Summary

Osteoclast Utledning fra Mouse Bone Marrow

Published: November 06, 2014
doi:

Summary

Osteoklaster er den viktigste ben-resorberende celle i kroppen. En evne til å isolere osteoklaster i store antall har resultert i betydelige fremskritt i forståelsen av osteoclast biologi. I denne protokollen, beskriver vi en metode for isolering, dyrking og kvantifisere osteoklastaktivitet in vitro.

Abstract

Osteoklaster er høyt spesialiserte celler som stammer fra monocytter / makrofagen avstamning av benmargen. Deres unike evne til å resorbere både organiske og uorganiske matriser av bein betyr at de spiller en viktig rolle i regulering av skjelett ombygging. Sammen, osteoblaster og osteoklaster er ansvarlig for den dynamiske sammenkoplingsprosess som involverer både benresorpsjon og bendannelse som virker sammen for å opprettholde normal skjelettet under helse og sykdom.

Som hoved ben-resorberende celle i kroppen, kan endringer i osteoklast differensiering eller funksjon resultere i dyptgripende virkninger i kroppen. Sykdommer assosiert med endret osteoklast-funksjon kan variere i alvorsgrad fra neonatal dødelig sykdom på grunn av manglende evne til å danne et marg plass for hematopoiese, mer vanlig observert patologier så som osteoporose, hvori overdreven osteoklastisk benresorpsjon predisponerer for å frakturere formasjonen.

ent "> En evne til å isolere osteoklaster i høye tall in vitro har åpnet for betydelige fremskritt i forståelsen av remodellesyklusen og har banet vei for oppdagelsen av nye terapeutiske strategier som bekjempe disse sykdommene.

Her beskriver vi en protokoll for å isolere og dyrke osteoklaster fra mus benmarg som vil gi et stort antall osteoklaster.

Introduction

Benremodelleringen er dynamisk og innebærer kobling av beindannelse med benresorpsjon en. Dette tett regulert prosessen er ansvarlig for å holde skjelettet under normal homeostase, og som respons på skade og sykdom.

Osteoklaster er unike, flerkjernede celler som er i stand til å resorberende både de organiske og uorganiske matriser av benet. Osteoklaster er utledet fra monocytt- / makrofag avstamning av benmargen 2-5. Abnormaliteter i funksjon eller dannelse av osteoklaster kan resultere i en rekke kliniske patologi, herunder vanlige tilstander som osteoporose.

Evnen til å generere osteoklaster in vitro har åpnet for betydelige fremskritt i vår forståelse av bein biologi 6. Som et resultat, er nye terapeutiske agenter dukker opp for å behandle osteoklast relaterte sykdommer som er ansvarlig for betydelige tilleggslidelser og dødelighet 7 </sopp>. Homeostatic vedlikehold av beinmasse og styrke krever samordnet aksjon av bendannende osteoblaster og bein-resorberende osteoklaster 8,9. Bone homeostase endres på en rekke sykdommer, inkludert post-menopausal osteoporose, hvor øket osteoklast-aktivitet som fører til sykdomsfremkallende tap av benmasse og tetthet 10. Med økende tilgjengelighet av transgene mus modeller av menneskelig sykdom, er det flere muligheter til å dechiffrere rolle osteoklaster i menneskelig skjelettsykdommer 11-13.

Tallrike protokoller for osteoklast dyrkningsteknikker vises i litteraturen, med mange variasjoner er beskrevet 9,12,14. Xing og medarbeidere beskriver metoden som er tilsvarende til den protokoll som er beskrevet nedenfor, i sin beskrivelse av osteoclastogenic assays fra murine benmargceller. Men å frigjøre benmargceller etter lang bein innhøsting, Xing et al. Skylle margen hulrom med α-MEM komplett media14. Catalfamo undersøker effekten av hyperglycemi på osteoclast funksjon og beskriver en fremgangsmåte hvor alle celler mobilisert av benmargs spyling blir dyrket i 24 timer, ved hvilket punkt de ikke-adherente celler blir forkastet 12, en teknikk som også brukes av Boyle et al . 9. Disse tidligere publiserte protokoller nødvendiggjøre praktiseringen av spyle benmargen, en langtekkelig praksis, som også introduserer risikoen for en nålestikkskader og tap av verdifull benmarg, som man må kutte begge ender av benet. Protokollen, som vi beskrive, implementerer bruk av en morter og støter for å isolere osteoklaster, som er lik den fremgangsmåte som er beskrevet av makrofager isolert fra Weischenfeldt et al. 15

Vår erfaring er imidlertid at osteoclast isolasjon og in vitro kultur ved hjelp av tidligere publiserte teknikker resultater i variable resultater i form av osteoclast produksjon, som ofte resultereri en manglende evne til å dyrke osteoklaster. Vi har derfor utviklet en protokoll som muliggjør den konsekvente isolering av muse-benmarg til å produsere store antall osteoklaster multinucleated in vitro, med en omtrentlig utbytte på 70-80% av cellene i utgangspunktet belagt dannende makrofager og osteoklaster hvorpå, i nærvær av osteoclast induksjons medier.

Protocol

MERK: Etisk uttalelse: All forskning som involverer virveldyr ble utført i henhold protokoller godkjent av Stanford Administrative Panel on Laboratory Animal Care (APLAC). 1. Forberedelse Tillat 10 ml kommersielt tilgjengelig densitetsgradient celleseparasjonsmateriale (som inneholder polysucrose og natrium- diatrizoat, justert til en densitet på 1,077 g / ml) for å komme til romtemperatur i et 50 ml konisk rør. Forbered strømningscytometri (FACS) buffer med 1 x fosfatbufret saltløsnin…

Representative Results

Målet med denne fremgangsmåten var lett å isolere et stort antall osteoklaster in vitro, typisk i en uke. Vellykkede isolering av store antall osteoklaster ble bekreftet ved hjelp av tartrat-resistent sur-fosfatase-farging (figur 1A). Store osteoklaster er visualisert som store lilla celler med flere kjerner (typisk ≥ 3 kjerner). Ved hjelp av denne protokollen, er det vanlig å isolere osteoklaster med så mange som 30 kjerner per osteoclast (Figur 1b). <p class=…

Discussion

En evne til å enkelt isolere og dyrke et stort antall osteoklaster in vitro har vært ansvarlig for å bidra til å fremme forståelse av bein biologi og osteoklastmediert sykdommer. Det var identifikasjonen av RANKL som fører til dette, når det ble nylig identifisert som hovedregulator for osteoklastdannelse, differensiering og overlevelse 16-18.

Det har vært vår erfaring at in vitro dyrking av osteoklaster fra benmarg er i stor grad avhengig av seeding tet…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi erkjenner støtte fra NIH tilskudd R01 DE021683, R01 DE019434, U01 HL099776, The Oak Foundation og The Hagey Laboratorium for Pediatric Regenerative Medicine.

Materials

Name of the Material/Equipment Company Catalog Number Comments/Description
MEM, no glutamine, no phenol red Gibco 51200-038
M-CSF, recombinant mouse Gibco PMC2044
Recombinant Mouse TRANCE/RANK L/TNFSF11 (E. coli expressed) R&D Systems 462-TEC-010
Prostaglandin E2 Sigma-Aldrich
Histopaque-1077 Sigma-Aldrich 10771
Acid Phosphatase, Lekocyte (TRAP) kit Sigma-Aldrich 387A
Osteoassay bone resorption plates, 24 well plates Corning Life Sciences 3987

Referências

  1. Sims, N. A., Martin, T. J. Coupling the activities of bone formation and resorption: a multitude of signals within the basic multicellular unit. BoneKEy reports. 3, 481 (2014).
  2. Kahn, A. J., Simmons, D. J. Investigation of cell lineage in bone using a chimaera of chick and quial embryonic tissue. Nature. 258, 325-327 (1975).
  3. Walker, D. G. Bone resorption restored in osteopetrotic mice by transplants of normal bone marrow and spleen cells. Science. 190, 784-785 (1975).
  4. Burger, E. H., et al. In vitro formation of osteoclasts from long-term cultures of bone marrow mononuclear phagocytes. The Journal of experimental medicine. 156, 1604-1614 (1982).
  5. Underwood, J. C. From where comes the osteoclast. The Journal of pathology. 144, 225-226 (1984).
  6. Lacey, D. L., et al. Bench to bedside: elucidation of the OPG-RANK-RANKL pathway and the development of denosumab. Nature reviews. Drug discovery. 11, 401-419 (2012).
  7. Brown, J. E., Coleman, R. E. Denosumab in patients with cancer-a surgical strike against the osteoclast. Nature reviews. Clinical oncology. 9, 110-118 (2012).
  8. Khosla, S. Minireview: the OPG/RANKL/RANK system. Endocrinology. 142, 5050-5055 (2001).
  9. Boyle, D. L., et al. Differential roles of MAPK kinases MKK3 and MKK6 in osteoclastogenesis and bone loss. PloS one. 9, (2014).
  10. Hofbauer, L. C., Heufelder, A. E. Role of receptor activator of nuclear factor-kappaB ligand and osteoprotegerin in bone cell biology. Journal of molecular medicine (Berlin, Germany). 79, 243-253 (2001).
  11. Teramachi, J., et al. Increased IL-6 Expression in Osteoclasts is Necessary but not Sufficient for the Development of Paget’s Disease of Bone. Journal of bone and mineral research : the official journal of the American Society for Bone and Mineral Research. , (2013).
  12. Catalfamo, D. L., et al. Hyperglycemia induced and intrinsic alterations in type 2 diabetes-derived osteoclast function. Oral diseases. 19, 303-312 (2013).
  13. Schueler, J., et al. Intratibial injection of human multiple myeloma cells in NOD/SCID IL-2Rgamma(null) mice mimics human myeloma and serves as a valuable tool for the development of anticancer strategies. PloS one. 8, (2013).
  14. Xing, L., Boyce, B. F. RANKL-Based Osteoclastogenic Assays from Murine Bone Marrow Cells. Methods in molecular biology (Clifton, N.J). 1130, 307-313 (2014).
  15. Weischenfeldt, J., Porse, B. Bone Marrow-Derived Macrophages (BMM): Isolation and Applications. CSH protocols. , (2008).
  16. Yamamoto, Y., et al. Osteoblasts provide a suitable microenvironment for the action of receptor activator of nuclear factor-kappaB ligand. Endocrinology. 147, 3366-3374 (2006).
  17. Yasuda, H., et al. Osteoclast differentiation factor is a ligand for osteoprotegerin/osteoclastogenesis-inhibitory factor and is identical to TRANCE/RANKL. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 95, 3597-3602 (1998).
  18. Lacey, D. L., et al. Osteoprotegerin ligand is a cytokine that regulates osteoclast differentiation and activation. Cell. 93, 165-176 (1998).
  19. Teitelbaum, S. L., Ross, F. P. Genetic regulation of osteoclast development and function. Nature reviews. Genetics. 4, 638-649 (2003).
  20. Agas, D., Sabbieti, M. G., Marchetti, L. Endocrine disruptors and bone metabolism. Archives of toxicology. 87, 735-751 (2013).
  21. Manolagas, S. C., O’Brien, C. A., Almeida, M. The role of estrogen and androgen receptors in bone health and disease. Nature Reviews Endocrinology. 9, 699-712 (2013).
  22. Martin, T. J., Udagawa, N. Hormonal regulation of osteoclast function. Trends in endocrinology and metabolism. 9, 6-12 (1998).
  23. Nakamura, T., et al. Estrogen prevents bone loss via estrogen receptor alpha and induction of Fas ligand in osteoclasts. Cell. 130, 811-823 (2007).
  24. Bellido, T., et al. Regulation of interleukin-6, osteoclastogenesis, and bone mass by androgens. The role of the androgen receptor. The Journal of clinical investigation. 95, 2886-2895 (1995).
  25. Roato, I. Interaction among cells of bone, immune system, and solid tumors leads to bone metastases. Clinica., & developmental immunology. 2013, (2013).
  26. Autio, K. A., Morris, M. J. Targeting bone physiology for the treatment of metastatic prostate cancer. Clinical advances in hematolog., & oncology. 11, 134-143 (2013).
  27. Sottnik, J. L., Keller, E. T. Understanding and targeting osteoclastic activity in prostate cancer bone metastases. Current molecular medicine. 13, 626-639 (2013).
check_url/pt/52056?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Tevlin, R., McArdle, A., Chan, C. K., Pluvinage, J., Walmsley, G. G., Wearda, T., Marecic, O., Hu, M. S., Paik, K. J., Senarath-Yapa, K., Atashroo, D. A., Zielins, E. R., Wan, D. C., Weissman, I. L., Longaker, M. T. Osteoclast Derivation from Mouse Bone Marrow. J. Vis. Exp. (93), e52056, doi:10.3791/52056 (2014).

View Video