פרוטוקול זה מתאר את השימוש בזיזי סיליקון microscale כמשטחי תרבות גמישים למדידת ההתכווצות של תאי שריר במבחנה. התכווצות סלולרית גורמת לכיפוף שלוחה, הניתן למדידה, נרשם, והוסב לקריאות כוח, מתן מערכת לא פולשנית וניתן להרחבה למדידת תפקוד התכווצות במבחנה.
הפיתוח של מבחני חוץ גופייה יותר חזוי ורלוונטיים מבחינה ביולוגית מתבסס על קידום מערכות תרבית תאים צדדי המאפשרות הערכה התפקודית של תאי זרע. לשם כך, טכנולוגית שלוחה microscale מציעה פלטפורמה שבה למדוד את הפונקציונליות ההתכווצות של מגוון רחב של סוגי תאים, כוללים שלד, לב, ותאי שריר חלק, דרך הערכת מצע התכווצות מושרה כיפוף. יישום של מערכי שלוחה ריבוב מספק את האמצעים לפיתוח מתון לפרוטוקולי תפוקה גבוהה להערכת יעילות תרופה ורעילות, פנוטיפ מחלה והתקדמות, כמו גם יחסי גומלין תוקפת ותאי תאים אחרים. כתב יד זה מספק פרטים עבור בודה מערכי שלוחה אמינות למטרה זו, ושיטות הנדרשות להצלחת תאי תרבות על משטחים אלה. תיאור נוסף מסופק על הצעדים דרושים כדי לבצע אנאלי פונקציונלייסיס של סוגי תאי התכווצות שמר על מערכים כאלה באמצעות מערכת פוטו וגלאי לייזר ורומן. נתוני הנציג סיפקו רגעי שיא הדיוק והטבע לשחזור של הניתוח של פונקצית התכווצות אפשרית באמצעות מערכת זו, כמו גם מגוון הרחב של מחקרים שלטכנולוגיה כזו יכולה להיות מיושמת. אימוץ נרחב מוצלח של מערכת זו יכול לספק לחוקרים את האמצעים לבצע מחקרים תפקודיים מהירים, עלות נמוכה במבחנה, שמוביל לתחזיות מדויקות יותר של ביצועי רקמות, התפתחות מחלה ותגובה לטיפול טיפולי חדשני.
The in vitro culture of muscle cells from both human and rodent sources has been possible for decades1,2. However, while standard coverslip preparations are useful for biochemical assessment, they do not facilitate analysis of the cell’s primary functional output (contractility), and therefore are of somewhat limited value as a means to assess cellular maturation and performance. In order to maximize the amount of data obtainable from such in vitro cultures, it is necessary to advance the development of systems capable of housing such cells in configurations that permit the real-time assessment of their functional performance. The establishment of a multitude of three dimensional muscle models has made some progress toward fulfilling this need, and such systems have been used in a number of publications as a means to assess the contractile capacity of cultured muscle cells in vitro3-5. While such systems are invaluable for tissue modeling and reconstruction studies, they are limited in their applicability for studies of single cell responses. In such cases where single fiber studies are necessary, complex and labor intensive ex vivo methodologies remain the only option6-10. Furthermore, current movement toward the development of complex, multi-organ platforms for drug development and screening protocols requires the establishment of systems which are non-invasive, easily scalable and which integrate readily with supporting cells and tissue models11.
Microscale cantilevers offer a simple method for assessing the functional contractile capacity of single cells/small populations of cells12,13. The technique is based on modified Atomic Force Microscopy (AFM) technology14, and uses a laser and photo-detector system to measure microscale cantilever deflection in response to cultured myotube contractile activity. Modified Stoney’s equations are then used to calculate stress in the myotube, and the force exerted by the myotube in order to generate the observed substrate deflection15. A scanning program has been written which enables simultaneous assessment of multiplexed cantilever arrays, offering potential moderate to high through-put applications for drug toxicity/efficacy studies15,16. Such technology may prove invaluable in the development of functional, pre-clinical assays for predicting drug efficacy in vivo. Furthermore, fabrication of cantilever chips in silicon does not impede post analysis processing of cells for standard biomolecular assays such as immunostaining, western blotting and PCR.
This manuscript provides detailed instructions on the fabrication and preparation of microscale silicon cantilevers, the hardware and software set-up, and the operating guidelines for assessing the functionality of contractile cells cultured on these chips. Standard cell culture techniques can be implemented for plating and maintenance of cells on these surfaces, hence any contractile cell type for which reliable culture parameters exist should be able to integrate with this device with ease. The relatively simple 2D culture parameters utilized in this system makes integration of other cell models or addition of cell types that can interact with muscle (such as innervating neurons) straight-forward, greatly increasing the applicability of this model in the development of more complex functional in vitro assays and multi-organ models of mammalian systems.
השלבים הקריטיים בניתוח זיזים מיקרוסקופים לראיות של התכווצות סלולרית הם המיקום של שבב שלוחה בתוך הבמה מיקרוסקופ, והיישור הבא של הלייזר וצילום גלאי עם הקצה של זיזי הפינה במערך. אם זה לא נעשה באופן מדויק, ולאחר מכן את התוכנה לא תוכל להסיק את עמדותיהם של הזיזים שנותרו במ?…
The authors have nothing to disclose.
מחקר זה מומן על ידי המכון הלאומי לבריאות מענק המספרים R01NS050452 וR01EB009429. ייצור של שבבי שלוחה בוצע באופן חיצוני על ידי משתפי פעולה במתקן nanofabrication ממוקם באוניברסיטת קורנל. כל הציוד המשמש בתהליך ייצור שלוחה היה ממוקם במתקן זה. תודה מיוחדת למנדי Esch וז'אן מתיו Prot על סיועם במייקרו ייצור שלוחה. אנימציה וידאו של פונקציונליות שלוחה נוצרה על ידי צ'רלס יוז, אלכס Zelenin ואריק Imperiale מהמעבדה למציאות סינתטית בUCF.
Name of material/ equipment | Company | Catalog number | Comments/ Description |
Primary rat muscle growth medium | |||
Neurobasal medium | Life Technologies | 21103-049 | N/A |
B27 (50x) | Life Technologies | 17504044 | 1x |
Glutamax (100x) | Life Technologies | 35050061 | 1x |
G5 supplement | Life Technologies | 17503-012 | 1x |
Glial-Derived Neurotrophic Factor | Cell sciences | CRG400B | 20 ng/ ml |
Brain-Derived Neurotrophic Factor | Cell sciences | CRB600B | 20 ng/ ml |
Ciliary Neurotrophic Factor | Cell sciences | CRC400A | 40 ng/ ml |
Neurotrophin-3 | Cell sciences | CRN500B | 20 ng/ ml |
Neurotrophin-4 | Cell sciences | CRN501B | 20 ng/ ml |
Acidic Fibroblast Growth Factor | Life Technologies | 13241-013 | 25 ng/ ml |
Vascular Endothelial Growth Factor | Life Technologies | P2654 | 20 ng/ ml |
Cardiotrophin-1 | Cell sciences | CRC700B | 20 ng/ ml |
Heparin Sulphate | Sigma | D9809 | 100 ng/ ml |
Leukemia Inhibitory Factor | Sigma | L5158 | 20 ng/ ml |
Vitronectin | Sigma | V0132 | 100 ng/ ml |
Primary rat muscle differentiation medium | |||
NB Activ 4 | Brain Bits LLC | NB4-500 | N/A |
Equipment | |||
Class 2 red diode laser | Newport | N/A | |
Photo-detector | Noah Industries | N/A | |
Model 2100 Pulse stimulator | A-M systems | N/A | |
Multiclamp 700B Digitizer | Axon Instruments | N/A | |
Patch clamp microscope and stage | Olympus | N/A | |
Delta T4 culture dish controller | Bioptechs | N/A | |
Axoscope software | Molecular Devices | N/A | |
LabVIEW software | National Instruments | N/A | |
37oC, 5% CO2 incubator | NAPCO | N/A | |
Class 2 microbiological flow hood | Labconco | N/A | |
Pipettes and tips | Eppendorf | N/A |