Summary

Anvendelse av Fluorescent Nanopartikler å studere Omforming av det Endo-lysosomal System av intracellulære bakterier

Published: January 02, 2015
doi:

Summary

Denne artikkelen beskriver fremgangsmåter for syntese og fluorescerende merking av nanopartikler (NPS). NPS ble brukt i puls-chase eksperimenter å merke endo-lysosomal system av eukaryote celler. Manipulering av endo-lysosomal system av aktiviteter av den intracellulære patogen Salmonella ente ble etterfulgt av levende celle bildebehandling og kvantifisert.

Abstract

Fluorescent nanopartikler (NPS) med ønskelig kjemiske, optiske og mekaniske egenskaper er lovende verktøy å merke intracellulære organeller. Her introduserer vi en metode med gull-BSA-NPs å merke endo-lysosomal system av eukaryote celler og overvåke manipulasjoner av vertscelle pathways av den intracellulære patogen Salmonella ente. NPS ble lett internalisert av HeLa celler og lokalisert i sene endosomer / lysosomer. Salmonella infeksjon indusert omorganisering av blemmer og opphopning av NPs i Salmonella- indusert membranstrukturer. Vi rullet ut Imaris programvarepakke for kvantitative analyser av konfokalmikroskopi bilder. Antall objekter og deres distribusjons størrelse i ikke-infiserte celler var forskjellig fra de i Salmonella -infected celler, noe som indikerer ekstremt ombygging av endo-lysosomal system av WT Salmonella.

Introduction

Fluorescent nanopartikler (NPS), inkludert metall NPs, kvanteprikker, polymer NPs, silika NPs, karbon punktum, etc., har vakt betydelig oppmerksomhet i løpet av de siste tiårene 1,2. Sammenlignet med tradisjonelle organiske fargestoffer, fluorescerende NPs viser ønskelig kjemiske, optiske og mekaniske egenskaper, som for eksempel sterk signalstyrke, motstand mot fotobleking og høy biokompatibilitet 3,4. Disse fordelene gjør dem metoden for valg for intracellulær sensing og levende celle bildebehandling. Videre en rekke elektrontette NPs er synlige ved elektronmikroskopi (EM), tilrettelegging for deres bruk for korrelert mikroskopisk analyse, som tillater kombinasjon av levende celle sporing med lysmikroskopi (LM) og høyere oppløsning på ultrastructural nivå med EM 5. For eksempel har gull NPS vært lang tid effektivt anvendes som biosensorer i levende celler for sensitiv diagnostisering så vel som i felten av immun-merking 6. Nylige studies indikerer at gull NPS med forskjellig størrelse og form kan være lett opptak av et stort utvalg av cellelinjer og rutinemessig transporteres gjennom endosomale veien, har derfor et stort potensial som påføres for intracellulær transport vesikkel sporing og systemet merking endo-7,8 lysosomal .

Mikrobielle patogener, som Salmonella ente, Shigella flexneri og Listeria monocytogenes, har utviklet ulike mekanismer for å invadere ikke-fagocyttiske vertsceller 9. Etter å ha blitt internalisert, patogener, enten lokalisert i cytosol eller inne i de membranbundne avdelinger, samhandle mye med sine vertsmiljøer og modulere disse til å favorisere sin egen overlevelse 10. For eksempel ligger Salmonella ente og replikerer innenfor en intracellulær phagosomal rommet kalt Salmonella-holdige vakuole (SCV) ved infeksjon 11. Modning SCVtraffics mot Golgi-apparatet, gjennomgår kontinuerlige interaksjoner med endocytoseveien, og induserer dannelsen av omfattende rørformede strukturer, slik som Salmonella indusert filamenter (SIF), sortering nexin tubuli, Salmonella -indusert sekretorisk carrier membran protein 3 (SCAMP3) tubuli, etc . 12-14. Studere hvordan disse bakterielle patogener manipulere vertscelle veier er viktig for forståelse av smittsomme sykdommer.

Her ble gull-BSA-rhodamin NPS anvendt som fluid tracere for å merke vertscelle endo-lysosomal systemet, og den humane mage-patogen Salmonella enterica serovar Typhimurium (Salmonella) ble anvendt som en modell for å studere bakterie interaksjoner av patogenet med vert endocytoseveien. Intracellulære gull-BSA-NPs i ikke-infiserte celler og celler infisert med WT Salmonella eller mutantstammer ble fotografert av et konfokal laser-scanning mikroskop (CLSM).Deretter Imaris programvare ble benyttet for å kvantifisere fordelingen av NPS, noe som viser at Salmonella-infeksjon indusert ekstrem omleiring av endosomer / lysosomer. Etter beskrivelsen av denne metoden, kan analoge eksperimenter være utformet for å spore langvarig skjebnen til de internalis NPS og for å undersøke innflytelsen av forskjellige eksogene stoffer eller endogene faktorer på endocytoseveien av eukaryote celler.

Protocol

1. Syntese av 10 nm Gold Nanopartikler (Gold NPs) 15 Forbered løsning A: tilsett 2 ml 1% vandig gull klorid i 160 ml Milli-Q, eller dobbelt destillert vann. Forbered oppløsning B: Tilsett 8 ml 1% tri-natriumcitrat x 2 H2O og 160 pl 1% Garvesyre i 32 ml Milli-Q eller dobbelt-destillert, vann. Varm opp løsning A og B til 60 ° C og bland dem under omrøring. Observere en mørk blå farge umiddelbart. Observere rød farge etter ca 15 min. Deretter varmes opp til 95 °…

Representative Results

Gull NPs ble generert gjennom en veletablert metode via reduksjon av chloroauric syre ved citrate og garvesyre. Som vist i figur 2A, de syntetiserte gull NPS var kvasi-sfærisk form med en størrelse på ca 10 nm. BSA-belegg og rodamin-merking ikke påvirke deres morfologi eller størrelse (figur 2B). Det har blitt rapportert at gull NPs kan lett tas opp av ulike pattedyrceller og endte opp i endocytiske systemer 7. I samsvar med tidligere arbeide…

Discussion

Endo-lysosomal system av pattedyrceller styrer viktige fysiologiske prosesser, herunder næringsopptak, hormon-mediert signaltransduksjon, immun overvåking, og antigenpresentasjon 17. Opp til nå, har en rekke markører vært brukt til merking av endocytoseveien og sporing studier. For eksempel, LysoTracker sonder er fluorescerende acidotropic prober utviklet av molekylære prober (Life Technologies, USA) for lysosome merking, som kan selektivt akkumuleres i mobilnettet lommer med lav indre pH og effektivt e…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by the Deutsche Forschungsgemeinschaft by grant Z within Sonderforschungsbereich 944 ‘Physiology and Dynamics of Cellular Microcompartments’ and HE1964/18 within priority program 1580.

Materials

Name of the Material/Equipment Company Catalog Number Comments/ Description
Gold chloride Sigma-Aldrich 520918
Tannic acid Sigma-Aldrich 403040
tri-sodium citrate Sigma C8532
Bovine serum albumin Sigma A2153
NHS-Rhodamine Pierce 46406
DMSO  Sigma D8418
HEPES Sigma H3375
Gentamicin Applichem A1492
Kanamcyin Roth T832
Carbenicillin Roth 6344
8-well chamber slides Ibidi 80826 tissue culture treated, sterile
Imaris Software Bitplane version 7.6 various configurations available

Referências

  1. Coto-Garcia, A. M. Nanoparticles as fluorescent labels for optical imaging and sensing in genomics and proteomics. Anal. Bioanal. Chem. 399, 29-42 (2011).
  2. Xie, J., Lee, S., Chen, X. Nanoparticle-based theranostic agents. Adv. Drug Deliv. Rev. 62, 1064-1079 (2010).
  3. Ruedas-Rama, M. J., Walters, J. D., Orte, A., Hall, E. A. Fluorescent nanoparticles for intracellular sensing: a review. Anal. Chim. Acta. 751, 1-23 (2012).
  4. Wu, C., Chiu, D. T. Highly fluorescent semiconducting polymer dots for biology and medicine. Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 52, 3086-3109 (2013).
  5. Giepmans, B. N., Deerinck, T. J., Smarr, B. L., Jones, Y. Z., Ellisman, M. H. Correlated light and electron microscopic imaging of multiple endogenous proteins using Quantum dots. Nat. Methods. 2, 743-749 (2005).
  6. Kumar, D., Saini, N., Jain, N., Sareen, R., Pandit, V. Gold nanoparticles: an era in bionanotechnology. Expert Opin. Drug Deliv. 10, 397-409 (2013).
  7. Dykman, L. A., Khlebtsov, N. G. Uptake of engineered gold nanoparticles into mammalian cells. Chem. Rev. 114, 1258-1288 (2014).
  8. Chithrani, B. D., Ghazani, A. A., Chan, W. C. Determining the size and shape dependence of gold nanoparticle uptake into mammalian cells. Nano Lett. 6, 662-668 (2006).
  9. Finlay, B. B., Cossart, P. Exploitation of mammalian host cell functions by bacterial pathogens. Science. 276, 718-725 (1997).
  10. Bhavsar, A. P., Guttman, J. A., Finlay, B. B. Manipulation of host-cell pathways by bacterial pathogens. Nature. 449, 827-834 (2007).
  11. Malik-Kale, P., et al. Salmonella – at home in the host cell. Front. Microbiol. 2, 125 (2011).
  12. Rajashekar, R., Liebl, D., Seitz, A., Hensel, M. Dynamic remodeling of the endosomal system during formation of Salmonella-induced filaments by intracellular Salmonella enterica. Traffic. 9, 2100-2116 (2008).
  13. Schroeder, N., Mota, L. J., Meresse, S. Salmonella-induced tubular networks. Trends Microbiol. 19, 268-277 (2011).
  14. Drecktrah, D., Knodler, L. A., Howe, D., Steele-Mortimer, O. Salmonella trafficking is defined by continuous dynamic interactions with the endolysosomal system. Traffic. 8, 212-225 (2007).
  15. Slot, J. W., Geuze, H. J. A new method of preparing gold probes for multiple-labeling cytochemistry. Eur. J. Cell Biol. 38, 87-93 (1985).
  16. Zhang, Y., Hensel, M. Evaluation of nanoparticles as endocytic tracers in cellular microbiology. Nanoscale. 5, 9296-9309 (2013).
  17. Pollard, T. D., Earnshaw, W. C., Lippincott-Schwartz, J. Chapter 22. Cell Biology. , (2007).
  18. . . LysoTracker and LysoSensor Probes. , (2013).
  19. Shi, H., He, X., Yuan, Y., Wang, K., Liu, D. Nanoparticle-based biocompatible and long-life marker for lysosome labeling and tracking. Anal. Chem. 82, 2213-2220 (2010).
  20. Hensel, M. Genes encoding putative effector proteins of the type III secretion system of Salmonella pathogenicity island 2 are required for bacterial virulence and proliferation in macrophages. Mol. Microbiol. 30, 163-174 (1998).
  21. Beuzon, C. R., et al. Salmonella maintains the integrity of its intracellular vacuole through the action of SifA. EMBO J. 19, 3235-3249 (2000).
check_url/pt/52058?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Zhang, Y., Krieger, V., Hensel, M. Application of Fluorescent Nanoparticles to Study Remodeling of the Endo-lysosomal System by Intracellular Bacteria. J. Vis. Exp. (95), e52058, doi:10.3791/52058 (2015).

View Video