Summary

Imaging Local Ca<sup> 2+</sup> Signaler i dyrkede pattedyrceller

Published: March 03, 2015
doi:

Summary

Here we present techniques for imaging local IP3-mediated Ca2+ events using fluorescence microscopy in intact mammalian cells loaded with Ca2+ indicators together with an algorithm that automates identification and analysis of these events.

Abstract

Cytosolisk Ca2 + ioner regulere mange aspekter af cellulær aktivitet i næsten alle celletyper, kontrollerende processer vidtrækkende som gentranskription, elektrisk ophidselse og celleproliferation. Mangfoldigheden og specificitet Ca2 + signalering stammer fra mekanismer, som Ca 2 + signaler genereres til at handle over forskellige tidspunkter og rumlige skalaer, lige fra celle hele svingninger og bølger, der forekommer i løbet af de perioder minutter til lokale forbigående Ca 2 + mikrodomæner (Ca 2 + pust) varige millisekunder. Nylige fremskridt inden elektron multipliceret CCD (EMCCD) kameraer nu mulighed for billeddannelse af lokale Ca 2 + signaler med en 128 x 128 pixel rumlig opløsning på hastigheder på> 500 frames sek -1 (fps). Denne fremgangsmåde er yderst parallel og muliggør samtidig overvågning af hundreder af kanaler eller puff sites i et enkelt eksperiment. Men de umådelige mængder af data, der genereres (ca. 1 GB per min) gør visuel identifikation og analyse af lokale Ca 2 + begivenheder umuligt. Her beskriver vi, og demonstrere procedurerne for erhvervelse, afsløring og analyse af lokale IP 3 medieret Ca 2 + signaler i intakte pattedyrceller lastet med Ca 2 + indikatorer ved hjælp af både bredt felt epi-fluorescens (WF) og total intern refleksion fluorescens (TIRF) mikroskopi. Desuden beskriver vi en algoritme udviklet i open source software miljø Python, der automatiserer identifikation og analyse af disse lokale Ca 2 + signaler. Algoritmen lokaliserer lokaliteter af Ca 2+ frigivelse med sub-pixel opløsning; giver brugeren mulighed for gennemgang af data; og udlæser tid sekvenser af fluorescensforhold signaler sammen med amplitude og kinetiske data i et Excel-kompatible tabel.

Introduction

Calcium ioner (Ca 2+) allestedsnærværende regulere en bred vifte af biologiske processer, herunder genekspression, sekretion og langvarige ændringer i synaptisk plasticitet 1. En måde, hvorigennem Ca2 + kan handle på en sådan forskelligartet måde er gennem de forskellige rumlige og tidslige mønstre af Ca 2+ signalerer en celle kan generere. For eksempel globale stigninger i cytosol [Ca2 +] trigger sammentrækning i glat muskelvæv 2 mens mindre, lokaliserede forbigående stigninger (lokale Ca 2 + mikrodomæner) stimulere genekspression af afgørende betydning for indlæring og hukommelse 3.

Fri cytosol [Ca2 +] holdes på ~ 100 nM i hvile, men kan hurtigt stige til flere mikro-molær efter tilstrømningen af Ca 2+ i cytosolen via Ca2 + -permeable ionkanaler placeret i plasmamembranen og befrielsen af Ca 2+ fra intracellulære sTores. Vores laboratorium fokuserer på inositol 1,4,5-trisphosphat receptor (IP3 R), som danner en Ca2 + release kanal beliggende i det endoplasmatiske reticulum (ER) membran. Ved binding af både IP3 og Ca2 + til cytosoliske aktiverende steder i receptoren, IP3 R kanal åbner at befri Ca 2+ afsondret inden ER lumen. Frigivelsen af Ca 2+ kan forblive rumligt begrænset til en lille klynge af IP 3 R'er til at generere en lokal cytosolisk microdomain af Ca 2+ (Ca2 + puff 4), eller, afhængigt af hvor tæt beslægtede klynger af IP 3 R'er, kan udbrede gennem en celle ved at rekruttere flere puff sites gennem en Ca 2 + -induceret Ca 2+ release (CICR) 5,6.

Indførelsen af fluorescerende lille molekyle Ca 2+ indikatorfarvestoffer udviklet af Roger Tsien 7, kombineret med avanceret mikroskopi fantasing teknikker, i høj grad har lettet vores forståelse af Ca2 + signalering. Nylige fremskridt i kameraer, der anvendes til mikroskopi nu mulighed for billeddannelse forbigående lokale Ca 2 + begivenheder som pust med hidtil uset rumlig og tidsmæssig opløsning. Aktuelt tilgængelige EMCCD kameraer gør det muligt billeddannelse med 128 x 128 pixels ved> 500 frames sek -1 (fps), og den nye generation af komplementær metal-oxid halvleder (CMOS) kameraer giver højere pixel opløsning, og endnu hurtigere hastighed på bekostning af lidt højere støjniveauer. I forbindelse med total intern refleksion (TIRF) mikroskopi er det nu muligt at billedet enkelt Ca 2+ kanal events 8,9. Denne fremgangsmåde giver mulighed for billeddannelse af hundredvis af kanaler / begivenheder samtidig, samtidig med at generere store datasæt (ca. 1 Gb per min), der gør manuel behandling, visuel identifikation og analyse praktisk muligt og placere en vægt på en udvikling af automatiserede algoritmer.

<p class = "jove_content"> Her præsenterer vi procedurer og protokoller for billeddannelse lokale Ca 2 + signaler i intakte pattedyrceller under anvendelse af fluorescerende Ca 2 + indikatorer. Vi viser yderligere en algoritme udviklet i open source miljø Python, der automatiserer identifikation og analyse af lokale Ca 2 + arrangementer afbildet af både TIRF og konventionel bredt felt epi-fluorescens (WF) mikroskopi. Selvom vi beskrive disse metoder i forbindelse med IP 3 -generated Ca2 + signaler, de er let medgørlige at studere lokale ændringer i cytosoliske [Ca2 +], der hidrører fra en række Ca2 + -permeable ionkanaler placeret i enten overfladen membran eller intracellulære organeller 8-10.

Protocol

Vi præsenterer detaljerede procedurer for billeddannelse lokale Ca 2 + arrangementer i human neuroblastom SH-SY5Y celler. Disse procedurer kan tilpasses til billedet intracellulær Ca2 + signaler i mange celletyper 8-10. 1. Fremstilling af celler Kultur cellerne, der skal afbildes i henhold til vejledningen, der er opført på deres leverandørens hjemmeside. Et par dage før billeddannelse, høst celler dyrkes i en vævsdyrkningskolbe v…

Representative Results

Figur 1A viser en WF billede af hvilende Cal-520 fluorescens i humane neuroblastom SH-SY5Y celler også fyldt med CI-IP 3. Eksponering af disse celler til en 100 ms UV flash til foto-release I-IP 3 fremkaldte forbigående Ca 2+ pust ved diskrete steder (med de hvide cirkler konstateret i figur 1A). Fluorescens spor målt på disse steder viste en hurtig stigende fase grund forbigående åbninger af IP 3 R'er, efterfulgt af en meget langsom…

Discussion

Vi beskriver her protokoller til billeddannelse af lokale Ca2 + begivenheder i dyrkede pattedyrceller under anvendelse af fluorescerende Ca2 + indikatorer. Desuden beskriver vi en algoritme med en intuitiv brugergrænseflade, der automatiserer identifikation og analyse af indsamlede data. Den her beskrevne fremgangsmåde udnytter den fluorescerende Ca2 + indikator Cal-520, men mange andre Ca 2+ følsomme farvestoffer, såsom Fluo-3, Fluo-4, Fluo-8 og Oregon Green BAPTA-1 udfø…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by National Institutes of Health grants GM 100201 to I.F.S, and GM 048071 and GM 065830 to I.P.

Materials

Name Company Catalogue No.
Human Neuroblastoma SH-SY5Y cells ATCC CRL-2266
Cal-520/AM AAT Bioquest Inc. 21130
ci-IP3 (D-23-O-Isopropylidene-6-O-(2-nitro-4.5-dimethoxy)benzyl-myo-Inositol 145-trisphosphate-Hexakis(propionoxymethyl) SiChem cag-iso-2-145-10
DMSO/20% pluronic F127 Invitrogen P-3000MP
EGTA/AM Invitrogen E-1219
35 mm glass-bottom imaging dishes MatTek P35-1.5-14-C

Referências

  1. Berridge, M. J., Lipp, P., Bootman, M. D. The versatility and universality of calcium signalling. Nat Rev Mol Cell Biol. 1 (1), 11-21 (2000).
  2. Hill-Eubanks, D. C., Werner, M. E., Heppner, T. J., Nelson, M. T. Calcium signaling in smooth muscle. Cold Spring Harb Perspect Biol. 3 (9), a004549 (2011).
  3. Hagenston, A. M., Bading, H. Calcium signaling in synapse-to-nucleus communication. Cold Spring Harb Perspect Biol. 3 (11), a004564 (2011).
  4. Berridge, M. J. Elementary and global aspects of calcium signalling. J Physiol. 499 (Pt 2), 291-306 (1997).
  5. Lipp, P., Niggli, E. A hierarchical concept of cellular and subcellular calcium signalling). Prog Biophys Mol Biol. 65 (3), 265-296 (1996).
  6. Parker, I., Yao, Y., Ilyin, V. Fast kinetics of calcium liberation induced in Xenopus oocytes by photoreleased inositol trisphosphate. Biophys J. 70 (1), 222-237 (1996).
  7. Minta, A., Kao, J. P., Tsien, R. Y. Fluorescent indicators for cytosolic calcium based on rhodamine and fluorescein chromophores. J Biol Chem. 264 (14), 8171-8178 (1989).
  8. Demuro, A., Parker, I. Imaging the activity and localization of single voltage-gated Ca(2+) channels by total internal reflection fluorescence microscopy. Biophys J. 86 (5), 3250-3259 (2004).
  9. Smith, I. F., Parker, I. Imaging the quantal substructure of single inositol trisphosphate receptor channel activity during calcium puffs in intact mammalian cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 106 (15), 6404-6409 (2009).
  10. Reissner, K. J., et al. A novel postsynaptic mechanism for heterosynaptic sharing of short-term plasticity. J Neurosci. 30 (26), 8797-8806 (2010).
  11. Ellefson, K. S., Parker, B., Smith, I., F, I. An algorithm for automated detection, localization and measurement of local calcium signals from camera-based imaging. Cell Calcium. , (2014).
  12. Smith, I. F., Wiltgen, S. M., Parker, I. Localization of puff sites adjacent to the plasma membrane: Functional and spatial characterization of calcium signaling in SH-SY5Y cells utilizing membrane-permeant caged inositol trisphosphate. Cell Calcium. 45, 65-76 (2009).
  13. Shuai, J., Parker, I. Optical single-channel recording by imaging calcium flux through individual ion channels: theoretical considerations and limits to resolution. Cell Calcium. 37 (4), 283-299 (2005).
check_url/pt/52516?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Lock, J. T., Ellefsen, K. L., Settle, B., Parker, I., Smith, I. F. Imaging Local Ca2+ Signals in Cultured Mammalian Cells. J. Vis. Exp. (97), e52516, doi:10.3791/52516 (2015).

View Video