Summary

Herstel van de Adult zebravis Harten voor High-throughput Toepassingen

Published: December 12, 2014
doi:

Summary

Use of zebrafish for cardiovascular research is expanding towards research on adult hearts. For these applications, quick and simple isolation of cardiac tissues is key to avoid post-mortem changes and to obtain an adequate number of samples. Here, we describe a fast and reproducible method for dissecting adult zebrafish hearts.

Abstract

Gebruik van het zebravis modelsysteem voor het bestuderen van de ontwikkeling, regeneratie en ziekte zich uitstrekt tot gebruik van volwassen hart voor celdissociatie en zuivering van RNA, DNA en eiwitten. Al deze toepassingen vereisen het snelle herstel van aanzienlijke aantallen van de zebravis hart voor genregulerend, metabole en andere veranderingen die beginnen na de dood te voorkomen. Volwassen zebravissen harten zijn ook vereist voor het bestuderen hart structuur voor verschillende mutanten en voor het bestuderen hart regeneratie. Echter, de traditionele zebravis hart dissectie is traag en moeilijk en vereist gespecialiseerde gereedschappen, waardoor grootschalige dissectie van volwassen zebravissen harten vervelend. Traditionele methoden brengen ook het risico van beschadiging van het hart tijdens de dissectie. Hier beschrijven we een werkwijze voor dissectie van volwassen zebravissen harten die snel, reproduceerbaar en behoudt hart architectuur. Bovendien is deze methode niet gespecialiseerde hulpmiddelen nodig hebben, is pijnloos voor de zebravis,kan worden uitgevoerd op vers of vaste exemplaren, en kan worden uitgevoerd op de zebravis zo jong als een maand oud. De beschreven aanpak breidt het gebruik van volwassen zebravissen voor cardiovasculair onderzoek.

Introduction

Zebrafish are an excellent model for studying heart development and human disease1,2. Specific advantages include the translucent nature of zebrafish embryos, the availability of many genetic mutants and transgenic reporter lines, and the availability of genome editing technologies. In addition to their advantages for studying early heart development, zebrafish are an ideal system for studying vertebrate heart regeneration3.

More recently, adult zebrafish are playing an important part in bioinformatics approaches to studying cardiovascular development and disease, due to their relatively large clutch size and relatively quick and inexpensive breeding compared to other vertebrate models. Promising techniques include ribosome profiling, RNA-Seq, and cell dissociation and FACS sorting4-7. However, for these techniques the quality of the data can depend on obtaining a large number of samples in a rapid, efficient, and reproducible manner, before gene regulatory, metabolic, transcriptional, and other changes occur.

Dissection of adult zebrafish organs has been described in the past8,9. However, previous approaches to dissection of the heart were slow, ran the risk of damaging the heart during dissection, required special tools, and/or required fixation of the zebrafish prior to dissection; for these reasons, past approaches to zebrafish adult heart dissection were not optimized for high-throughput applications and/or applications requiring fresh tissue.

Here, we describe a method for adult zebrafish heart dissection that is simple, fast, efficient, and reproducible, while preserving cardiac morphology. This method does not include cutting into the pericardial space and therefore does not risk damaging the heart during dissection. Instead, this method relies on anatomical landmarks of the zebrafish, and therefore, it is highly reproducible. This dissection method is also versatile in that it can be used on fresh or fixed fish, and on zebrafish as young as one month old. Finally, this method results in minimal suffering to the zebrafish because after anesthesia and/or rapid cooling, the fish is additionally decapitated and pithed in the course of the dissection procedure.

Protocol

LET OP: Zorg er altijd voor dat de goedkeuring IACUC of ethische commissie is op zijn plaats voor het begin van elke experimentele procedure met behulp van zebravis. 1. Bereid reagentia en setup Bereid de volgende oplossingen. Vind de recepten voor al deze oplossingen in standaard handboeken zebravis 10. 500 ml van het Ei Water 200 ml van 0,03% tricaïne in Egg Water 100 ml van 1x fosfaat-gebufferde zoutoplossing (PBS) RBC Lyseerbu…

Representative Results

Met deze methode kan een volwassen zebravissen hart ontleed in minder dan 1 minuut, tegen ruim 5 min op traditionele wijze 8. Harten ontleed met behulp van deze methode betrouwbaar intact (Figuur 2A), terwijl de traditionele methoden 8 vereisen snijden blindelings in het hartzakje en daarom vaak beschadiging of verlies van het atrium of bulbusarteriosus (Figuur 2B) veroorzaken. Harten ontleed behouden hun structurele integriteit en zijn geschikt voor histologie <st…

Discussion

Hoewel werkwijzen voor het ontleden van de volwassen zebravissen hart zijn beschreven, deze werkwijzen zijn tijdrovend en meestal veroorzaakt schade aan het hart tijdens dissectie. Voor experimenten waarbij een groot aantal volwassen hart nodig zijn, uitvoeren en / of bij het voorkomen degradatie van hartweefsel is belangrijk voor downstreamtoepassingen, de benodigde tijd voor traditionele dissectie technieken onbetaalbaar. Evenzo reproduceerbaar verkrijgen onbeschadigde, intacte hart is belangrijk voor studie van harts…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors would like to thank Dr. Shaun Coughlin for hosting the filming of this procedure in his laboratory, and for general support. R.A. was supported by the NIH (F32HL110489) and the Sarnoff Cardiovascular Research Foundation. S.R. was supported by a Research Fellowship of the Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG) and the American Heart Association (AHA). D.Y.R.S was supported by the NIH (RO1HL54737), the Packard Foundation, and the Max Planck Society.

Materials

small tank for transporting fish Aquaneering ZHCT100
fish net Petsmart 36-16731
250mL glass beaker Kimble 14005-250
9cm polystyrene petri dish Nunc 172958
razor blade Personna American Safety Razor Company 94-120-71
two Dumont #5SF forceps Fine Science Tools 11252-00
dissecting microscope Olympus SZX16
Tricaine Sigma A-5040
plastic transfer pipette Thermo Scientific 202-20S
gooseneck light source Dolan-Jenner Industries, Inc Fiber-Lite 180 Illuminator, 181 Dual Gooseneck System
fluorescent light source Lumen Dynamics X-Cite 120Q optional
micro-scissors Biomedical Research Instruments, Inc 11-1000 optional
RBC Lysis Buffer eBioscience 00-4333-57 optional

Referências

  1. Arnaout, R., et al. Zebrafish model for human long QT syndrome. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104 (27), 11316-11321 (2007).
  2. Chi, N. C., et al. Genetic and physiologic dissection of the vertebrate cardiac conduction system. PLoS Biology. 6 (5), 109 (2008).
  3. Poss, K. D. Getting to the heart of regeneration in zebrafish. Seminars in Cell & Developmental Biology. 18 (1), 36-45 (2007).
  4. Fang, Y., et al. Translational profiling of cardiomyocytes identifies an early Jak1/Stat3 injury response required for zebrafish heart regeneration. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (33), 13416-13421 (2013).
  5. Manoli, M., Driever, W. Fluorescence-activated cell sorting (FACS) of fluorescently tagged cells from zebrafish larvae for RNA isolation. Cold Spring Harbor Protocols. 2012 (8), (2012).
  6. Cannon, J. E., et al. Global analysis of the haematopoietic and endothelial transcriptome during zebrafish development. Mechanisms of Development. 130 (2-3), 122-131 (2013).
  7. Wang, Z., Gerstein, M., Snyder, M. RNA-Seq: a revolutionary tool for transcriptomics. Nature Reviews Genetics. 10 (1), 57-63 (2009).
  8. Gupta, T., Mullins, M. C. Dissection of organs from the adult zebrafish. Journal of Visualized Experiments. 37, (2010).
  9. Singleman, C., Holtzman, N. G. Heart dissection in larval, juvenile and adult zebrafish, Danio rerio. Journal of Visualized Experiments. 55, (2011).
  10. Westerfield, M. . The zebrafish book: a guide for the laboratory use of zebrafish (Brachydanio rerio. , (1993).
check_url/pt/52248?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Arnaout, R., Reischauer, S., Stainier, D. Y. Recovery of Adult Zebrafish Hearts for High-throughput Applications. J. Vis. Exp. (94), e52248, doi:10.3791/52248 (2014).

View Video