Summary

RNA Isolasjon fra Cell spesifikke subpopulasjoner Bruke Laser-fangst mikrodisseksjon Kombinert med Rapid Immunolabeling

Published: April 11, 2015
doi:

Summary

Genekspresjon analyse av et undersett av celler i et bestemt vev er en stor utfordring. Denne artikkelen beskriver hvordan du isolerer høy kvalitet total RNA fra en bestemt celle befolkning ved å kombinere en rask immunolabeling metode med laser capture mikrodisseksjon.

Abstract

Laser fangst mikrodisseksjon (LCM) tillater isolering av bestemte celler fra tynne vevssnitt med høy romlig oppløsning. Effektiv LCM krever nøyaktig identifikasjon av celler subpopulasjoner fra et heterogent vev. Identifikasjon av celler av interesse for LCM er vanligvis basert på morfologiske kriterier eller på fluorescerende protein journalister. Kombinasjonen av LCM og hurtig immunolabeling tilbyr en alternativ og effektiv måte for å visualisere spesifikke celletyper, og for å isolere dem fra omgivende vev. Høy kvalitet RNA kan deretter tas ut fra en ren cellepopulasjon og bearbeides videre for nedstrøms applikasjoner, inkludert RNA-sekvensering, microarray eller QRT-PCR. Denne tilnærmingen har tidligere blitt utført og kort beskrevet i noen publikasjoner. Målet med denne artikkelen er å illustrere hvordan du utfører rask immunolabeling av en cellepopulasjon samtidig RNA integritet, og hvordan å isolere disse spesifikke celler ved hjelp LCM. Her, vi illustrered denne multi-trinns prosedyre ved immunolabeling og fange dopaminerge celler i hjernevev fra en-dag-gamle mus. Vi markere viktige kritiske trinn som fortjener spesiell vurdering. Denne protokollen kan tilpasses til en rekke forskjellige vev og celler av interesse. Forskere fra ulike felt vil trolig ha nytte av demonstrasjonen av denne tilnærmingen.

Introduction

Hjernen består av et stort utvalg av forskjellige typer nevroner som danner komplekse nettverk. Disse nevronene er organisert i forskjellige grupper og undergrupper i henhold til deres morfologi, tilkoblingsmuligheter og genuttrykk mønster 1. Utviklingen av mikromatriser, neste generasjons sekvensering, og QRT-PCR tilbudt muligheten til å sammenligne genekspresjonsprofiler av nevronale populasjoner i ulike biologiske sammenhenger 1,2. Disse sensitive analyser krever presis identifisering og isolering av celletyper av interesse mens du holder RNA integritet 2-4. Fluorescerende aktivert cellesortering (FACS) teknikken har blitt mye brukt for å isolere spesifikke celletyper basert på celleoverflatemarkører og / eller morfologi. FACS krever en celle dissosiasjon trinn før sortering, noe som resulterer i et fullstendig tap av romlig oppløsning 5. Mange neuronal subpopulasjoner skiller seg fra hverandre i henhold til sin anatomiske fordeling i the hjernen. Laser capture mikrodisseksjon brukes på tynne hjerne seksjoner gir et passende alternativ for spesifikke isolering av celler med høy romlig oppløsning 6-8. En større begrensning av LCM har vært behovet for å identifisere celler av interesse basert på morfologiske kriterier eller fluorescerende protein reportere genetisk konstruert i dyremodeller. Utvikling av nye teknikker for å utføre raske immunolabeling metoder som bevarte RNA integritet, i kombinasjon med LCM, tillater nå isolering av celleunderpopulasjoner for å fortsette med gen-profilering eksperimenter.

Denne tilnærmingen har tidligere blitt utført og kort beskrevet i noen publikasjoner 1,9-13. Her viser vi en detaljert prosedyre for å oppnå høy kvalitet på RNA fra en spesifikk undergruppe av celler i en kompleks struktur vev ved å kombinere rask immunolabeling med LCM. Vi viser hvordan du utfører viktige kritiske trinn for å oppnå maksimal RNA utvinning og unngå RNA degradering som det kan significantly innvirkning genuttrykk profilering.

For demonstrasjon av denne protokollen, ble dopaminerge nevroner fra en-dags-gamle musehjernen målrettet. Dopaminerge neuroner kan immunolabeled ved hjelp av et antistoff rettet mot tyrosin hydroksylase (TH), det hastighetsbegrensende enzym for dopamin-syntese. Etter TH farging, kan enkeltpersoner eller grupper av dopaminerge nevroner så isoleres ved hjelp av LCM. Microdissected celler er samlet i lyseringsbuffer, og RNA ble ekstrahert ved anvendelse av en RNA-isolering kit. Kvalitet og kvantitet av ekstrahert RNA måles ved hjelp av en Bioanalyzer 5. Videre analyse av genuttrykk ved bruk av: RNA sekvensering, microarray, eller QRT-PCR kan deretter utføres 2,4,6. Som et eksempel, er en to-trinns QRT-PCR demonstrert på laser fanget isolert dopaminerge domener. Relativ kvantifisering av uttrykk nivåer av to dopaminerge nevroner markørgener illustrerer selektivitet av denne protokollen.

Protocol

MERK: Forsøkene ble utført i samsvar med den kanadiske Guide for omsorg og bruk av forsøksdyr, og ble godkjent av Université Laval Animal Protection Committee. 1. Prøvepreparering MERK: I dette eksemplet bruker vi mus hjerner på postnatal dag 1. Bruk hypotermi anestesi i knust is i 3 til 4 min for unger, så dissekere hjernen så raskt som mulig i iskaldt L15 medium. Utføre dette trinnet innen 2 min. Overfør dissekert hjerner i embedd…

Representative Results

Denne raske immunolabeling fremgangsmåte tillater visualisering av celler av interesse, samtidig som RNA integritet. Figur 1 illustrerer de trinn vevspreparat før RNA-ekstrahering. Etter cryosectioning, er dopaminerge neuroner merket ved anvendelse av et antistoff rettet mot tyrosinhydroksylase (merkede nevroner vises i brun). Avhengig av den eksperimentelle spørsmålet kan enkle celler eller større område av interesse bli isolert ved hjelp av LCM (figur 1D – E). D…

Discussion

Den mest kritiske punkt ved denne metode består i merking av celler av interesse, mens hindrer RNA-degradering. Som RNaser er aktive i vandige oppløsninger, mink inkubasjonstider forbedrer RNA bevaring 11,15. Alle løsninger som brukes må behandles med DEPC å inaktivere RNases. Alle materialer og overflater trenger å bli behandlet med et overflate RNAse dekontaminering løsning for å hindre forurensning RNaser. Til slutt, i disse forhold, er tilsetning av RNAse inhibitoren i alle løsningene effektive i…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work is supported by a grant from the Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada (NSERC: 418391-2012). AC receives a scholarship from the Centre thématique de recherche en Neurosciences (CTRN). HDB is funded by a scholarship from the Fonds de Recherche en Santé du Québec (FRSQ) and ML is a FRSQ Chercheur-Boursier.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Membrane coated slides  Leica Biosystems 11505158 MembraneSlides PEN-Membrane 2,0 µm; 50 pcs
Surface RNAse decontamination solution Life technologies AM9780 RNaseZap
Fixative 70% Ethanol kept at -20 °C
Anti-TH  Pel-Freez P40101  1:25
RNAse free buffer DEPC PBS + 1% BSA+0.02% triton
RNAse inhibitor Promega N2615 Rnasine Plus Rnase Inhibitor 40 kU/ml (stock)
Anti-rabbit biotinylated Vector Laboratories BA-1000
Vectastain Elite ABC kit Standard Vector Laboratories PK-6100 8µl/ml
DAB Peroxidase Substrate Kit  Vector Laboratories SK-4100
RNA isolation kit Life technologies KIT0204 Arcturus PicoPure RNA Isolation Kit
H2O2 30% Sigma HC4060
Ethanol absolute
Laser microdissection system Leica microsystems Model AS-LMD
DEPC Alfa Aesar B22753-14
Bioanalyzer Agilent Agilent 2100 Bioanalyzer
Embedding mold  Leica Biosystems 14702218311 6x8mm
Hydrophobic barrier pen  Vector Laboratories H-4000
Frozen tissue embedding media Tissue-Tek 4583
Bioanalyzer chip Aligent Technologies 5067-1513 RNA 6000 Pico LabChip used with Agilent 2100 Bioanalyzer
Hot start reaction mix for quantitative PCR Roche 6402712001 Fast Start Essential DNA Green Master
Reverse transcriptase Life technologies 11752-050 SuperScript III First-Strand Synthesis SuperMix for qRT-PCR

Referências

  1. Chung, C. Y., et al. The transcription factor orthodenticle homeobox 2 influences axonal projections and vulnerability of midbrain dopaminergic neurons. Brain : a journal of neurology. 133 (Pt 7), 2022-2031 (2010).
  2. Cheng, L., et al. Laser-assisted microdissection in translational research: theory, technical considerations, and future applications. Applied immunohistochemistry & molecular morphology : AIMM / official publication of the Society for Applied Immunohistochemistry. 21 (1), 31-47 (2013).
  3. Decarlo, K., Emley, A., Dadzie, O. E., Mahalingam, M. Laser capture microdissection: methods and applications. Methods in molecular biology. 755, 1-15 (2011).
  4. Espina, V., Heiby, M., Pierobon, M., Liotta, L. A. Laser capture microdissection technology. Expert review of molecular diagnostics. 7 (5), 647-657 (2007).
  5. Fend, F., Raffeld, M. Laser capture microdissection in pathology. Journal of clinical pathology. 53 (9), 666-672 (2000).
  6. Chadi, G., Maximino, J. R., de Oliveira, G. P. The importance of molecular histology to study glial influence on neurodegenerative disorders. Focus on recent developed single cell laser microdissection. Journal of molecular histology. 40 (4), 241-250 (2009).
  7. Liu, A. Laser capture microdissection in the tissue biorepository. Journal of biomolecular techniques : JBT. 21 (3), 120-125 (2010).
  8. Baskin, D. G., Bastian, L. S. Immuno-laser capture microdissection of rat brain neurons for real time quantitative PCR. Methods in molecular biology. 588, 219-230 (2010).
  9. Brown, A. L., Smith, D. W. Improved RNA preservation for immunolabeling and laser microdissection. RNA. 15 (12), 2364-2374 (2009).
  10. Brown, A. L., Brown, A. L., Day, T. A., Dayas, C. V., Smith, D. W. Purity and enrichment of laser-microdissected midbrain dopamine neurons. BioMed research international. 2013, 747938 (2013).
  11. Murakami, H., Liotta, L., Star, R. A. IF-LCM: laser capture microdissection of immunofluorescently defined cells for mRNA analysis rapid communication. Kidney international. 58 (3), 1346-1353 (2000).
  12. Greene, J. G., Dingledine, R., Greenamyre, J. T. Gene expression profiling of rat midbrain dopamine neurons: implications for selective vulnerability in parkinsonism. Neurobiology of disease. 18 (1), 19-31 (2005).
  13. Chung, C. Y., Koprich, J. B., Endo, S., Isacson, O. An Endogenous Serine/Threonine Protein Phosphatase Inhibitor, G-Substrate, Reduces Vulnerability in Models of Parkinson’s Disease. Journal of Neuroscience. 27 (31), 8314-8323 (2007).
  14. Pfaffl, M. Chapter 3, Quantification strategies in real-time. AZ of quantitative PCR. , (2004).
  15. Smolinski, D., Blessenohl, M., Neubauer, C., Kalies, K., Gebert, A. Validation of a novel ultra-short immunolabeling method for high-quality mRNA preservation in laser microdissection and real-time reverse transcriptase-polymerase chain reaction). The Journal of MolecularDiagnostics. 8 (2), 246-253 (2006).
  16. Podgornyĭ, O. V., Lazarev, V. N., Govorun, V. M. Laser microdissection for biology and medicine. Tsitologiia. 54 (5), 381-389 (2012).
  17. Vandewoestyne, M., ewoestyne & Deforce, D. Laser capture microdissection in forensic research: a review. International journal of legal medicine. 124 (6), 513-521 (2010).
  18. Shapiro, J. P., et al. A quantitative proteomic workflow for characterization of frozen clinical biopsies: laser capture microdissection coupled with label-free mass spectrometry. Journal of. 77, 433-4340 (2012).
  19. Domazet, B., Maclennan, G. T., Lopez-Beltran, A., Montironi, R., Cheng, L. Laser capture microdissection in the genomic and proteomic era: targeting the genetic basis of cancer. International journal of clinical and experimental pathology. 1 (6), 475-488 (2008).
check_url/pt/52510?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Chabrat, A., Doucet-Beaupré, H., Lévesque, M. RNA Isolation from Cell Specific Subpopulations Using Laser-capture Microdissection Combined with Rapid Immunolabeling. J. Vis. Exp. (98), e52510, doi:10.3791/52510 (2015).

View Video