Summary

Высокоэффективная Лигирование малых РНК молекул для микроРНК количественного путем высокопроизводительного секвенирования

Published: November 18, 2014
doi:

Summary

MicroRNAs (miRNAs) are a widely conserved class of regulatory molecules. Here we describe a miRNA cloning method that relies upon two potent ligation steps followed by high-throughput sequencing. Our method permits accurate genome-wide quantitation of miRNAs.

Abstract

Мирна клонирование и высокой пропускной последовательности, называется микроРНК-Seq, стоит особняком как транскриптома-широкий подход к количественной микроРНК с одной резолюции нуклеотидов. Эта техника захватывает микроРНК путем присоединения 3 'и 5' олигонуклеотидные адаптеры, чтобы молекул микроРНК и позволяет De Novo микроРНК открытие. Сцепление с мощными платформами для секвенирования следующего поколения, микроРНК-Посл играет важную роль в изучении микроРНК биологии. Тем не менее, значительные уклоны, введенные олигонуклеотидных шагов лигирования предотвратили Мир-Seq с должности работать как точный инструмент количественного. Предыдущие исследования показали, что перекосы в текущих микроРНК-Seq методов часто приводит к неточным микроРНК количественного с ошибками до 1000-кратного для некоторых микроРНК 1,2. Чтобы решить эти предубеждения придаваемых РНК перевязки, мы разработали небольшой РНК методом перевязки, что приводит к повышению эффективности перевязки более 95% как для 3 'и 5' шагов лигирования. Бенчмаркинг этот чатоказалась библиотека метод строительства с использованием эквимолярных или дифференциально смешанные синтетические микроРНК, последовательно дает считывает числа с менее чем в два раза отклонения от ожидаемого значения. Кроме того, этот высокоэффективный метод микроРНК-Посл позволяет точно генома микроРНК профилирования из в естественных условиях общего образцов РНК 2.

Introduction

Методологии, основанные высокопроизводительного секвенирования были широко применяется для многих биологических образцов в последние годы значительно расширяющих наши представления о молекулярной сложности биологических систем 3,4. Тем не менее, подготовка образцов РНК для высокопроизводительного секвенирования часто придает определенные предубеждения, присущие занятого методологии, ограничивающие потенциальную полезность этих мощных методов. Эти метод конкретных предубеждения были хорошо документированы для перевязки основе, малых РНК библиотечных препаратов 1,2,5,6. Эти предубеждения привести к изменению 1000 раз в считывает числа для эквимолярными синтетических микроРНК, делая вывод о микроРНК изобилия из данных секвенирования дико переменная и ошибок.

Исследования фокусировки от свойств фага Т4, полученных РНК лигазы документально, что ферменты обладают нуклеотидные на основе предпочтений 7, которые проявляются в виде смещенные библиотеки в высокой пропускной экспериментов секвенирования <sдо> 1,2,8. Для того чтобы свести к минимуму погрешностей придаваемых РНК лигазы, множественные стратегии были использованы; макромолекулярный скученности 9, рандомизации нуклеотидную на адаптере, который является ближайшим к лигирования сайта 6, и с использованием высоких концентраций лигирования адаптера 2. Благодаря сочетанию этих трех подходов мы разработали рабочий процесс для объективной подготовки небольших библиотек РНК совместимых для высокопроизводительного секвенирования (рисунок 1). Для прямых сравнений между текущими протоколами и наш оптимизированный метод, пожалуйста, обратитесь к нашему недавнему докладу 2. Это оптимизированный метод дает эффективность перевязки более чем 95% в обоих 3 'и 5' шагов и позволяет объективную перевязку малых молекул РНК из синтетических и биологических образцов 2.

Protocol

ПРИМЕЧАНИЕ: Очень важно поддерживать РНКазы условия в течение всей процедуры. 1. аденилирование 3 'Linker Развести олигонуклеотид ДНК, предназначенный для 3 'лигирования реакций до 100 мкм в нуклеазы без H 2 O. ПРИМЕЧАНИЕ: олигонуклеотид должен иметь 5 'фосф…

Representative Results

Ожидаемые результаты за предшествующий метод должен сначала быть наблюдение за одну смену нуклеотидной (увеличение) размера олигонуклеотида ДНК, которая была предметом аденилирование по Mth РНК-лигазы (Рисунок 2). После лигирования 3 ', визуализация акриламида гель показ…

Discussion

Методика описана в данном документе используется несколько ключевых переменных, чтобы максимизировать эффективность лигирования, а именно высокие концентрации PEG, использование линкеров рандомизированных и высокую концентрацию линкеров 2,6,9. Такой подход позволяет надежно кол…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors would like to thank members of the Yi laboratory especially Zhaojie Zhang for fruitful discussions regarding linker design and ligation efficiencies, as well as the American Cancer Society for supporting this work through a postdoctoral fellowship (#125209) to J.E.L. Research reported in this publication was also supported by the National Institute of Arthritis and Musculoskeletal and Skin Diseases of the National Institutes of Health under Award Number R01AR059697 (to R.Y.) and a research grant from the Linda Crnic Institute for Down Syndrome. The content is solely the responsibility of the authors and does not necessarily represent the official views of the National Institutes of Health.

Materials

Name of Reagent/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
3' Linker (5' phosphorylated, 3' blocked) Integrated DNA Technologies custom
5' Linker Integrated DNA Technologies custom 5' blocked, HPLC Purified
T4RNL2 (1-249 K227Q) New England Biolabs M0351S Specialized for ligation of pre-adenylated DNA adapters
10X Ligation Buffer (without ATP) New England Biolabs Included with M0351S
10X Ligation Buffer (with ATP) New England Biolabs Included with M0204L
RNaseOUT  Invitrogen 10777-019
Polyethylene Glycol (mol. Wt. 8000) New England Biolabs Included with M0204L
Nuclease-free water Ambion AM9937 We have found water collected from a distillation apparatus to be of equvalent quality.
T4RNL1 New England Biolabs M0204L
Superscript III RT kit Invitrogen 18080-051 
Phusion PCR kit New England Biolabs M0530S
Illumina RP1 Primer Integrated DNA Technologies custom Sequence information available from Illumina
Illumina RT Primer Integrated DNA Technologies custom Sequence information available from Illumina
Illumina Index Primer(s) Integrated DNA Technologies custom Sequence information available from Illumina
40% Acrylamide Fisher Scientific BP14081
Urea Sigma Aldrich U6504
Ammonium persulfate Sigma Aldrich A3678
Tetramethyethylenediamine (TEMED) Sigma Aldrich T9281
2X Denaturing RNA loading buffer New England Biolabs Included with M0351S
Razor blades VWR 55411-050
SpinX Centricon Tubes Costar CLS8161
Low Retention Microfuge tubes Fisher Scientific 02-681-320
Sybr Gold Invitrogen S-11494
Adenylation Kit New England Biolabs E2610L

Referências

  1. Hafner, M., et al. RNA-ligase-dependent biases in miRNA representation in deep-sequenced small RNA cDNA libraries. RNA. 17 (9), 1697-1712 (2011).
  2. Zhang, Z., Lee, J. E., Riemondy, K., Anderson, E. M., Yi, R. High-efficiency RNA cloning enables accurate quantification of miRNA expression by deep sequencing. Genome Biology. 14 (10), 109 (2013).
  3. Consortium, T. E. P. The ENCODE (ENCyclopedia Of DNA Elements) Project. Science. 306 (5696), 636-640 (2004).
  4. Consortium, T. E. P. An integrated encyclopedia of DNA elements in the human genome. Nature. 489 (7414), 57-74 (2012).
  5. Linsen, S. E. V., et al. Limitations and possibilities of small RNA digital gene expression profiling. Nature Methods. 6 (7), 474-476 (2009).
  6. Jayaprakash, A. D., Jabado, O., Brown, B. D., Sachidanandam, R. Identification and remediation of biases in the activity of RNA ligases in small-RNA deep sequencing. Nucleic Acids Research. 39 (21), 141 (2011).
  7. McLaughlin, L. W., Romaniuk, E., Romaniuk, P. J., Neilson, T. The Effect of Acceptor Oligoribonucleotide Sequence on the T4 RNA Ligase Reaction. European Journal of Biochemistry. 125 (3), 639-643 (1982).
  8. Zhuang, F., Fuchs, R. T., Sun, Z., Zheng, Y., Robb, G. B. Structural bias in T4 RNA ligase-mediated 3′-adapter ligation. Nucleic Acids Research. 40 (7), 54 (2012).
  9. Harrison, B., Zimmerman, S. B. Polymer-stimulated ligation: enhanced ligation of oligo- and polynucleotides by T4 RNA ligase in polymer solutions. Nucleic Acids Research. 12 (21), 8235-8251 (1984).
  10. Torchia, C., Takagi, Y., Ho, C. K. Archaeal RNA ligase is a homodimeric protein that catalyzes intramolecular ligation of single-stranded RNA and DNA. Nucleic Acids Research. 36 (19), 6218-6227 (2008).
  11. Lau, N. C., Lim, L. P., Weinstein, E. G., Bartel, D. P. An Abundant Class of Tiny RNAs with Probable Regulatory Roles in Caenorhabditis elegans. Science. 294 (5543), 858-862 (2001).
  12. Yi, R., et al. DGCR8-dependent microRNA biogenesis is essential for skin development. Proceedings of the National Academy of Sciences. 106 (2), 498-502 (2009).
  13. Leung, A. K. L., et al. Genome-wide identification of Ago2 binding sites from mouse embryonic stem cells with and without mature microRNAs. Nature Structural & Molecular Biology. 18 (2), 237-244 (2011).
check_url/pt/52095?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Lee, J. E., Yi, R. Highly Efficient Ligation of Small RNA Molecules for MicroRNA Quantitation by High-Throughput Sequencing. J. Vis. Exp. (93), e52095, doi:10.3791/52095 (2014).

View Video