Summary

מדידת מרחב ובזמן Ca<sup> 2 +</sup> אותות בצמחים ארבידופסיס

Published: September 02, 2014
doi:

Summary

איתות 2 + Ca מסדירה תהליכים ביולוגיים מגוונים בצמחים. כאן אנו מציגים גישות לניטור לחץ אביוטי המושרה Ca מרחב ובזמן 2 + אותות בתאי ארבידופסיס ורקמות באמצעות Ca 2 + אינדיקטורים מקודד גנטי Aequorin או Case12.

Abstract

רמזים התפתחותית וסביבתיים לגרום Ca 2 + תנודות בתאי צמח. Ca 2 + דפוסי מרחב וזמן גירוי ספציפי חשו על ידי חלבוני Ca 2 + מחייב סלולריים שליזום Ca 2 + מפלי איתות. עם זאת, אנחנו עדיין יודעים מעט על איך גירוי האותות 2 + Ca הספציפי נוצרים. הספציפיות של אות Ca 2 + ניתן לייחס לרגולציה המתוחכמת של הפעילויות של הערוצים ו / או מובילי Ca 2 + בתגובה לגירוי נתון. לזהות מרכיבים תאיים אלה ולהבין את תפקידם, זה קריטי לשימוש במערכות המאפשרות הקלטה רגישה וחזקה של אותות 2 + Ca בשתי הרקמות ורמות תאיות. Ca 2 + אינדיקטורים מקודד גנטי שממוקדות לתאים סלולריים שונים סיפקו פלטפורמה להדמית confocal תא חי של Ca 2 + אותות סלולריים. כאן אנו מתארים הוראהים לשימושם של שני Ca 2 + מערכות גילוי: aequorin FAS (שתילי דבק סרט) הדמיה הארה Ca 2 + וcase12 הקרינה confocal תא חי המבוססת הדמיה Ca 2 + מבוסס. הדמיה הארה באמצעות מערכת FAS מספקת זיהוי פשוט, חזק ורגיש של 2 + אותות מרחב ובזמן Ca ברמת הרקמה, תוך הדמיה confocal תא חי באמצעות Case12 מספקת זיהוי בו זמני של cytosolic ו2 + אותות Ca גרעיניים ברזולוציה גבוהה.

Introduction

תא הצמח מגיב לסביבה באמצעות איתות שהוא מתאם את פעולות תא. תא מוקדם איתות אירוע בתגובה לגירויים סביבתיים הוא עליית Ca 2 + ארעית. הדפוס, או החתימה של עלייה זמנית בריכוז Ca 2 + חינם מאופיין במשרעת, התדירות, ומשך הזמן שלה. חתימות 2 + Ca מרחב ובזמן שונים מסדירות את הפעילות סלולרית שונה 1. גירויים ספציפיים, כגון חום, קור, מלח, הבצורת, אור, או הורמונים צמחיים, עשויים לכוונן את פעילות מרחב ובזמן של ערוצים מקומי קרום Ca 2 + ו / או מובילים, וכתוצאה מכך Ca 2 + חתימות ספציפיות. למרות Ca 2 + מובילים כבר מאופיינים היטב, מעט מאוד ידוע על הזהות המולקולרית ופונקציות של ערוצי 2 + Ca בצמחי 1. מסכי גנטיים למוטציות בתגובה שינתה Ca 2 + להדגיש גירויים עשויים להיות appr יעילאוח לזיהוי הרכיבים שמרכיבים את חתימות Ca 2 +. מערכות גילוי Ca 2 + לאחרונה מבוססים כמה Aequorin פותחו המאפשרות מסכי גנטיים לCa 2 + איתות רכיבים בתגובה להתקפת הפתוגן ואביוטי מתח 2-4.

Aequorin שימש לראשונה כדי לזהות Ca 2 + אותות בצמחים בתחילת 1990 5. מאז, Aequorin כבר ממוקד לתאים סלולריים שונים, כגון ציטופלסמה 5, גרעין 6, כלורופלסטים 7, tonoplast 8, מיטוכונדריה 9, וסטרומה 10, כמו גם לסוגים שונים של תאים בשורש כדי לפקח על תא ספציפי Ca 2 + אותות 11. מדידות Ca 2 + מבוסס Aequorin לחשוף את Ca 2 + תגובת מרחב ובזמן של אוכלוסייה של תאים להדגיש גירויים. עם זאת, ברוב המקרים, תגובות Ca 2 + של תאים בודדים הן unsynchronized ברקמות להגיב 4. לכן, הקלטת 2 + Aequorin Ca לא בהכרח לדווח אות Ca 2 + בתאים בודדים. בשנים האחרונות, חלבון פלואורסצנטי מקודד גנטי (FP) המבוסס Ca 2 + אינדיקטורים, כגון Cameleon הצהוב (YCS) 12 ו13 CASEs12 היה בשימוש ללמוד Ca 2 + איתות עם רזולוציה subcellular גבוהה. YCS הוא העברת אנרגיית תהודת הקרינה (סריג) המבוסס Ca 2 + אינדיקטורים, המכילה CFP ו YFP ריאנטים מקושר על ידי Ca 2 + -binding calmodulin החלבון ופפטיד מחייב calmodulin M13. Calmodulin עובר שינוי קונפורמציה כפי שהוא נקשר לCa 2 +, ובכך מביא CFP ו YFP ביחד קרוב, וכתוצאה מכך העברת אנרגיה מוגברת (סריג משופר). רמת סריג לאורך זמן, מחושבת בערך כמו היחס של YFP לעוצמות אות CFP, משקפת תאיים Ca 2 + דינמיקה. כמה גרסאות י"ס היו בשימוש בצמחים. YC3.6 היה targeted לcytosol 14,15, גרעין 16, מיטוכונדריה 17, וקרום פלזמה 18, וYC4.6 וD4ER היו ממוקד לחדר המיון 15,19, וD3cpv היה ממוקד peroxisomes 20. צמחים מהונדסים מבטא YCS לאפשר ההדמיה לחיות התאים של Ca 2 + דינמיקה בתוך תאים סלולריים שונים של סוגי תאים שונים. מקרים (כנראה Ca lcium se nsor) הם חלבונים יחידים מעגלי permuted ניאון (cpFPs) מחסה calmodulin ופפטיד מחייב calmodulin M13. על הכריכה לCa 2 +, מקרים עוברים שינויי קונפורמציה, שהובילו לגידול של עוצמת הקרינה. המתאם בין תגובת הקרינה של CASE וריכוז Ca 2 + 2 + מאפשר דינמיקה תאית Ca להימדד כמותית. גרסת Case12 יש לקפל 12 עלתה הקרינה בCa 2 + צורות -saturated. נ צמחי benthiminana זמני exprEssing Case12 או צמחי ארבידופסיס ביציבות להביע 12 מקרה שמשו ללמוד איתות Ca 2 + במתח הבטחוני ואביוטי 4,21. 2 + תנודות Ca מרחב ובזמן אסינכרוני בתאים מגיבים להתקפת הפתוגן, או ללחץ התייבשות נחשפו עם ההדמיה Ca 2 + מבוסס Case12.

כאן, אנו מציגים הוראות מפורטות להדמית Aequorin מבוססת הארה של ברקמה וגירויים ספציפית Ca 2 + דינמיקה בשתילי ארבידופסיס, והדמית confocal של cytosolic וCa הגרעיני 2 + דינמיקה בתאי שורש ארבידופסיס המבטאות מקרה 12. הדמיה הארה של FAS יכול להיות מותאם כדי לנתח דינמיקת Ca 2 + מתח מושרה בצמחים או ברקמות אינן מתוארות כאן בשלמותה, או כדי לסנן אוכלוסיות צמח ארבידופסיס mutagenized למוטציות עם לחץ שינה המושרה Ca 2 + אותות. התקנת ההדמיה התא החי Ca 2 + יכולה להיות מותאמת כדי לנתח Ca2 + דינמיקה בתוך תאי subcelluar שונים או בתאים מסוגים שונים באמצעות Ca 2 + אינדיקטורים אחרים.

Protocol

.1 ההדמיה Aequorin מבוסס Ca 2 + שימוש במערכת FAS הכן שתילי הדמיה הארה. לעקר זרעים של צמחי ארבידופסיס להביע Aequorin עם פתרון אקונומיקה 10% מכיל 0.01% Triton-100. לזרוע את הזרעים סטריליים על צלחת מרובעת (10 x 10 סנטימטר צלחת פטרי מרובע עם ?…

Representative Results

מניטול, NaCl וH 2 O 2 שמשו כשליחים לגירויי התייבשות, מלח וסטרס חמצונים, בהתאמה. כדי לבדוק אם יון המתכת הכבד Cu 2 + synergizes עם כל אחד משלושת גירויי מתח אלה, השווינו את תגובת Ca 2 + לכל גירויים בנוכחותו או היעדריו של Cu 2 +. כפי שניתן לראות באיור 2, …

Discussion

אנחנו הוכחנו מערכת FAS להקלטת Ca 2 + תגובת מרחב וזמן של שתילי ארבידופסיס. מערכת הקלטה זו FAS Ca 2 + מספקת גישה פשוטה, רגישה וחזקה שיכול להיות מותאמת למדידת Ca 2 + דינמיקה מופעלת על ידי גירויים שונים, בנוסף לגירויים אביוטי המתח שמוצגים כאן. באמצעות מערכת זו, אנו …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We are grateful to B. Stevenson for technical assistance and Dr Marc R. Knight for providing Aequorin transgenic line. This work was funded by the National Institutes of Health Grant R01 GM059138.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
10X10 cm square petri dish  VWR 60872-310
adhesive film  VWR 60941-062
polyethylene tubing PerkinElmer 9908265
1 mL syringe  VWR 53548-000
silicone grease  Beckman 335148
2-well chambered cover glass  Nalge Nunc international 155379
8-well chambered cover glass Nalge Nunc international 155409
luminescence imaging system  Princeton Instruments N/A
inverted confocal laser-scanning microscope  Nikon Instruments Inc. N/A Nikon A1R 
Imaging software Nikon Instruments Inc. N/A Nikon Elements 
ImageJ NIH N/A Public domain, Java-based image processing program
DataGraph Visual Data Tools Inc N/A DataGraph 3.1.1 is the newest version
coelenterazine NanoLight Technolgies #301B NF-BCTZ-FB
All purpose Bleach Any local store N/A
Triton X-100 Fisher BP151500
MS salt Phytotechnology Labs M524-50L
sucrose VWR BDH8029-12KG
Agar Sigma A1296-5KG
Phytagel Sigma P8169-1KG

Referências

  1. Kudla, J., Batistic, O., Hashimoto, K. Calcium signals: the lead currency of plant information processing. Plant Cell. 22 (3), 541-563 (2010).
  2. Pan, Z., Zhao, Y., Zheng, Y., Liu, J., Jiang, X., Guo, Y. A high-throughput method for screening Arabidopsis mutants with disordered abiotic stress-induced calcium signal. J. Genet. Genomics. 39 (5), 225-235 (2012).
  3. Ranf, S., et al. Defense-related calcium signaling mutants uncovered via a quantitative high-throughput screen in Arabidopsis thaliana. Mol. Plant. 5 (1), 115-130 (2012).
  4. Zhu, X., Feng, Y., Liang, G., Liu, N., Zhu, J. K. Aequorin-based luminescence imaging reveals stimulus- and tissue-specific Ca2+ dynamics in Arabidopsis plants. Mol. Plant. 6 (2), 444-455 (2013).
  5. Knight, M. R., Campbell, A. K., Smith, S. M., Trewavas, A. J. Transgenic plant aequorin reports the effects of touch and cold-shock and elicitors on cytoplasmic calcium. Nature. 352 (6335), 524-526 (1991).
  6. Van der Luit, A. H., Olivari, C., Haley, A., Knight, M. R., Trewavas, A. J. Distinct calcium signalling pathways regulate calmodulin gene expression in tobacco. Plant Physiol. 121 (3), 705-714 (1999).
  7. Johnson, C. H., et al. Circadian oscillations of cytosolic and chloroplastic free calcium in plants. Science. 269 (5232), 489-503 (1995).
  8. Knight, H., Trewavas, A. J., Knight, M. R. Cold calcium signaling in Arabidopsis involves two cellular pools and a change in calcium signature after acclimation. Plant Cell. 8 (3), 489-503 (1996).
  9. Logan, D. C., Knight, M. R. Mitochondrial and cytosolic calcium dynamics are differentially regulated in plants. Plant Physiol. 133 (1), 21-24 (2003).
  10. Mehlmer, N., Parvin, N., Hurst, C. H., Knight, M. R., Teige, M., Vothknecht, U. C. A toolset of aequorin expression vectors for in planta studies of subcellular calcium concentrations in Arabidopsis thaliana. J. Exp. Bot. 63 (4), 1751-1761 (2012).
  11. Kiegle, E., Moore, C. A., Haseloff, J., Tester, M. A., Knight, M. R. Cell-type-specific calcium responses to drought, salt and cold in the Arabidopsis root. Plant J. 23 (2), 267-278 (2000).
  12. Palmer, A. E., Tsien, R. Y. Measuring calcium signaling using genetically targetable fluorescent indicators. Nat. Protoc. 1 (3), 1057-1065 (2006).
  13. Souslova, E., et al. Single fluorescent protein-based Ca2+ sensors with increased dynamic range. BMC. Biotechnol. 7, 37-46 (2007).
  14. Tanaka, K., Swanson, S., Gilroy, S., Stacey, G. Extracellular nucleotides elicit cytosolic free calcium oscillations in Arabidopsis. Plant Physiol. 154 (2), 705-719 (2010).
  15. Iwano, M., et al. Fine-tuning of the cytoplasmic Ca2+ concentration is essential for pollen tube growth. Plant Physiol. 150 (3), 1322-1334 (2009).
  16. Sieberer, B., Chabaud, M., Timmers, A., Monin, A., Fournier, J., Barker, D. A nuclear-targeted Cameleon demonstrates intranuclear Ca2+ spiking in Medicago truncatula root hairs in response to rhizobial nodulation factors. Plant Physiol. 151 (3), 1197-1206 (2009).
  17. Loro, G., Drago, I., Pozzan, T., Lo Schiavo, F., Zottini, M., Costa, A. Targeting of Cameleons to different subcellular compartments reveals a strict cytoplasmic/mitochondrial Ca2+ handling relationship in plant cells. Plant J. 71 (1), 1-13 (2012).
  18. Krebs, M., et al. FRET-based genetically encoded sensors allow high-resolution live cell imaging of Ca2+ dynamics. Plant J. 69 (1), 181-192 (2012).
  19. Bonza, M. C., Loro, G., Behera, S., Wong, A., Kudla, J., Costa, A. Analyses of Ca2+ accumulation and dynamics in the endoplasmic reticulum of Arabidopsis root cells using a genetically encoded Cameleon sensor. Plant Physiol. 163 (3), 1230-1241 (2013).
  20. Costa, A., et al. H2O2 in plant peroxisomes: An in vivo analysis uncovers a Ca2+ dependent scavenging system. Plant J. 62 (5), 760-772 (2010).
  21. Zhu, X., Caplan, J., Mamillapalli, P., Czymmek, K., Dinesh-Kumar, S. P. Function of endoplasmic reticulum calcium ATPase in innate immunity-mediated programmed cell death. EMBO J. 29 (5), 1007-1018 (2010).
  22. Roszik, J., Lisboa, D., Szöllosi, J., Vereb, G. Evaluation of intensity-based ratiometric FRET in image cytometry–approaches and a software solution. Cytometry A. 75 (9), 761-767 (2009).
  23. Kotlikoff, M. I. Genetically encoded Ca2+ indicators: using genetics and molecular design to understand complex physiology. J. Physiol. 578 (Pt 1), 55-67 (2007).
  24. Tian, L., et al. Imaging neural activity in worms, flies and mice with improved GCaMP calcium indicators. Nat methods. 6 (12), 875-881 (2009).
  25. Akerboom, J., et al. Optimization of a GCaMP calcium indicator for neural activity imaging. J Neurosci. 32 (40), 13819-13840 (2012).
check_url/pt/51945?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Zhu, X., Taylor, A., Zhang, S., Zhang, D., Feng, Y., Liang, G., Zhu, J. Measuring Spatial and Temporal Ca2+ Signals in Arabidopsis Plants. J. Vis. Exp. (91), e51945, doi:10.3791/51945 (2014).

View Video