Use of zebrafish for cardiovascular research is expanding towards research on adult hearts. For these applications, quick and simple isolation of cardiac tissues is key to avoid post-mortem changes and to obtain an adequate number of samples. Here, we describe a fast and reproducible method for dissecting adult zebrafish hearts.
Användning av zebrafisk modellsystem för att studera utveckling, regenerering, och sjukdom expanderar mot användning av vuxna hjärtan för cell dissociation och rening av RNA, DNA och proteiner. Alla dessa applikationer kräver den snabba återhämtningen av betydande antal zebrafisk hjärtan att undvika genreglerande, metabola och andra förändringar som börjar efter döden. Vuxna zebrafisk hjärtan krävs också för att studera hjärtstruktur för en mängd olika mutanter och för att studera hjärtregenerering. Men den traditionella zebrafisk hjärta dissektion långsamt och svårt och kräver specialverktyg, vilket gör storskalig dissektion av vuxna zebrafisk hjärtan tråkiga. Traditionella metoder härbärgerar också risken för skador på hjärtat under dissekering. Här beskriver vi en metod för dissektion av vuxna zebrafisk hjärtan som är snabb, reproducerbar och bevarar hjärt arkitektur. Vidare har denna metod inte kräver specialiserade verktyg, är smärtfri för zebrafisk,kan utföras på färska eller fasta prover, och kan utföras på zebrafisk så unga som en månad gammalt. Den strategi som beskrivs utökar användningen av vuxna zebrafisk för kardiovaskulär forskning.
Zebrafish are an excellent model for studying heart development and human disease1,2. Specific advantages include the translucent nature of zebrafish embryos, the availability of many genetic mutants and transgenic reporter lines, and the availability of genome editing technologies. In addition to their advantages for studying early heart development, zebrafish are an ideal system for studying vertebrate heart regeneration3.
More recently, adult zebrafish are playing an important part in bioinformatics approaches to studying cardiovascular development and disease, due to their relatively large clutch size and relatively quick and inexpensive breeding compared to other vertebrate models. Promising techniques include ribosome profiling, RNA-Seq, and cell dissociation and FACS sorting4-7. However, for these techniques the quality of the data can depend on obtaining a large number of samples in a rapid, efficient, and reproducible manner, before gene regulatory, metabolic, transcriptional, and other changes occur.
Dissection of adult zebrafish organs has been described in the past8,9. However, previous approaches to dissection of the heart were slow, ran the risk of damaging the heart during dissection, required special tools, and/or required fixation of the zebrafish prior to dissection; for these reasons, past approaches to zebrafish adult heart dissection were not optimized for high-throughput applications and/or applications requiring fresh tissue.
Here, we describe a method for adult zebrafish heart dissection that is simple, fast, efficient, and reproducible, while preserving cardiac morphology. This method does not include cutting into the pericardial space and therefore does not risk damaging the heart during dissection. Instead, this method relies on anatomical landmarks of the zebrafish, and therefore, it is highly reproducible. This dissection method is also versatile in that it can be used on fresh or fixed fish, and on zebrafish as young as one month old. Finally, this method results in minimal suffering to the zebrafish because after anesthesia and/or rapid cooling, the fish is additionally decapitated and pithed in the course of the dissection procedure.
Medan metoder för att dissekera den vuxna zebrafisk hjärta har beskrivits, var dessa metoder tidsödande och ofta orsakat skador på hjärtat under dissekering. För att utföra experiment där ett stort antal vuxna hjärtan kan behövas, och / eller när man undviker nedbrytning av hjärtvävnad är viktigt för tillämpningar efter, är orimlig den tid som krävs med traditionella dissektion tekniker. På samma sätt är viktigt för studier av hjärtstruktur och för immunhistokemiska och mikroskopimetoder reproduc…
The authors have nothing to disclose.
The authors would like to thank Dr. Shaun Coughlin for hosting the filming of this procedure in his laboratory, and for general support. R.A. was supported by the NIH (F32HL110489) and the Sarnoff Cardiovascular Research Foundation. S.R. was supported by a Research Fellowship of the Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG) and the American Heart Association (AHA). D.Y.R.S was supported by the NIH (RO1HL54737), the Packard Foundation, and the Max Planck Society.
small tank for transporting fish | Aquaneering | ZHCT100 | |
fish net | Petsmart | 36-16731 | |
250mL glass beaker | Kimble | 14005-250 | |
9cm polystyrene petri dish | Nunc | 172958 | |
razor blade | Personna American Safety Razor Company | 94-120-71 | |
two Dumont #5SF forceps | Fine Science Tools | 11252-00 | |
dissecting microscope | Olympus | SZX16 | |
Tricaine | Sigma | A-5040 | |
plastic transfer pipette | Thermo Scientific | 202-20S | |
gooseneck light source | Dolan-Jenner Industries, Inc | Fiber-Lite 180 Illuminator, 181 Dual Gooseneck System | |
fluorescent light source | Lumen Dynamics | X-Cite 120Q | optional |
micro-scissors | Biomedical Research Instruments, Inc | 11-1000 | optional |
RBC Lysis Buffer | eBioscience | 00-4333-57 | optional |