of pigs and mice, an in vitro study. Neuropeptides. 47, 305-313 (2013).
  17. Sadananda, P., Kao, F. C., Liu, L., Mansfield, K. J., Burcher, E. Acid and stretch, but not capsaicin, are effective stimuli for ATP release in the porcine bladder mucosa: Are ASIC and TRPV1 receptors involved. European journal of pharmacology. 683, 252-259 (2012).
  18. Maggi, C. A., et al. Species-related variations in the effects of capsaicin on urinary bladder functions: relation to bladder content of substance P-like immunoreactivity. Naunyn-Schmiedeberg’s archives of pharmacology. 336, 546-555 (1987).
  19. Kullmann, F. A., et al. Effects of the 5-HT4 receptor agonist, cisapride, on neuronally evoked responses in human bladder, urethra, and ileum. Autonomic neuroscience : basic & clinical. 176, 70-77 (2013).
  20. Warner, F. J., Miller, R. C., Burcher, E. Human tachykinin NK2 receptor: a comparative study of the colon and urinary bladder. Clin Exp Pharmacol Physiol. 30, 632-639 (2003).
  21. Zoubek, J., Somogyi, G. T., De Groat, W. C. A comparison of inhibitory effects of neuropeptide Y on rat urinary bladder, urethra, and vas deferens. The American journal of physiology. 265, 537-543 (1993).
  22. Warner, F. J., Miller, R. C., Burcher, E. Structure-activity relationship of neurokinin A(4-10) at the human tachykinin NK(2) receptor: the effect of amino acid substitutions on receptor affinity and function. Biochem Pharmacol. 63, 2181-2186 (2002).
  23. Warner, F. J., Mack, P., Comis, A., Miller, R. C., Burcher, E. Structure-activity relationships of neurokinin A (4-10) at the human tachykinin NK(2) receptor: the role of natural residues and their chirality. Biochem Pharmacol. 61, 55-60 (2001).
  24. Dion, S., et al. Structure-activity study of neurokinins: antagonists for the neurokinin-2 receptor. Pharmacology. 41, 184-194 (1990).
  25. Somogyi, G. T., Zernova, G. V., Yoshiyama, M., Yamamoto, T., de Groat, W. C. Frequency dependence of muscarinic facilitation of transmitter release in urinary bladder strips from neurally intact or chronic spinal cord transected rats. British journal of pharmacology. 125, 241-246 (1998).
  26. Andersson, K. E., Wein, A. J. Pharmacology of the lower urinary tract: basis for current and future treatments of urinary incontinence. Pharmacological reviews. 56, 581-631 (2004).
  27. D’Agostino, G., Condino, A. M., Gallinari, P., Franceschetti, G. P., Tonini, M. Characterization of prejunctional serotonin receptors modulating [3H]acetylcholine release in the human detrusor. The Journal of pharmacology and experimental therapeutics. 316, 129-135 (2006).
  28. Hawthorn, M. H., Chapple, C. R., Cock, M., Chess-Williams, R. Urothelium-derived inhibitory factor(s) influences on detrusor muscle contractility in vitro. British journal of pharmacology. 129, 416-419 (2000).
  29. Chaiyaprasithi, B., Mang, C. F., Kilbinger, H., Hohenfellner, M. Inhibition of human detrusor contraction by a urothelium derived factor. J Urol. 170, 1897-1900 (2003).
  30. Testa, R., et al. Effect of different 5-hydroxytryptamine receptor subtype antagonists on the micturition reflex in rats. BJU international. 87, 256-264 (2001).
  31. Craggs, M. D., Rushton, D. N., Stephenson, J. D. A putative non-cholinergic mechanism in urinary bladders of New but not Old World primates. J Urol. 136, 1348-1350 (1986).
  32. Fry, C. H., Bayliss, M., Young, J. S., Hussain, M. Influence of age and bladder dysfunction on the contractile properties of isolated human detrusor smooth muscle. BJU international. 108, 91-96 (2011).
  33. Kennedy, C., Tasker, P. N., Gallacher, G., Westfall, T. D. Identification of atropine- and P2X1 receptor antagonist-resistant, neurogenic contractions of the urinary bladder. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 27, 845-851 (2007).
  34. Levin, R. M., Danek, M., Whitbeck, C., Haugaard, N. Effect of ethanol on the response of the rat urinary bladder to in vitro ischemia: protective effect of alpha-lipoic acid. Molecular and cellular biochemistry. 271, 133-138 (2005).
  35. Malysz, J., Afeli, S. A., Provence, A., Petkov, G. V. Ethanol-mediated relaxation of guinea pig urinary bladder smooth muscle: Involvement of BK and L-type Ca2+ channels. American journal of physiology. Cell physiology. 306, 45-58 (2013).
  36. Longhurst, P. A., Briscoe, J. A., Rosenberg, D. J., Leggett, R. E. The role of cyclic nucleotides in guinea-pig bladder contractility. British journal of pharmacology. 121, 1665-1672 (1997).
  37. Takahashi, R., Yunoki, T., Naito, S., Yoshimura, N. Differential effects of botulinum neurotoxin A on bladder contractile responses to activation of efferent nerves, smooth muscles and afferent nerves in rats. J Urol. 188, 1993-1999 (2012).
  38. Sadananda, P., Chess-Williams, R., Burcher, E. Contractile properties of the pig bladder mucosa in response to neurokinin A: a role for myofibroblasts. British journal of pharmacology. 153, 1465-1473 (2008).
  39. Liu, G., Daneshgari, F. Alterations in neurogenically mediated contractile responses of urinary bladder in rats with diabetes. American journal of physiology. Renal physiology. 288, 1220-1226 (2005).
check_url/pt/51807?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Kullmann, F. A., Daugherty, S. L., de Groat, W. C., Birder, L. A. Bladder Smooth Muscle Strip Contractility as a Method to Evaluate Lower Urinary Tract Pharmacology. J. Vis. Exp. (90), e51807, doi:10.3791/51807 (2014).

View Video