Summary

Glat muskulatur i blæren Strip Kontraktilitet som en metode til at evaluere nedre urinveje Farmakologi

Published: August 18, 2014
doi:

Summary

Dette håndskrift præsenterer en enkel, men kraftfuld, in vitro-metode til evaluering af den glatte muskulatur kontraktilitet som reaktion på farmakologiske midler eller nerve stimulation. Vigtigste anvendelser er narkotika screening og forståelse væv fysiologi, farmakologi og patologi.

Abstract

Vi beskriver en in vitro-metode til måling af glat muskulatur i blæren kontraktilitet og dets anvendelse til undersøgelse af fysiologiske og farmakologiske egenskaber af den glatte muskulatur samt ændringer induceret af patologi. Denne metode giver vigtige oplysninger for forståelsen af blære funktion, mens overvinde væsentlige metodologiske vanskeligheder i in vivo forsøg, såsom kirurgiske og farmakologiske manipulationer, der påvirker stabiliteten og overlevelsen af de præparater, anvendelse af humant væv og / eller brug af dyre kemikalier. Det giver også en måde at undersøge egenskaberne for hver enkelt blære komponent (dvs. glat muskulatur, slimhinder, nerver) hos raske og patologiske tilstande.

Urinblæren fjernes fra et bedøvet dyr, anbringes i Krebs-opløsning og skåret i strimler. Strimlerne anbringes i et kammer fyldt med varm Krebs-opløsning. Den ene ende er fastgjort til en isometrisk overfladeaktivitetn transducer til at måle kontraktion kraft, den anden ende fastgjort til en fast stang. Væv stimuleres ved direkte tilsætning af forbindelser til badet eller ved elektrisk feltstimulering elektroder, der aktiverer nerver, svarende til udløsning blærekontraktioner in vivo. Vi demonstrere brugen af ​​denne metode til at evaluere spontan glatte muskler kontraktilitet under udviklingen og efter en eksperimentel rygmarvsskade, arten af ​​neurotransmission (sendere og receptorer, der er involveret), faktorer involveret i modulering af glatte muskel aktivitet, rolle enkelte blære komponenter og arter og orgel forskelle i respons på farmakologiske midler. Derudover kan det bruges til at undersøge intracellulære signalveje involveret i sammentrækning og / eller afslapning af den glatte muskulatur, narkotika struktur-aktivitet-relationer og evaluering af senderen udgivelse.

In vitro-glat muskel kontraktilitet metode har været anvendt i udstrakt grad for over 50 år, og har leveret data, der væsentligt har bidraget til vores forståelse af blære funktion samt til farmaceutisk udvikling af forbindelser i øjeblikket anvendes klinisk til blære ledelse.

Introduction

Blæren glatte muskulatur slapper at tillade urin opbevaring og kontrakter for at fremkalde urin elimination. Afslapning er medieret af iboende glatte muskelceller egenskaber og tonic frigørelse af noradrenalin (NA) fra de sympatiske nerver, som aktiverer beta-adrenerge receptorer (β 3 AR i menneskelig) i detrusor. Voiding opnås ved at hæmme sympatisk input og aktivere det parasympatiske nerver, der frigiver ACh / ATP til sammentrække glat muskulatur i blæren 1. Talrige patologiske tilstande, herunder hjerne og / eller rygmarvsskade, neurodegenerative sygdomme, diabetes, blæreafløbshindring eller interstitiel cystitis, kan dybt ændre blære funktion, med alvorlig indvirkning på patientens livskvalitet 2. Disse betingelser ændrer kontraktilitet af den glatte muskulatur ved at påvirke en eller flere komponenter i blæren: den glatte muskulatur, afferente eller efferente nerver og / ellerslimhinde.

Adskillige in vivo og in vitro metoder til at studere blære funktion er blevet udviklet. In vivo cystometry er den primære måling af blærefunktion. Selvom dette er et intakt præparat, der tillader indsamling af oplysninger under tæt på fysiologiske betingelser, er der en række forhold, hvor brugen af ​​glatte muskelceller strimler foretrækkes. Disse omfatter situationer, hvor kirurgisk og / eller farmakologiske manipulationer kan påvirke overlevelse og stabilitet in vivo forberedelse, eller når undersøgelser vil kræve anvendelse af humant væv eller dyre kemikalier. Denne metode fremmer også en undersøgelse af virkningerne af narkotika, alder og patologi på hver komponent af blæren, dvs glat muskulatur, slimhinder, afferent og efferente nerver.

Blære strimler har været beskæftiget i årenes løb af mange grupper til at besvare en række videnskabelige spørgsmål. De blev anvendt til at evaluate ændringer i myogene spontan aktivitet induceret af patologi. Denne aktivitet menes at medvirke til, hvor meget og frekvens symptomer på overaktiv blære (OAB), og er derfor et mål for lægemidler, der udvikles til OAB 3-9. Blære strimler blev også brugt til at undersøge myogene og neuronale faktorer, der modulerer glat muskel-tonus med det formål at opdage ionkanaler og / eller receptorer, og / eller intracellulære signalveje, der kan målrettes til at inducere enten afslapning eller sammentrækning af den glatte muskulatur 3,10- 13. Andre undersøgelser har fokuseret på arten af neurotransmission, herunder sendere og receptorer involveret og ændringer induceret af patologi 14,15. Desuden er metoden blevet brugt til sammenligninger mellem væv fra forskellige arter 16- 18, mellem organerne 19-21, samt evaluering af narkotika struktur-aktivitets relationer 22-24. En udvidelse af denne fremgangsmåde er blevet anvendt til measure effekten af lægemidler på senderen frigivelse fra efferente nerver 25. Endvidere en række forskellige væv (blære, urinrøret, mave-tarmkanalen, GI) høstet fra dyr eller mennesker (fra kirurgi eller organdonor væv godkendt til forskning) og fra en række forskellige dyremodeller, herunder rygmarvsskade (SCI), blæreafløbshindring (BOO) eller interstitiel cystitis (IC) kan undersøges ved hjælp af denne teknik.

I dette papir vil vi illustrere brugen af ​​denne metode sammen med de nødvendige forsøgsprotokoller, til at behandle en række videnskabelige spørgsmål, der er nævnt ovenfor.

Protocol

Alle procedurer er beskrevet her, er godkendt af IACUC udvalget på University of Pittsburgh. 1. Opløsninger Forbered Krebs-opløsning i henhold til opskriften. Sammensætning i mM: NaCI 118, KCI 4,7, CaCl2 1,9, MgSO4 1,2, NaHCO3 24,9 KH 2 PO4 1,2, dextrose 11,7. Luftes Krebs med 95% O 2, 5% CO2 og placere den i et 37 ° C vandbad skal anvendes i hele eksperimentet. Placer side ~ 200 ml beluftet Krebs-opl…

Representative Results

Spontan Myogenic aktivitet Spontan myogenic aktivitet er en vigtig glatte muskulatur egenskab, der gennemgår ændringer med postnatal udvikling 6-9 og patologi (fx SCI, BOO) 3-5. Fordi denne aktivitet menes at bidrage til symptomerne på overaktiv blære (OAB) 2, er en evaluering af receptorer, intracellulære signalveje og farmakologiske midler, som modulerer det, af stor interesse for at udvikle effektive behandlinger for OAB og a…

Discussion

I dette papir, vi beskrev en simpel in vitro glat muskel kontraktilitet metode, der kan bruges til at løse en række vigtige videnskabelige spørgsmål i forbindelse med blære fysiologi og patologi, samt medvirken til opdagelsen af nye lægemidler til behandling af blære dysfunktioner. Vi har illustreret brugen af denne metode til vurdering af udviklingsmæssige, patologiske og farmakologiske egenskaber af glat muskulatur i blæren kontraktilitet (figur 2-4), neurotransmission modulation <st…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne undersøgelse blev støttet af NIH R37 DK54824 og R01 DK57284 tilskud til LB.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Equipment
Tissue Bath System with Reservoir Radnoti, LLC 159920 isolated tissue baths
Warm water recirculator pump Kent Scientific Corporation  TPZ-749 to keep tissue baths to 37 C
Computer
Data Acquisiton System DataQ Instruments DI-710-UH To view, record and analyze data
Transbridge Transducer Amplifier World Precision Instruments SYS-TBM4M Transducer amplifier
Grass stimulator Grass Technologies Model S88 Stimulator
Anesthesia System Kent Scientific Corporation  ACV-1205S To anesthetesize the animal
Anesthetizing Box Harvard Apparatus 500116 To anesthetesize the animal
Anesthesia Masks Kent Scientific Corporation  AC-09508 To anesthetesize the animal
Materials and surgical instruments
sylgard Dow Corning Corp 184 SIL ELAST KIT To pin, dissect & cut tissue
Petri Dish Corning 3160-152 To dissect/cut tissue
Insect Pins ENTOMORAVIA Austerlitz Insect Pins Size 5 To pin tissue
Bench Pad VWR International 56617-014 Absorbent bench underpads
Rat surgical Kit Kent Scientific Corporation  INSRATKIT To remove and dissect tissue
2 Dumont #3 Forceps Kent Scientific Corporation  INS500064 To remove and dissect tissue
Tissue Forceps Kent Scientific Corporation  INS500092 To remove and dissect tissue
Scalpel Kent Scientific Corporation  INS500236 To remove and dissect tissue
Scalpel blade Kent Scientific Corporation  INS500239 To remove and dissect tissue
Professional Clipper  Braintree Scientific, Inc. CLP-223 45 To remove fur
Suture Thread Fine Science Tools 18020-50 Tie tissue
Tissue Clips Radnoti, LLC 158802 Attach tissue to rod/transducer
1g weight  Mettler Toledo 11119525 For transducer calibration
Chemicals
Krebs Solution:                             Sodium Chloride
Potassium Chloride
Monobasic Potassium Phosphate
Magnesium Sulfate
Dextrose
Sodium Bicarbonate
Calcium Chloride
Magnesium Chloride
Sigma                                   
Fisher
Fisher
Fisher
Fisher
Sigma
EMD
Baker
                                S7653
P217-500
P285-3
M65-500
D16-500
S5761
CX0130-2
2444
To prepare Krebs solution
Isoflurane Henry Schein 029405 To anesthetesize the animal
 Oxygen tank Matheson Tri Gas ox251 To use with anesthesia system
Carbogen Tank (95% Oxygen; 5% Carbon Dioxide)  Matheson Tri Gas Moxn00hn36D To aerate Krebs solutions

Referências

  1. Fowler, C. J., Griffiths, D., de Groat, W. C. The neural control of micturition. Nat Rev Neurosci. 9, 453-466 (2008).
  2. Andersson, K. E. Detrusor myocyte activity and afferent signaling. Neurourol Urodyn. 29, 97-106 (2010).
  3. Artim, D. E., et al. Developmental and spinal cord injury-induced changes in nitric oxide-mediated inhibition in rat urinary bladder. Neurourology and urodynamics. 30, 1666-1674 (2011).
  4. Kita, M., et al. Effects of bladder outlet obstruction on properties of Ca2+-activated K+ channels in rat bladder. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 298, 1310-1319 (2010).
  5. Barendrecht, M. M., et al. The effect of bladder outlet obstruction on alpha1- and beta-adrenoceptor expression and function. Neurourol Urodyn. 28, 349-355 (2009).
  6. Maggi, C. A., Santicioli, P., Meli, A. Postnatal development of myogenic contractile activity and excitatory innervation of rat urinary bladder. The American journal of physiology. 247, 972-978 (1984).
  7. Ng, Y. K., de Groat, W. C., Wu, H. Y. Smooth muscle and neural mechanisms contributing to the downregulation of neonatal rat spontaneous bladder contractions during postnatal development. American journal of physiology. Regulatory, integrative and comparative physiology. 292, 2100-2112 (2007).
  8. Szell, E. A., Somogyi, G. T., de Groat, W. C., Szigeti, G. P. Developmental changes in spontaneous smooth muscle activity in the neonatal rat urinary bladder. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 285, 809-816 (2003).
  9. Szigeti, G. P., Somogyi, G. T., Csernoch, L., Szell, E. A. Age-dependence of the spontaneous activity of the rat urinary bladder. J Muscle Res Cell Motil. 26, 23-29 (2005).
  10. Frazier, E. P., Braverman, A. S., Peters, S. L., Michel, M. C., Ruggieri, M. R. Does phospholipase C mediate muscarinic receptor-induced rat urinary bladder contraction. The Journal of pharmacology and experimental therapeutics. 322, 998-1002 (2007).
  11. Xin, W., Soder, R. P., Cheng, Q., Rovner, E. S., Petkov, G. V. Selective inhibition of phosphodiesterase 1 relaxes urinary bladder smooth muscle: role for ryanodine receptor-mediated BK channel activation. American journal of physiology. Cell physiology. 303, 1079-1089 (2012).
  12. Frazier, E. P., Peters, S. L., Braverman, A. S., Ruggieri, M. R., Michel, M. C. Signal transduction underlying the control of urinary bladder smooth muscle tone by muscarinic receptors and beta-adrenoceptors. Naunyn-Schmiedeberg’s archives of pharmacology. 377, 449-462 (2008).
  13. Svalo, J., et al. The novel beta3-adrenoceptor agonist mirabegron reduces carbachol-induced contractile activity in detrusor tissue from patients with bladder outflow obstruction with or without detrusor overactivity. European journal of pharmacology. 699, 101-105 (2013).
  14. Yokota, T., Yamaguchi, O. Changes in cholinergic and purinergic neurotransmission in pathologic bladder of chronic spinal rabbit. J Urol. 156, 1862-1866 (1996).
  15. Bayliss, M., Wu, C., Newgreen, D., Mundy, A. R., Fry, C. H. A quantitative study of atropine-resistant contractile responses in human detrusor smooth muscle, from stable, unstable and obstructed bladders. J Urol. 162, 1833-1839 (1999).
  16. Kullmann, F. A., McKenna, D., Wells, G. I., Thor, K. B. Functional bombesin receptors in urinary tract of rats and human but not of pigs and mice, an in vitro study. Neuropeptides. 47, 305-313 (2013).
  17. Sadananda, P., Kao, F. C., Liu, L., Mansfield, K. J., Burcher, E. Acid and stretch, but not capsaicin, are effective stimuli for ATP release in the porcine bladder mucosa: Are ASIC and TRPV1 receptors involved. European journal of pharmacology. 683, 252-259 (2012).
  18. Maggi, C. A., et al. Species-related variations in the effects of capsaicin on urinary bladder functions: relation to bladder content of substance P-like immunoreactivity. Naunyn-Schmiedeberg’s archives of pharmacology. 336, 546-555 (1987).
  19. Kullmann, F. A., et al. Effects of the 5-HT4 receptor agonist, cisapride, on neuronally evoked responses in human bladder, urethra, and ileum. Autonomic neuroscience : basic & clinical. 176, 70-77 (2013).
  20. Warner, F. J., Miller, R. C., Burcher, E. Human tachykinin NK2 receptor: a comparative study of the colon and urinary bladder. Clin Exp Pharmacol Physiol. 30, 632-639 (2003).
  21. Zoubek, J., Somogyi, G. T., De Groat, W. C. A comparison of inhibitory effects of neuropeptide Y on rat urinary bladder, urethra, and vas deferens. The American journal of physiology. 265, 537-543 (1993).
  22. Warner, F. J., Miller, R. C., Burcher, E. Structure-activity relationship of neurokinin A(4-10) at the human tachykinin NK(2) receptor: the effect of amino acid substitutions on receptor affinity and function. Biochem Pharmacol. 63, 2181-2186 (2002).
  23. Warner, F. J., Mack, P., Comis, A., Miller, R. C., Burcher, E. Structure-activity relationships of neurokinin A (4-10) at the human tachykinin NK(2) receptor: the role of natural residues and their chirality. Biochem Pharmacol. 61, 55-60 (2001).
  24. Dion, S., et al. Structure-activity study of neurokinins: antagonists for the neurokinin-2 receptor. Pharmacology. 41, 184-194 (1990).
  25. Somogyi, G. T., Zernova, G. V., Yoshiyama, M., Yamamoto, T., de Groat, W. C. Frequency dependence of muscarinic facilitation of transmitter release in urinary bladder strips from neurally intact or chronic spinal cord transected rats. British journal of pharmacology. 125, 241-246 (1998).
  26. Andersson, K. E., Wein, A. J. Pharmacology of the lower urinary tract: basis for current and future treatments of urinary incontinence. Pharmacological reviews. 56, 581-631 (2004).
  27. D’Agostino, G., Condino, A. M., Gallinari, P., Franceschetti, G. P., Tonini, M. Characterization of prejunctional serotonin receptors modulating [3H]acetylcholine release in the human detrusor. The Journal of pharmacology and experimental therapeutics. 316, 129-135 (2006).
  28. Hawthorn, M. H., Chapple, C. R., Cock, M., Chess-Williams, R. Urothelium-derived inhibitory factor(s) influences on detrusor muscle contractility in vitro. British journal of pharmacology. 129, 416-419 (2000).
  29. Chaiyaprasithi, B., Mang, C. F., Kilbinger, H., Hohenfellner, M. Inhibition of human detrusor contraction by a urothelium derived factor. J Urol. 170, 1897-1900 (2003).
  30. Testa, R., et al. Effect of different 5-hydroxytryptamine receptor subtype antagonists on the micturition reflex in rats. BJU international. 87, 256-264 (2001).
  31. Craggs, M. D., Rushton, D. N., Stephenson, J. D. A putative non-cholinergic mechanism in urinary bladders of New but not Old World primates. J Urol. 136, 1348-1350 (1986).
  32. Fry, C. H., Bayliss, M., Young, J. S., Hussain, M. Influence of age and bladder dysfunction on the contractile properties of isolated human detrusor smooth muscle. BJU international. 108, 91-96 (2011).
  33. Kennedy, C., Tasker, P. N., Gallacher, G., Westfall, T. D. Identification of atropine- and P2X1 receptor antagonist-resistant, neurogenic contractions of the urinary bladder. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 27, 845-851 (2007).
  34. Levin, R. M., Danek, M., Whitbeck, C., Haugaard, N. Effect of ethanol on the response of the rat urinary bladder to in vitro ischemia: protective effect of alpha-lipoic acid. Molecular and cellular biochemistry. 271, 133-138 (2005).
  35. Malysz, J., Afeli, S. A., Provence, A., Petkov, G. V. Ethanol-mediated relaxation of guinea pig urinary bladder smooth muscle: Involvement of BK and L-type Ca2+ channels. American journal of physiology. Cell physiology. 306, 45-58 (2013).
  36. Longhurst, P. A., Briscoe, J. A., Rosenberg, D. J., Leggett, R. E. The role of cyclic nucleotides in guinea-pig bladder contractility. British journal of pharmacology. 121, 1665-1672 (1997).
  37. Takahashi, R., Yunoki, T., Naito, S., Yoshimura, N. Differential effects of botulinum neurotoxin A on bladder contractile responses to activation of efferent nerves, smooth muscles and afferent nerves in rats. J Urol. 188, 1993-1999 (2012).
  38. Sadananda, P., Chess-Williams, R., Burcher, E. Contractile properties of the pig bladder mucosa in response to neurokinin A: a role for myofibroblasts. British journal of pharmacology. 153, 1465-1473 (2008).
  39. Liu, G., Daneshgari, F. Alterations in neurogenically mediated contractile responses of urinary bladder in rats with diabetes. American journal of physiology. Renal physiology. 288, 1220-1226 (2005).

Play Video

Citar este artigo
Kullmann, F. A., Daugherty, S. L., de Groat, W. C., Birder, L. A. Bladder Smooth Muscle Strip Contractility as a Method to Evaluate Lower Urinary Tract Pharmacology. J. Vis. Exp. (90), e51807, doi:10.3791/51807 (2014).

View Video