Here we present techniques for imaging local IP3-mediated Ca2+ events using fluorescence microscopy in intact mammalian cells loaded with Ca2+ indicators together with an algorithm that automates identification and analysis of these events.
Cytosolisk Ca2 + ioner regulere mange aspekter af cellulær aktivitet i næsten alle celletyper, kontrollerende processer vidtrækkende som gentranskription, elektrisk ophidselse og celleproliferation. Mangfoldigheden og specificitet Ca2 + signalering stammer fra mekanismer, som Ca 2 + signaler genereres til at handle over forskellige tidspunkter og rumlige skalaer, lige fra celle hele svingninger og bølger, der forekommer i løbet af de perioder minutter til lokale forbigående Ca 2 + mikrodomæner (Ca 2 + pust) varige millisekunder. Nylige fremskridt inden elektron multipliceret CCD (EMCCD) kameraer nu mulighed for billeddannelse af lokale Ca 2 + signaler med en 128 x 128 pixel rumlig opløsning på hastigheder på> 500 frames sek -1 (fps). Denne fremgangsmåde er yderst parallel og muliggør samtidig overvågning af hundreder af kanaler eller puff sites i et enkelt eksperiment. Men de umådelige mængder af data, der genereres (ca. 1 GB per min) gør visuel identifikation og analyse af lokale Ca 2 + begivenheder umuligt. Her beskriver vi, og demonstrere procedurerne for erhvervelse, afsløring og analyse af lokale IP 3 medieret Ca 2 + signaler i intakte pattedyrceller lastet med Ca 2 + indikatorer ved hjælp af både bredt felt epi-fluorescens (WF) og total intern refleksion fluorescens (TIRF) mikroskopi. Desuden beskriver vi en algoritme udviklet i open source software miljø Python, der automatiserer identifikation og analyse af disse lokale Ca 2 + signaler. Algoritmen lokaliserer lokaliteter af Ca 2+ frigivelse med sub-pixel opløsning; giver brugeren mulighed for gennemgang af data; og udlæser tid sekvenser af fluorescensforhold signaler sammen med amplitude og kinetiske data i et Excel-kompatible tabel.
Calcium ioner (Ca 2+) allestedsnærværende regulere en bred vifte af biologiske processer, herunder genekspression, sekretion og langvarige ændringer i synaptisk plasticitet 1. En måde, hvorigennem Ca2 + kan handle på en sådan forskelligartet måde er gennem de forskellige rumlige og tidslige mønstre af Ca 2+ signalerer en celle kan generere. For eksempel globale stigninger i cytosol [Ca2 +] trigger sammentrækning i glat muskelvæv 2 mens mindre, lokaliserede forbigående stigninger (lokale Ca 2 + mikrodomæner) stimulere genekspression af afgørende betydning for indlæring og hukommelse 3.
Fri cytosol [Ca2 +] holdes på ~ 100 nM i hvile, men kan hurtigt stige til flere mikro-molær efter tilstrømningen af Ca 2+ i cytosolen via Ca2 + -permeable ionkanaler placeret i plasmamembranen og befrielsen af Ca 2+ fra intracellulære sTores. Vores laboratorium fokuserer på inositol 1,4,5-trisphosphat receptor (IP3 R), som danner en Ca2 + release kanal beliggende i det endoplasmatiske reticulum (ER) membran. Ved binding af både IP3 og Ca2 + til cytosoliske aktiverende steder i receptoren, IP3 R kanal åbner at befri Ca 2+ afsondret inden ER lumen. Frigivelsen af Ca 2+ kan forblive rumligt begrænset til en lille klynge af IP 3 R'er til at generere en lokal cytosolisk microdomain af Ca 2+ (Ca2 + puff 4), eller, afhængigt af hvor tæt beslægtede klynger af IP 3 R'er, kan udbrede gennem en celle ved at rekruttere flere puff sites gennem en Ca 2 + -induceret Ca 2+ release (CICR) 5,6.
Indførelsen af fluorescerende lille molekyle Ca 2+ indikatorfarvestoffer udviklet af Roger Tsien 7, kombineret med avanceret mikroskopi fantasing teknikker, i høj grad har lettet vores forståelse af Ca2 + signalering. Nylige fremskridt i kameraer, der anvendes til mikroskopi nu mulighed for billeddannelse forbigående lokale Ca 2 + begivenheder som pust med hidtil uset rumlig og tidsmæssig opløsning. Aktuelt tilgængelige EMCCD kameraer gør det muligt billeddannelse med 128 x 128 pixels ved> 500 frames sek -1 (fps), og den nye generation af komplementær metal-oxid halvleder (CMOS) kameraer giver højere pixel opløsning, og endnu hurtigere hastighed på bekostning af lidt højere støjniveauer. I forbindelse med total intern refleksion (TIRF) mikroskopi er det nu muligt at billedet enkelt Ca 2+ kanal events 8,9. Denne fremgangsmåde giver mulighed for billeddannelse af hundredvis af kanaler / begivenheder samtidig, samtidig med at generere store datasæt (ca. 1 Gb per min), der gør manuel behandling, visuel identifikation og analyse praktisk muligt og placere en vægt på en udvikling af automatiserede algoritmer.
<p class = "jove_content"> Her præsenterer vi procedurer og protokoller for billeddannelse lokale Ca 2 + signaler i intakte pattedyrceller under anvendelse af fluorescerende Ca 2 + indikatorer. Vi viser yderligere en algoritme udviklet i open source miljø Python, der automatiserer identifikation og analyse af lokale Ca 2 + arrangementer afbildet af både TIRF og konventionel bredt felt epi-fluorescens (WF) mikroskopi. Selvom vi beskrive disse metoder i forbindelse med IP 3 -generated Ca2 + signaler, de er let medgørlige at studere lokale ændringer i cytosoliske [Ca2 +], der hidrører fra en række Ca2 + -permeable ionkanaler placeret i enten overfladen membran eller intracellulære organeller 8-10.Vi beskriver her protokoller til billeddannelse af lokale Ca2 + begivenheder i dyrkede pattedyrceller under anvendelse af fluorescerende Ca2 + indikatorer. Desuden beskriver vi en algoritme med en intuitiv brugergrænseflade, der automatiserer identifikation og analyse af indsamlede data. Den her beskrevne fremgangsmåde udnytter den fluorescerende Ca2 + indikator Cal-520, men mange andre Ca 2+ følsomme farvestoffer, såsom Fluo-3, Fluo-4, Fluo-8 og Oregon Green BAPTA-1 udfø…
The authors have nothing to disclose.
This work was supported by National Institutes of Health grants GM 100201 to I.F.S, and GM 048071 and GM 065830 to I.P.
Name | Company | Catalogue No. |
Human Neuroblastoma SH-SY5Y cells | ATCC | CRL-2266 |
Cal-520/AM | AAT Bioquest Inc. | 21130 |
ci-IP3 (D-23-O-Isopropylidene-6-O-(2-nitro-4.5-dimethoxy)benzyl-myo-Inositol 145-trisphosphate-Hexakis(propionoxymethyl) | SiChem | cag-iso-2-145-10 |
DMSO/20% pluronic F127 | Invitrogen | P-3000MP |
EGTA/AM | Invitrogen | E-1219 |
35 mm glass-bottom imaging dishes | MatTek | P35-1.5-14-C |