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Artigo de método

Um protocolo simples e rápido para não enzimática Separar frescos Tecidos Humanos para a Análise de infiltrar Linfócitos

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DOI:

10.3791/52392

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6 de dezembro de 2014

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* These authors contributed equally

Neste artigo

Resumo

Este protocolo descreve a dissociação rápida não enzimática de fragmentos de tecido humano fresco para avaliação qualitativa e quantitativa de células CD45+ (linfócitos/leucócitos) presentes em vários tecidos humanos normais e malignos. Além disso, o sobrenadante obtido do homogeneizado de tecido primário pode ser coletado e armazenado para análise ou experimentação posterior.

Resumo

A capacidade das células malignas para evadir o sistema imune, caracterizado por escape do tumor a partir de ambas as respostas imunes inatas e adaptativas, é agora aceite como uma característica importante do cancro. Nossa pesquisa sobre câncer de mama centra-se no papel ativo que os linfócitos tumor infiltrando desempenhar na progressão do tumor e evolução de pacientes. Com esse objetivo, foi desenvolvida uma metodologia para o rápido isolamento de células linfóides intactas de tecidos normais e anormais em um esforço para avaliá-los próximo ao seu estado natal. Homogeneizados preparados utilizando um show Dissociator mecânica tanto maior recuperação e viabilidade celular, preservando a expressão do receptor de superfície em comparação tecidos para enzima-digerida. Além disso, a digestão enzimática do material insolúvel restante não recuperou células adicionais CD45 +, indicando que as medidas quantitativas e qualitativas no homogeneizado primária provável genuinamente refletem infiltrando as subpopulações no fragm tecidoent. As células linfóides em homogenatos estes podem ser facilmente caracterizadas utilizando imunológica (fenótipo, proliferação, etc.) ou molecular (DNA, RNA e / ou proteína) se aproxima. As células CD45 + pode também ser utilizado para a purificação subpopulação, expansão in vitro ou de criopreservação. Um benefício adicional desta abordagem é que o sobrenadante de tecido primário a partir dos homogeneizados podem ser utilizados para caracterizar e comparar as citocinas, quimiocinas e imunoglobulinas, antigénios presentes em tecidos normais e malignos. Este funções de protocolo extremamente bem para tecidos mamários humanos e deve ser aplicável a uma grande variedade de tecidos normais e anormais.

Introdução

O microambiente tumoral é composto por vários tipos de células, com numerosos estudos mostrando que cada uma delas desempenha papéis distintos e importantes na tumorigênese1,2. Estes incluem, mas não estão limitados a, células imunes infiltrantes, células estromais, células endoteliais e células tumorais3. Estudos ex vivo de linfócitos infiltrantes tumorais (TIL; Células CD45+ ou leucócitos, que são predominantemente linfócitos em tumores de mama) de amostras frescas de tecido humano é dificultado por sua baixa frequência, os pequenos tamanhos de amostra frequentemente disponíveis para pesquisa e o potencial de perda de viabil....

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Protocolo

NOTA: Todos os espécimes foram adquiridos através de um protocolo aprovado pelo Comitê de Ética Médica do Instituto Jules Bordet com consentimento informado por escrito obtido de cada paciente.

1. Preparação do homogenato de tecido

  1. Dissecar tecidos ressecados (tecido maligno e normal ressecado da sala de cirurgia) estão no laboratório de patologia por pessoal treinado para a coleta imediata. Tumor, NANT (tomado a maior distância possível do tumor) e fragmentos de tecidos normais são rotineiramente processados ​​dentro de 1-3 horas de excisão cirúrgica em um laboratório BSL2 utilizando procedimentos de biossegurança padrão para ....

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Resultados

A digestão enzimática de fragmentos de tecido, quer com soluções comercialmente disponíveis de dissociação de tecido ou várias misturas de laboratório de colagenase, ADNase e / ou inibidores de hialuronidase, clivar uma grande variedade de receptores na superfície das células. Os nossos estudos, inicialmente centrado sobre as células T CD4 + que infiltram os tumores de mama, foram rapidamente apresentados com um grande problema técnico, devido à clivagem dos receptores de CD4 de superfície utilizando protocol.......

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Discussão

Este estudo descreve um método otimizado para o preparo rápido de homogeneizados normais e malignas do tecido mamário, sem digestão enzimática para classificação subseqüente celular, extração, criopreservação e / ou análise fenotípica de CD45 + subpopulações. O objetivo dessa abordagem experimental é produzir imagens da TIL que refletem de perto seu estado in vivo e compará-los aos tecidos normais com mínima manipulação dos tecidos frescos da sala de cirurgia. Até o momento, o nosso laboratório tem u.......

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Divulgações

Os autores declaram que não existe conflito de interesses.

Agradecimentos

Este trabalho foi financiado por doações fromthe Fundo Belga de Pesquisa Científica (FNRS), Les Amis de l'Institut Bordet, FNRS-operação Télévie, Câncer da Bélgica Plan, Fonds Lambeau-Marteaux, Fonds JC Heuson e Fonds Barsy.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
GentleMacs DissociatorMiltenyi Biotec130-093-235BD Medimachine é um pouco equivalente
Centrífuga 5810 REppendorfou outra centrífuga de mesa padrão
Centrífuga 5417 REppendorfou outra microcentrífuga padrão
Esco Classe II A2 Biossegurança GabineteESCO globalou outro padrão BSL2 capuz
Microscópio invertidoNikon eclipse TS100ou outro microscópio compatível para um hemacitômetro
Bü rker CâmaraMarienfield 640210ou outro hemacitômetro padrão
Navios Citômetro de FluxoBeckman Coulterou outro citômetro de fluxo (8-10 cores recomendadas)
GentleMacs C-TubeMiltenyi Biotec130-096-344BD Medimachine usa Filcon
Cell Culture DishSarstedt72,710ou outros materiais plásticos não pirogênicos
Bisturi descartávelSwann-Morton0510ou bisturi estéril de uso único padrão
BD Cell Strainer 40 µ mBecton Dickinson734-0002ou outro material plástico não pirogênico
BD Falcon Tube 50 mlBecton Dickinson352070ou outro material plástico não pirogênico
BD Falcon Tube 15 mlBecton Dickinson352097ou outro material plástico não pirogênico
BD FACS Tube 5 mlBecton Dickinson352008ou outro material plástico não pirogênico
Pasteur estéril Pipeta de 5 mlVWR612-1685ou outro material de plástico não pirogénico
Tubo de microfuga de 1,5 mlEppendorf7805-00ou outro material de plástico não pirogénico
X-Vivo 20LonzaBE04-448Qmeio isento de soro recomendado
Solução salina tamponada com fosfatoLonzaBE17-516Fpadrão fisiológico PBS
Azul de tripanoVWR17942Eou outra mancha vital
VersaLyseBeckman CoulterA09777para experimentos de citometria de fluxo
Viabilidade fixável Dye eFluor 780eBioscience65-0865-14para experimentos de citometria de fluxo
anti-CD3 FITCBD Biosciences345763para experimentos de citometria de fluxo
anti-CD3 Vio BlueMiltenyi Biotec130-094-363para experimentos de
citometria de fluxoanti-CD4 PEBD Biosciences345769para experimentos de citometria de fluxo
anti-CD4APC Miltenyi Biotec130-091-232para experimentos de citometria de fluxo
anti-CD8 ECDBeckman Coulter737659para experimentos de citometria de fluxo
anti-CD8 PerCPBD Biosciences345774para experimentos de citometria de fluxo
anti-CD19 APC-Vio770Miltenyi Biotec130-096-643para experimentos de citometria de fluxo
anti-CD45 VioGreenMiltenyi Biotec130-096-906para experimentos de citometria de fluxo

Referências

  1. Chen, D. S., Mellman, I. Oncology meets immunology: the cancer-immunity cycle. Immunity. 39 (1), 1-10 (2013).
  2. Boudreau, A., van't Veer, J. L., Bissell, M. J. An 'elite hacker': breast tumors exploit the normal microenvironment pr....

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Reimpressões e permissões

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